999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

CD4+CD25+Treg細胞與腫瘤免疫研究進展

2014-04-05 15:59:30彩綜述魏素菊審校
實用癌癥雜志 2014年9期
關鍵詞:功能

王 彩綜述 魏素菊審校

機體免疫系統通過免疫監視功能,識別和清除包括腫瘤、微生物等“非己”成分,維持機體的穩定。惡性腫瘤在機體內往往表現出免疫逃逸的特殊狀態,與機體抗腫瘤的免疫效應之間形成一對此消彼長的矛盾關系。近些年研究發現,CD4+CD25+調節性T細胞(regulatory T cells,Treg)可通過抑制激活的 T 細胞功能,影響機體抗腫瘤免疫作用,在維持自身免疫耐受性中發揮著重要作用,與腫瘤免疫逃逸關系密切[1]。機體的細胞免疫受抑是腫瘤發生、發展、轉移和復發的重要原因。許多腫瘤患者的外周血和腫瘤組織中的Treg細胞比例升高,往往提示著預后不良[2]。因此,近年來通過調節CD4+CD25+Treg 細胞的數量或功能來增強機體抗腫瘤免疫成為腫瘤免疫治療的焦點。本文就CD4+CD25+Treg細胞的生物學特征、免疫抑制機制及其在腫瘤免疫中的作用作一綜述。

1 CD4+CD25+Treg細胞概述

1.1 CD4+CD25+Treg細胞的分類及分子標志

1995年,Sakaguchi等首次報道在人和小鼠的外周血中有 5%~10%的CD4+T 細胞持續高表達 CD25分子,去除這群T細胞的裸鼠會發生多種自身免疫性疾病,而將去除的細胞群重新回輸,則可預防疾病的發生。這一現象提示CD4+CD25+T細胞有可能是維持自身免疫耐受的重要因素,對免疫功能具有調節作用,隨之產生了調節性T細胞(regulatory T cells,Treg)的概念。此后,該類細胞逐漸成為免疫學研究領域的熱點。目前認為Treg細胞是1個異質性群體,根據其來源和效應機制分為兩類:天然型CD4+CD25+Foxp3+Treg(nTreg)和誘導性Treg(iTreg)[3]。nTreg在胸腺中產生,成熟后遷移至外周淋巴系統。它占外周血CD4+細胞的5%~10%,表達IL-2 受體的α 鏈(即CD25),主要通過與效應細胞之間的直接接觸介導免疫抑制作用,從而維持機體免疫耐受及抑制自身免疫性疾病。iTreg細胞主要由外周成熟的CD4+T細胞在特定的抗原和(或)IL-2、TGF-β 等細胞因子的誘導下轉化為具有Treg 細胞功能特征的細胞群。iTreg可分為Tr1(CD4+CD25+/-Foxp3-IL-10highregulary1 T cells)和Th3(CD4+CD25+/-Foxp3-TGF-βhighhelper3 T cells)2種亞群,分別主要通過分泌IL-10和TGF-β等細胞因子介導免疫抑制功能。除上述兩大類Treg細胞外,CD8+CD28-Treg、CD3+CD4-CD8-Treg和外周血天然殺傷 T 細胞等[4]其他一些Treg 細胞也逐漸被人們所認知。

CD4+CD25+Treg細胞可表達多種分子,如抑制性共刺激分子 CTLA-4、腫瘤壞死因子受體超家族成員GITR、Toll 樣受體4、趨化因子受體CCR4、程序性死亡受體1、淋巴細胞抗原復合體6等。其中某些分子曾作為Treg細胞的常用標記,但由于它們同時也表達于活化的效應性淋巴細胞表面,因此這些分子的表達缺乏特異性。

叉頭樣轉錄因子家族成員Foxp3是目前人CD4+CD25+Treg細胞比較特異的形態和功能性指標,在Treg細胞的發育、分化和成熟以及功能維持方面起著重要作用,被認為是CD4+CD25+Treg細胞的最敏感標記[5]。Foxp3在Treg細胞的組成性表達是該細胞亞群發揮功能的前提。人類同源基因 Foxp3的突變可引起X染色體性聯綜合征。然而,Foxp3是細胞核產物,不在細胞表面表達,因此不能直接單獨作為Treg細胞的選擇性標記。

