兔頸總動脈側(cè)壁型動脈瘤模型制作的改進

劉世超，閆現(xiàn)政，王武，何成建，李永東

·實驗研究Experimental research·

兔頸總動脈側(cè)壁型動脈瘤模型制作的改進

劉世超，閆現(xiàn)政，王武，何成建，李永東

目的對兔頸總動脈側(cè)壁型動脈瘤模型進行改進，以評價建模的成功率及支架植入后頸總動脈的通暢率。方法取新西蘭大白兔20只，飼養(yǎng)1周后行左側(cè)頸內(nèi)動脈結(jié)扎。1個月后行頸部3.0 T MRA檢查評價頸動脈與椎動脈的變化情況。采用間斷式外翻縫合法吻合靜脈囊與頸總動脈，建立側(cè)壁型動脈瘤。在植入覆膜支架前、術(shù)后即刻、3個月、6個月行血管造影。結(jié)果20只實驗兔均順利行左側(cè)頸內(nèi)動脈結(jié)扎。MRI示結(jié)扎前右頸總動脈中段平均直徑為（2.35±0.08）mm，結(jié)扎后1個月右頸總動脈中段平均直徑為（2.89±0.22）mm，與術(shù)前比較差異有顯著統(tǒng)計學(xué)意義（P<0.01）。MRA示17只兔右頸總動脈明顯增粗，而雙側(cè)椎動脈略增粗；3只兔頸總動脈增粗不明顯，而雙側(cè)椎動脈明顯增粗。建立兔頸總動脈囊狀動脈瘤模型17只，術(shù)后均健康成活。DSA示覆膜支架植入前所有動脈瘤及右頸總動脈通暢，4個動脈瘤腔內(nèi)有少量血栓形成，但無自發(fā)性完全閉塞。Willis或鎂合金覆膜支架植入術(shù)后即刻造影示動脈瘤閉塞，右頸內(nèi)動脈通暢。術(shù)后3個月DSA示16只兔右頸內(nèi)動脈通暢，1只閉塞。術(shù)后6個月DSA示16只兔右頸內(nèi)動脈通暢。動脈瘤模型的成功率為100%（17/17），覆膜支架植入后右頸總動脈的通暢率為94.1%（16/17）。結(jié)論兔頸總動脈側(cè)壁型動脈瘤模型制作的改進提高了動脈瘤模型的成功率及覆膜支架植入后右頸總動脈的通暢率。

腦動脈瘤；頸總動脈；模型；兔

腦動脈瘤是最常見腦血管病之一，破裂后死亡率和致殘率很高［1-2］。建立切實可行的重復(fù)性好的動脈瘤模型是腦動脈瘤研究和介入治療的重要方法。目前，犬、豬是較常使用的大型實驗動物，而兔則常用于建立胰彈性蛋白酶誘發(fā)的右頸總動脈起始處的動脈瘤模型［3-5］，對于兔頸總動脈側(cè)壁動脈模型的應(yīng)用則較少報道。2012年賀道華等［6］報道了兔頸總動脈側(cè)壁動脈瘤模型的制作方法，建模成功率為80%。但支架植入后頸內(nèi)動脈的通暢率并未做評價。2013年本課題組嘗試用頸總動脈側(cè)壁動脈瘤模型來研究Willis覆膜支架的療效，但在實驗過程中發(fā)現(xiàn)動脈瘤側(cè)頸總動脈在術(shù)前造影時或支架植入后會時常發(fā)生閉塞，嚴重影響了實驗的進程。本研究的目的是對兔頸總動脈側(cè)壁型動脈瘤模型的制作進行改進，并評價建模成功率和支架植入后頸總動脈的通暢率。

1 材料與方法

1.1 實驗對象

普通級新西蘭大白兔20只，由上海交通大學(xué)農(nóng)學(xué)院提供[許可證編號SCXK（滬）2007-0004]，均按實驗標準嚴格飼養(yǎng)。