大多數人類CD4+T 細胞可表達 CD127分子(IL-7受體的一條鏈)。研究顯示,CD4+CD25+Treg細胞低表達 CD127分子,并且CD127 與 Foxp3 的表達呈負相關。聯合應用CD25 和 CD127可得到高純度的 Treg 細胞。另有研究發現CD49d與Foxp3的表達也呈負相關,CD49d與CD127 聯合檢測有助于得到高純度的Treg 細胞。

1.2 CD4+CD25+Treg細胞的免疫功能特性

CD4+CD25+Treg細胞具有免疫無能性和免疫抑制性兩大功能特征。前者表現為對IL-2單獨刺激或CD3單抗和CD28單抗聯合作用呈低反應狀態,也不分泌IL-2,但在高濃度IL-2或抗CD28單抗刺激下并經T 細胞受體(TCR)介導信號,CD4+CD25+Treg細胞可活化并增殖;后者表現在經TCR介導的信號刺激活化后能抑制CD4+和CD8+T細胞和B細胞的活化和增殖,并且這種免疫抑制性不具有MHC限制性,即為非抗原特異性,能夠抑制同種同型或同種異型T細胞的增殖。

2 CD4+CD25+Treg細胞介導的免疫抑制機制

Treg細胞對效應性T細胞的抑制作用可以通過細胞接觸和分泌細胞因子方式實現。隨著對參與Treg細胞免疫調節活動的效應分子研究的逐步深入,依據分子特性及功能的不同,可將 Treg細胞介導的免疫抑制機制概括為4種基本途徑。

2.1 依賴抑制性細胞因子的途徑

nTreg細胞分泌多種免疫抑制性細胞因子,其中轉化生長因子β(transforming growth factor-β,TGF-β)和IL-10被認為是介導Treg細胞免疫抑制的關鍵因子。TGF-β 對機體多種免疫細胞的生長、分化具有重要的調節作用。它可抑制IL-1和IL-2的分泌,進而抑制T細胞增殖。Frimpong-Boateng 等[6]發現,Treg 細胞可通過分泌 TGF-β 抑制NK細胞的殺傷功能。此外,TGF-β可抑制巨噬細胞和樹突狀細胞表達共刺激分子[7],從而抑制抗腫瘤免疫反應。IL-10可以抑制單核細胞、NK細胞的活化及Th1細胞合成IL-2等細胞因子,抑制DC和巨噬細胞 MHC-Ⅱ類分子的表達及降低抗原提呈作用,從而起到免疫抑制的功能。Miriam 等[8]證實黑色素瘤組織中的IL-10能降低特異性細胞毒性淋巴細胞(cytotoxic T lymphocytes,CTLs)的靈敏性,并抑制瘤抗原提呈。此外,Treg細胞可高表達CD25(IL-2受體的α鏈),競爭性結合T細胞增殖的關鍵因子IL-2,從而抑制效應T細胞增殖分化。同時Treg 細胞結合 IL-2后又可促進自身增殖分化,進一步增強對效應 T 細胞的免疫抑制作用[9]。纖維蛋白原樣蛋白2(fibrinogenfi-like protein 2,FGL2)是Treg細胞的另一種重要的抑制因子,可通過FcγRⅡb受體介導免疫抑制效應,被認為是Treg細胞發揮功能的標記[10]。靶向去除小鼠中的FGL2,會導致DC、T、B細胞的免疫反應增強和自免性腎病的發生。

2.2 破壞細胞代謝的途徑

Treg細胞可破壞效應靶細胞的穩態、代謝途徑及信號傳導通路,繼而抑制其免疫反應。第二信使cAMP則參與了該過程。Treg細胞通過縫隙連接將cAMP直接導入靶細胞,通過消耗 IL-2誘導靶細胞凋亡。Treg細胞也可通過增強腺苷酸依賴的信號傳導,間接提高靶細胞內cAMP水平。此外,Treg可通過CD39和CD73水解ATP酶,提高細胞微環境中腺苷酸水平,進而活化效應細胞上腺苷酸受體A2A,產生免疫抑制作用[11]。腺嘌呤二核苷酸(NAD)可影響Treg細胞表型和功能,它可通過細胞溶解或非溶解的方式釋放入胞外,通過ADP糖基化活化P2X7受體,繼而介導T細胞死亡。

2.3 溶解細胞的途徑

Treg細胞可通過釋放顆粒酶A/B、穿孔素或通過TRAIL-DR5(腫瘤壞死因子相關細胞凋亡誘導配體-死亡受體-5)途徑直接殺傷效應細胞,起到免疫抑制作用。人源CD4+CD25+FOXP3+Treg細胞在抗CD3和CD46抗體共同作用下活化,可誘導表達顆粒酶 A(granzyme A),通過穿孔素依賴機制去除活化的 CD4+和CD8+T細胞,CD14+單核細胞和成熟及未成熟的DC。此外,靶細胞可通過過表達顆粒酶特異性抑制劑,抵抗細胞死亡。Suzan等[12]發現在體外試驗中,去除顆粒酶B的Treg細胞對CD8+T細胞擴增的抑制作用減弱。人源和鼠源Treg細胞可高表達溶細胞半乳糖凝集素-1,半乳糖凝集素-1表達不足的鼠源Treg細胞在體外試驗中顯示免疫抑制功能受損。

2.4 調節抗原遞呈細胞(APC)功能的途徑

Treg細胞介導的免疫抑制還可通過調節抗原遞呈細胞的功能間接實現,其中某些抑制性膜相關分子在該途徑中發揮重要作用。最具代表性的就是細胞毒性T 淋巴細胞相關抗原(cytotoxic T lymphocyte-associated antigen-4,CTLA-4),它也是Treg 表達的重要分子標記,可與DC表面的CD80和CD86共同作用,誘導抗原遞呈細胞(DC為主)產生吲哚-2,3-加雙氧酶(IDO),該酶可降解細胞代謝必需的色氨酸,色氨酸缺失會抑制 T 細胞活化,從而導致T細胞凋亡。此外,CTLA-4還可通過與B細胞、T細胞、DC和巨噬細胞上的配體B-7結合,抑制靶細胞的活化與增殖。Wing 等研究發現,CTLA-4 誘導缺陷的荷瘤小鼠可發生全身性淋巴細胞增殖,產生顯著的抗腫瘤免疫反應,引起腫瘤消退。

有研究發現另一種膜相關抑制因子,即淋巴細胞活化基因-3(lymphocyte activationgene-3,LAG-3/CD233)。它是表達于Treg細胞上的跨膜蛋白,也是CD4分子相關黏附蛋白,可與抗原遞呈細胞的MHCⅡ結合。當Treg和DC相互作用時,LAG-3與MHCⅡ結合后會誘導免疫受體酪氨酸抑制基序(immunoreceptor tyrosine-based inhibition motif,ITIM)介導的抑制信號通路,產生負向信號,繼而抑制DC成熟,下調其免疫激活的能力。體內外試驗均顯示應用LAG-3抗體可阻斷Treg細胞抑制功能。然而LAG-3缺失小鼠未發生自免性疾病。

3 CD4+CD25+Treg細胞在腫瘤微環境中的分布及意義

CD4+CD25+Treg細胞以其獨特的免疫抑制作用,影響機體抗腫瘤免疫,在腫瘤免疫逃逸中發揮重要作用,并進一步影響腫瘤的轉歸和預后。很多證據表明在肺癌、乳腺癌、宮頸癌及腎癌等不同惡性腫瘤患者的外周血、腫瘤局部及腫瘤浸潤淋巴結中,CD4+CD25+Treg細胞比例增高,并顯示出與疾病進程及預后呈負相關。Shah等[13]證實腫瘤局部浸潤CD4+Fox3+Treg細胞比例較高的宮頸鱗癌患者,其5年生存率顯著降低。Shen等[14]發現胃癌患者中,瘤內Fox3+Treg細胞比例增高者的總生存期相對縮短。Mahmoud等[15]報道乳腺癌患者外周血及癌組織中可檢測到Treg細胞比例增高。同時,單因素分析顯示瘤內及癌旁基質中Fox3+Treg細胞數目與乳腺癌患者的預后呈負相關。Bachy等[16]發現慢性粒細胞白血病(CML)患者外周血Treg細胞水平升高,化療后未完全緩解組Treg細胞水平比完全緩解組高。Lin等[17]報道瘤內Foxp3+Treg細胞比例與肝細胞癌患者的預后呈負相關。Liotta等[18]研究證實在腎細胞癌患者的腫瘤浸潤淋巴結和外周血中Treg細胞數均上升,且前者升高顯著,并與預后不良相關。Kang等[19]進一步發現對于腎透明細胞癌患者,腫瘤浸潤淋巴結中增高的Treg細胞可作為總生存率的獨立預測指標之一,并與增高的遠處轉移率和降低的無復發生存率密切相關。Shimizu等[20]報道腫瘤浸潤Foxp3+Treg細胞數目與淋巴結陰性非小細胞肺癌患者的無復發生存率呈負相關。上述眾多研究結果表明Treg細胞在多種實體瘤和血液系統惡性腫瘤的微環境中普遍增高,并且與腫瘤轉歸及預后有密切關系。