1.2 實驗方法

1.2.1 結(jié)扎左側(cè)頸內(nèi)動脈新西蘭大白兔飼養(yǎng)1周后行左側(cè)頸內(nèi)動脈結(jié)扎。結(jié)扎方法如下：術(shù)前12 h禁食，3%戊巴比妥（1 ml/kg）經(jīng)耳緣靜脈注射全麻；實驗兔仰臥位固定于手術(shù)臺上，常規(guī)消毒、鋪巾后，沿頸部正中甲狀軟骨下方水平偏左側(cè)做一長2 cm的縱行切口，鈍性分離皮下組織、胸鎖乳突肌及胸骨舌骨肌等各頸前肌群，于左側(cè)胸鎖乳突肌下方分離頸總動脈，并用4號縫線結(jié)扎。觀察動脈周圍無滲血后逐層縫肌肉和皮膚。術(shù)后肌內(nèi)注射青霉素80萬u/d和鏈霉素0.5 g/d，共3 d；分籠喂養(yǎng)，密切觀察動物蘇醒后的生命指征，觀察頸部有無滲血或血腫。

1.2.2 頸部3.0 TMRA檢查左側(cè)頸內(nèi)動脈結(jié)扎后1個月，行頸部3.0 TMRA檢查，觀察頸部血管的代償情況。3.0 T MRA檢查方法如下：采用Philips Achieva X 3.0 T MR成像系統(tǒng)和8通道頭顱線圈接收成像［7-9］。掃描采用3D-T1加權(quán)快速場回波（3DT1-FFE）序列，具體掃描參數(shù)如下，TR 35 ms，TE 7 ms，反轉(zhuǎn)角20°，F(xiàn)OV 250 mm×190 mm× 108 mm；掃描層數(shù)共180層，層厚0.8 mm，矩陣732×1 024，采集時間8 min 56 s。將原始圖像傳至工作站（EWS，飛利浦醫(yī)療公司）進行三維重組，矩陣1 024×1 024，通過專業(yè)的軟件包處理，所有原始圖像均經(jīng)最大密度投影（MIP）和容積重建（VR）后處理，獲得最終圖像信息。如果兔右側(cè)頸內(nèi)動脈增粗，而雙側(cè)椎動脈增粗不明顯，則此兔適合下一步動脈瘤制作及覆膜支架植入，若兔右側(cè)頸內(nèi)動脈不增粗，而雙側(cè)椎動脈明顯增粗，則將不適合進一步研究。

1.2.3 兔頸總動脈動脈瘤制作經(jīng)MRA選擇的新西蘭大白兔于術(shù)前12 h禁食。3%戊巴比妥鈉麻醉后，將實驗兔仰臥位固定于手術(shù)臺上。常規(guī)消毒、鋪巾后，沿頸部正中甲狀軟骨下方水平偏右側(cè)做一長約3 cm矢狀切口，鈍性分離皮下組織，沿一側(cè)頸部皮下向外分離，游離一側(cè)頸外靜脈約1 cm，去除外層結(jié)締組織，在其遠端及近端采用4號縫線分別結(jié)扎2道后將該段頸外靜脈剪下，用平針注射器抽取肝素化生理鹽水（肝素12 500 u加入500m l生理鹽水中）沖洗干凈并將其置入肝素化生理鹽水中備用。鈍性分離胸鎖乳突肌及胸骨舌骨肌等各頸前肌群，于雙側(cè)胸鎖乳突肌下方分別分離頸總動脈，游離出長約2 cm后用2支無損傷止血夾夾閉其近端及遠端，將血管壁外層結(jié)締組織清除干凈，在其側(cè)壁剪一直徑稍大于頸外靜脈直徑的切口并修剪整齊，剝離吻合口周圍血管外膜，用肝素化生理鹽水將管腔沖洗干凈，將上述靜脈囊的斜形切口周圍的血管外膜去除，使其對準頸動脈切口，并使靜脈囊向兔頭側(cè)傾斜，然后用6-0顯微縫線采用間斷式縫合法將靜脈囊與頸總動脈行外翻吻合。完畢后松開止血夾使靜脈囊完全充盈，仔細檢查瘤頸周圍即吻合口處有無滲血，必要時作加密縫合。觀察15min動脈瘤周圍無滲血后逐層縫合肌肉和皮膚。

術(shù)后肌內(nèi)注射青霉素80萬u/d和鏈霉素0.5 g/d，共3 d；分籠喂養(yǎng)，密切觀察動物蘇醒后的生命指征，觀察頸部有無滲血或血腫。術(shù)后采用皮下注射低分子肝素3 d（300 u/kg）。

1.2.4 Willis覆膜支架植入兔右頸總動脈動脈瘤模型制作成功后2周行Willis或鎂合金覆膜支架植入。Willis覆膜支架為可商品化的覆膜支架，其直徑為3.5mm；鎂合金覆膜支架為實驗用支架，其直徑為3.0mm。Willis或鎂合金覆膜支架的植入方法見文獻［10-11］：術(shù)前12 h禁食。3%的戊巴比妥鈉麻醉后，褪去雙側(cè)腹股溝的毛發(fā)，將實驗兔仰臥位固定于手術(shù)臺上。聚維酮碘消毒雙側(cè)后腿根部術(shù)區(qū)周圍皮膚，鋪巾，沿右側(cè)后腿根部向下縱行切開皮膚，分離皮下組織及肌肉，暴露1～2 cm股動脈。靜脈給予100 u/kg肝素鈉使全身肝素化后，小心切開股動脈后置入動脈鞘，絲線固定。沿動脈鞘送入導(dǎo)引導(dǎo)管至升主動脈，然后超選擇性插入患側(cè)頸總動脈近端造影，對比劑選用優(yōu)維顯300，注速率1 ml/s，總量3 m l，采集幀頻7.5幀/s，采集時相至靜脈期，直到動脈瘤顯影良好。

接著在路圖下將0.014英寸導(dǎo)絲送至動脈瘤以遠頸外動脈分支，沿導(dǎo)絲將所選擇的Willis或鎂合金覆膜支架及其輸送系統(tǒng)至頸動脈瘤處，并將支架近端和遠端覆蓋瘤口處。支架成功到位后，采用壓力泵緩慢給球囊加壓至所推薦的額定壓力（6 atm），維持球囊充盈15 s。然后，迅速抽空球囊，退出球囊導(dǎo)管及導(dǎo)絲。即刻行正側(cè)位血管造影觀察覆膜支架植入后血管形態(tài)變化，評價支架貼壁性能及封堵動脈瘤情況；觀察有無動脈壁破裂和支架內(nèi)急性血栓形成。術(shù)畢，拔出導(dǎo)管鞘，結(jié)扎穿刺點近端股動脈穿并縫合包扎傷口。

術(shù)后肌內(nèi)注射青霉素3 d，分籠飼養(yǎng)，密切觀察實驗動物麻醉復(fù)蘇后生命體征。拔鞘后2 h，皮下注射低分子肝素鈣400 u/d，3 d。繼續(xù)喂食含阿司匹林和氯吡格雷藥物飼料，每日按公斤體重先給足藥物飼料后再喂食普通飼料，直到實驗終點。

1.2.5 血管造影隨訪在Willis或鎂合金覆膜支架植入后3、6個月隨訪血管造影，以評價支架植入后載瘤側(cè)頸總動脈通暢情況。

1.3 統(tǒng)計數(shù)據(jù)分析

所有計量數(shù)據(jù)以均值±標準差表示。用配對t檢驗比較結(jié)扎前、后兔體質(zhì)量、右頸總動脈中段直徑及雙側(cè)椎動脈中段直徑的變化。用SPSS13.0進行數(shù)據(jù)分析。P＜0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 左側(cè)頸內(nèi)動脈結(jié)扎

20只新西蘭大白兔均順利行左側(cè)頸內(nèi)動脈結(jié)扎。

2.2 頸部3.0MRA檢查結(jié)果

左頸總動脈結(jié)扎前、后，兔體質(zhì)量、右頸總動脈中段直徑及雙側(cè)椎動脈對應(yīng)中段直徑測量結(jié)果見表1。右頸總動脈直徑由結(jié)扎前的（2.35±0.08）mm增至結(jié)扎后1個月的（2.89±0.22）mm（P＜0.01）。左側(cè)頸內(nèi)動脈結(jié)扎1個月后，MRA示17只兔頸總動脈明顯增粗，而雙側(cè)椎動脈略增粗；3只兔頸總動脈增粗不明顯，而雙側(cè)椎動脈明顯增粗。

2.3 右頸總動脈側(cè)壁動脈瘤制作結(jié)果

經(jīng)MRA篩選17只新西蘭大白兔建立兔頸部囊狀動脈瘤模型（圖1）均獲成功，動脈瘤搏動良好，頸總動脈通暢。術(shù)后17只健康成活，建模成功率為100%。