腫瘤微環境中CD4+CD25+Treg細胞積聚的具體機制仍不明確,可能與以下因素有關:①腫瘤細胞可通過分泌IL-10、IL-2和TGF-β等因子誘導CD4+CD25+Treg細胞擴增,并誘導CD4+CD25-Treg向CD4+CD25+Treg細胞轉化;②腫瘤細胞分泌的CCL22可與CD4+CD25+Treg細胞表達的CCR4(趨化因子CCL22受體)相結合,繼而使Treg細胞在腫瘤局部富集;③抗原遞呈細胞可通過腫瘤相關抗原進一步擴增CD4+CD25+Treg 細胞;④在由Fas-Fasl介導的凋亡中,CD4+CD25+Treg和CD4+CD25-T細胞存在敏感性上的差異,腫瘤通過分泌細胞因子選擇性地誘導 CD4+CD25-T細胞凋亡[21]。

腫瘤微環境在腫瘤發生發展中的重要作用已被廣泛認可。然而與上述研究結果有所不同的是,腫瘤局部積聚Foxp3+Treg細胞,并非總與預后不良相關。某些腫瘤,尤其是結直腸癌,局部Foxp3+Tregs的比例與預后呈正相關。Salama等發現腫瘤浸潤組織中Foxp3+Treg細胞比例較高的結直腸癌患者,其生存期相對延長。這一發現已被Frey等[22]證實。Bron等[23]報道在口咽癌、口腔鱗癌患者和淋巴結未轉移的頭頸部鱗癌患者中,腫瘤浸潤Foxp3+Treg細胞普遍增多,并與延長的總生存期相關。Lee等[24]研究發現三陰性乳腺癌患者的腫瘤局部積聚的Foxp3+Treg細胞與其延長的生存期密切相關。在典型的霍奇金淋巴瘤、濾泡性淋巴瘤中高水平的Treg細胞可改善患者生存率[25]。對于這些研究結果,不排除某些腫瘤的預后可能更多的是與激活的CD4+或CD8+T細胞相關,并非僅是Foxp3+Treg細胞。然而,現有研究尚未能對此做出合理解釋。目前多數學者認為Treg細胞能抑制機體抗腫瘤免疫,促進腫瘤發展。腫瘤微環境中Treg水平的升高往往提示預后不良。

4 CD4+CD25+Treg細胞與腫瘤免疫治療

腫瘤的免疫治療已成為繼手術、放射治療和化學治療之后又一種重要的治療手段。最近的研究[26]表明Treg細胞在腫瘤治療中的作用是復雜多樣的。盡管如此,體內清除Treg細胞可提高機體抗腫瘤免疫能力,這一觀點被普遍接受。眾所周知,低劑量的環磷酰胺具有免疫調節特性,大量的腫瘤動物模型實驗顯示,應用環磷酰胺去除Treg細胞,可促進效應性T細胞功能的恢復。但有研究證實此法對腫瘤患者的免疫治療效果欠佳。目前去除Treg細胞的方法包括抗CD25單克隆抗體、咪喹莫特、弗達拉濱、抗-CTLA-4 單克隆抗體、Toll 樣受體配體等。Pedroza-Gonzalez等[27]研究表明對于原發性肝癌或結直腸癌肝轉移癌患者,應用可溶性GITR配體(GITRL)能在一定程度上阻礙腫瘤浸潤Treg細胞的免疫抑制功能。由于CD25、CTLA-4等并非Treg 細胞所特有,因此,去除Treg細胞聯合其他免疫治療(如瘤苗、化療藥物、過繼性輸入TIL細胞等)也許是最佳的臨床選擇。Rech等[28]證實聯合應用抗CD25單抗和瘤苗可顯著、持久地降低轉移性乳腺癌患者體內的Treg細胞數目。Duraiswamy等[29]研究顯示靶向抑制PD-1/PD-L1信號通路可在增強效應性T細胞功能的同時,抑制Treg細胞功能,并提出聯合應用抗PD-1、抗CTLA-4抗體及瘤苗可有效抑制腫瘤,但需進一步的臨床試驗證實。抗CTLA-4抗體Ipilimumab已于2011年先后被FDA、歐盟委員會批準用于黑色素瘤患者的治療。PD-1、PD-L1阻斷抗體已進入Ⅲ期臨床試驗。