2.4 DSA檢查結(jié)果

支架植入前DSA示所有動脈瘤與右頸總動脈通暢，對比劑在動脈瘤腔內(nèi)滯留時間短、流速快，且旋轉(zhuǎn)，呈紛亂狀態(tài)。4個動脈瘤腔內(nèi)有少量血栓形成，但無自發(fā)性完全閉塞。支架植入后即刻造影示動脈瘤閉塞，右頸內(nèi)動脈通暢。術(shù)后3個月DSA示16只兔頸內(nèi)動脈通暢，1只閉塞。術(shù)后6個月DSA示16只兔頸內(nèi)動脈通暢。支架植入后DSA造影隨訪示17只兔中有16只兔右頸總動脈通暢，通暢率為94.1%（16/17）（圖2）。

3 討論

目前，動脈瘤建模方法主要有靜脈囊移植法和胰彈性蛋白酶消化法。采用靜脈囊外科移植法建立的動脈瘤模型，具有成功率高、穩(wěn)定性好等特點，多用于大型實驗動物，比如犬、豬等。應(yīng)用該模型進行新型介入治療器械的測試、改進及介入新技術(shù)的訓(xùn)練已有報道［12-17］。胰彈性蛋白酶消化法制作的動脈瘤在動脈瘤解剖結(jié)構(gòu)及血流動力學(xué)方面似乎與人類動脈瘤更為接近［13，18-20］，適合于動脈瘤組織形態(tài)結(jié)構(gòu)、自然發(fā)展史及血流動力學(xué)研究。

表1 左頸總動脈結(jié)扎前后20只兔體質(zhì)量、右頸總動脈與左、右椎動脈直徑變化

圖1 左頸總動脈結(jié)扎后MRA下的頸部血管及制作的右頸總動脈動脈瘤模型

文獻報道，采用靜脈囊外科移植方法建立的動脈瘤模型，在血液渦流的作用下，動脈瘤呈明顯擴張狀態(tài)，并且自體靜脈移植后第6周，通過血管造影及彩色多普勒動態(tài)觀察，其血流動力學(xué)改變與人類顱內(nèi)動脈瘤生理特性相類似［13，21］。盡管靜脈移植法建立的兔頸總動脈動脈瘤模型具有成功率高、模型穩(wěn)定等特點，但此模型很少用于新型介入治療器械的測試、改進及介入新技術(shù)的訓(xùn)練，最可能的原因是覆膜支架植入前、后頸總動脈閉塞概率較高。

在兔頸總動脈動脈瘤模型制作及支架植入前后，血栓形成和血管代償可能是影響動脈瘤建模成功率及頸總動脈的通暢率的主要因素。血栓因素是人們最為關(guān)注的問題，都會盡可能的采取措施防止血栓形成。而血管代償往往容易被忽視，成為影響動脈瘤建模成功率及支架植入后頸總動脈通暢率的重要因素。由于采用間斷式縫合法制作動脈瘤，術(shù)后瘤口處的頸總動脈往往會狹窄，或者由于支架植入后局部血栓形成，都會造成動脈瘤側(cè)的頸總動脈血流減少，而對側(cè)的頸總動脈或雙側(cè)椎動脈有可能會代償，逐漸地動脈瘤側(cè)的頸總動脈由于血流不斷減少而變細直至閉塞。因此，為了提高動脈瘤模型的成功率及支架植入后頸總動脈的通暢率，應(yīng)當(dāng)在支架植入前將這些可能的因素排除。我們的做法是通常先結(jié)扎左側(cè)頸總動脈，1個月后用3.0 T MRA觀察兔雙側(cè)椎動脈的代償情況，選擇椎動脈不代償或代償不好的新西蘭大白兔進行實驗研究。

圖2 兔頸總動脈瘤覆膜支架植入及血管造影隨訪

本研究中17只兔在左側(cè)頸內(nèi)動脈結(jié)扎1個月后MRA檢查示頸總動脈明顯增粗，而雙側(cè)椎動脈略增粗，并擇期進行了動脈瘤制作和覆膜支架植入。最終DSA隨訪示16只兔頸內(nèi)動脈通暢，1只兔頸內(nèi)動脈閉塞，可能是由于覆膜支架植入導(dǎo)致局部血栓形成致動脈瘤側(cè)頸總動脈血供減少，而雙側(cè)椎動脈發(fā)生了晚期代償。相比以往兔靜脈囊狀動脈瘤模型制作［6］，本研究動脈瘤模型做了如下改良：①結(jié)扎左側(cè)頸總動脈；②使用MRA篩選右頸總動脈明顯增粗而雙椎動脈增粗不明顯的兔制作動脈瘤模型和覆膜支架植入。

模型制作時，應(yīng)當(dāng)注意：①采用間斷式縫合時，動脈端側(cè)吻合時全層縫合，盡量外翻；縫針采用外→內(nèi)→內(nèi)→外的方式進針。②頸總動脈側(cè)壁開口不宜過小，以保證動脈瘤流入道和流出道通暢；③切開動脈前，靜脈內(nèi)適當(dāng)用些肝素，既防止動脈瘤腔內(nèi)血栓形成又不至于吻合口長時間不閉合。④術(shù)后肝素化3 d，減少載瘤動脈和動脈瘤腔內(nèi)血栓形成。

這項研究有一定的不足。首先，本實驗的操作步驟較煩瑣，需要先結(jié)扎一側(cè)頸內(nèi)動脈，再用磁共振血管成像篩選合適的兔做動物瘤模型。其次，本研究只評價動脈瘤制作成功率及支架植入后頸內(nèi)動脈的通暢率，并未評價動脈瘤的組織結(jié)構(gòu)及血流動力學(xué)。

綜上所述，兔頸總動脈側(cè)壁型動脈瘤模型制作的改進能明顯提高動脈瘤建模的成功率及支架植入后頸總動脈的通暢率。但仍需長期隨訪及大樣本動物實驗研究。

［1］Bannerman RM，Ingall GB，Graf CJ.The familial occurrence of intracranial aneurysms［J］.Neurology，1970，20：283-292.

［2］王玨，趙玉武，李明華，等.多發(fā)性顱內(nèi)動脈瘤破裂的危險因素分析［J］.介入放射學(xué)雜志，2014，23：1-4.

［3］Nuki Y，Tsou TL，Kurihara C，et al.Elastase-induced intracranial aneurysms in hypertensive mice［J］.Hypertension，2009，54：1337-1344.

［4］Bouzeghrane F，Naggara O，Kallmes DF，et al.In vivo experimental intracranial aneurysm models：a systematic review［J］.AJNR，2010，31：418-423.

［5］Aoki T，Nishimura M.The development and the use of experimental animalmodels to study the underlying mechanisms of CA formation［J］.JBiomed Biotechnol，2011：535921.

［6］賀道華，馬廉亭，潘力，等.兔頸總動脈側(cè)壁型動脈瘤模型的建立［J］.中國微侵襲神經(jīng)外科雜志，2012，17：39-42.

［7］Li MH，Li YD，Tan HQ，et al.Contrast-free MRA at 3.0 T for the detection of intracranial aneurysms［J］.Neurology，2011，77：667-676.

［8］Li MH，Cheng YS，Li YD，et al.Large-cohort comparison between three-dimensional time-of-flight magnetic resonance and rotational digital subtraction angiographies in intracranial aneurysm detection［J］.Stroke，2009，40：3127-3129.

［9］LiH，Yan L，LiMH，etal.Evaluation of intracranial aneurysms with high-resolution MR angiography using single-arteryhighlighting technique：correlation with digital subtraction angiography［J］.Radiol Med，2013，118：1379-1387.

［10］閆磊，施萬印，朱悅琦，等.雙Willis腹膜支架在犬頸動脈梭形動脈瘤模型的初步應(yīng)用［J］.介入放射學(xué)雜志，2013，22：709-713.

［11］朱悅琦，李明華，謝劍，等.Willis覆膜支架治療犬頸內(nèi)動脈虹吸段動脈瘤的影像學(xué)和組織病理學(xué)研究［J］.介入放射學(xué)雜志，2010，19：302-308.

［12］Ayral Y，Rauch U，Goldin-Lang P，etal.Prolonged clopidogrel application reduces tissue factor expression after percutaneous coronary intervention in the porcine model［J］.Cardiovasc Revasc Med，2011，12：47-55.

［13］Graves VB，Partington CR，Rüfenacht DA，et al.Treatment of carotid artery aneurysms with Platinum coils：an experimental study in dogs［J］.AJNR，1990，11：249-252.

［14］Massoud TF，Turjman F，Ji C，et al.Endovascular treatment of fusiform aneurysmswith stents and coils：technical feasibility in a swinemodel［J］.AJNR，1996，16：1953-1963.

［15］Dai D，Ding YH，Danielson MA，et al.Endovascular treatment of experimental aneurysms by use of fibroblast-coated Platinum coils：an angiographic and histopathologic study［J］.Stroke， 2007，38：170-176.

［16］Fischell TA，Virmani R.Intracoronary brachytherapy in the porcinemodel：a different animal［J］.Circulation，2001，104：2388-2390.

［17］Geremia G，Brack T，Brennecke L，et al.Occlusion of experimentally created fusiform aneurysms with porous metallic stents［J］.AJNR，2000，21：739-745.

［18］Lewis DA，Ding YH，Dai D，et al.Morbidity and mortality associated with creation of elastase-induced saccular aneurysms in a rabbitmodel［J］.AJNR，2009，30：91-94.

［19］Reinald N，F(xiàn)ournier B，Naveau A，et al.Fusiform aneurysm model in rabbit carotid artery［J］.JVasc Res，2010，47：61-68.

［20］Pyo R，Lee JK，Shipley JM，et al.Targeted gene disruption of matrix metalloproteinase-9（gelatinase B）suppresses development of experimental abdominal aortic aneurysms［J］.J Clin Invest，2000，105：1641-1649.

［21］Becker D.Wide-necked basilar artery bifurcation aneurysm［J］.J Neurosurg，2000，93：373.

Preparation im provement of lateralwall aneurysm model of common carotid artery in experimental rabbits

LIU Shi-chao，YAN Xian-zheng，WANGWu，HE Cheng-jian，LIYong-dong.Department of Medical Imaging，the Center Hospital，Jiaozuo Coal Group，Jiaozuo，Henan Province 454000，China

LIYong-dong，E-mail：liyongdong2009@tom.com

ObjectiveTo improve the preparation procedure of lateral wall aneurysm model of common carotid artery in experimental rabbits，and assess its success rate and patency rate of the common carotid artery after receiving stent placement.MethodsA total of 20 New Zealand rabbits were used for this study.The left common carotid artery of the New Zealand rabbitwas ligated after breeding for one week.The arteries of the neck were exam ined with 3.0 TMRA to observe the changes of carotid and vertebral arteries one month after ligation.Finally，an anastomosis between venous pouch and common carotid artery was accomp lished by using interrupted extroversion suture method with 6-0 microsuture，and the lateral wall aneurysm model of common carotid artery was thus established.Before，immediately after and 3，6 months after the stent implantation the carotid angiography was carried out to check the results.ResultsThe left common carotid arterieswere successful ligated in all twenty New Zealand rabbits.Before and onemonth after the ligation themean diameter of right carotid middle segmentwas（2.35±0.08）mm and（2.89±0.22）mm respectively，the difference was statistically significant（P<0.001）.MRA performed onemonth after ligation revealed that in 17 rabbits the right carotid was strikingly thickened and bilateral vertebral arteries were slightly thickened；in 3 rabbits no obvious thickened carotid was found，while bilateral vertebral arteries were evidently thickened.The lateral cystic aneurysm models in common carotid artery were established in 17 rabbits，and all the model rabbits were healthy and alive.DSAperformed before the implantation of covered-stent showed thatall aneurysmswere clearly displayed and right carotid was patent.In 4 cases，a small amount of thrombus could be seen within the aneurysmal cavity，but no spontaneous total occlusion of the aneurysm was observed.Angiography performed immediately after the implantation ofWillis ormagnesium alloy-covered stent revealed that the aneurysm was obstructed，with the right carotid being patent.DSA performed 3 months after stent placement showed that the right carotid artery remained patent in 16 rabbits and was obstructed in one rabbit.DSA performed 6 months after stent p lacement demonstrated that the right carotid artery still remained patent in 16 rabbits.The success rate of the preparation of aneurysm model was 100%（17/17），the right carotid patency rate after implantation of covered stent was 94.1%（16/17）.ConclusionThe modified procedure for the preparation of the lateral aneurysm model on common carotid artery in rabbits can improve the success rate aswell as the patency rate of the right common carotid artery after covered stent implantation.（J Intervent Radiol，2014，23：983-988）

cerebral aneurysm；common carotid artery；model；rabbit

R543.5

B

1008-794X（2014）-11-0983-06

2014-03-18）

（本文編輯：李欣）

10.3969／j.issn.1008－794X.2014.11.012

國家自然科學(xué)基金資助項目（81771440，81201199）

454000焦作河南煤化集團中央醫(yī)院影像科（劉世超）；200233上海交通大學(xué)附屬第六人民醫(yī)院介入影像科（閆現(xiàn)政、王武、何成建、李永東）

共同第一作者：閆現(xiàn)政

李永東E-mail：liyongdong2009@tom.com