然而,由于Treg細胞在腫瘤治療中的作用并非完全明了,Treg細胞的清除也許是把雙刃劍。一項研究[30]顯示,對于未接受過化療的結腸癌患者,腫瘤微環境高表達Foxp3+Treg細胞組比低表達組在總生存期及無疾病進展生存期方面,具有顯著優勢。因此,在抗腫瘤免疫治療中,是選擇清除還是擴增Treg細胞則尤為重要,相關的臨床實驗在進一步研究中。

總之,腫瘤的發生發展與機體的免疫功能密切相關。Treg細胞可能控制著效應性細胞的活化和增殖,具有抑制免疫應答的作用,與腫瘤免疫逃逸關系密切。有關腫瘤微環境中Treg細胞的水平對腫瘤發生、發展、復發及預后影響的報道不一,其具體作用機制有待于進一步研究。目前去除Treg細胞是抗腫瘤免疫治療的主要手段,進一步探索Treg細胞對腫瘤免疫功能影響的細胞及分子作用機制,將可能為臨床治療提供新的思路。

[1] AlHilli MM,Hopkins MR,Famuyide AO.Endometrial cancer after endometrial ablation:systematic review of medical literature〔J〕.J Minim Invasive Gynecol,2011,18(3):393-400.

[2] deLeeuw RJ,Kost SE,Kakal JA,et al.The prognostic value of FoxP-

3+tumor-infiltrating lymphocytes in cancer:a critical review of the literature〔J〕.Clin Cancer Res,2012,18(11):3022-3029.

[3] Peterson RA.Regulatory T-cells:diverse phenotypes integral to immune homeostasis and suppression〔J〕.Toxicol Pathol,2012,40(2):186-204.

[4] Salcido-Ochoa F,Tsang J,Tam P,et al.Regulatory T cells in transplantation:does extracellular adenosine triphosphate metabolism through CD39 play a crucial role?〔J〕.Transplant Rev (Orlando),2010,24(2):52-66.

[5] Miyara M,Sakaguchi S.Human FoxP3+CD4+regulatory T cells:their knowns and unknowns〔J〕.Immunol Cell Biol,2011,89(3):346-351.

[6] Frimpong-Boateng K,van Rooijen N,Geiben-Lynn R.Regulatory T cells suppress natural killer cells during plasmid DNA vaccination in mice,blunting the CD+8 T cell immune response by the cytokine TGF beta〔J〕.PLoS One,2010,5(8):e12281.

[7] Wang Y,Ma Y,Fang Y,et al.Regulatory T cell:A protection for tumor cells〔J〕.Cell Mol Med,2011,16(3):425-436.

[8] Alb M,Sie C,Adam C,et al.Cellular and cytokine-dependent immunosuppressive mechanisms of grm1-transgenic murine melanoma〔J〕.Cancer Immunol Immunother,2012,61(12):2239-2249.

[9] Lu L,Zhou X,Wang J,et al.Characterization of protective human C-

D4+CD25+FOXP3+regulatory T cells generated with IL-2,TGF-b and retinoic acid〔J〕.PLoS One,2010,5(12):e15150.

[10] Foerster K,Helmy A,Zhu Y,et al.The novel immunoregulatory molecule FGL2:a potential biomarker for severity of chronic hepatitis C virus〔J〕.J Hepatol,2010,53(4):608-615.

[11] Mandapathil M,Hilldorfer B,Szczepanski MJ,et al.Generation and accumulation of immunosuppressive adenosine by human CD4+CD25highFOXP3+regulatory T cells〔J〕.J Biol Chem,2010,285(10):7176-7186.

[12] Salti SM,Hammelev EM,Grewal JL,et al.Granzyme B regulates antiviral CD8+T cell responses〔J〕.J Immunol,2011,187(12):6301-6309.

[13] Shah W,Yan X,Jing L,et al.A reversed CD4/CD8 ratio of tumor-infiltrating lymphocytes and a high percentage of CD4(+)FOXP3(+)regulatory T cells are significantly associated with clinical outcome in squamous cell carcinoma of the cervix〔J〕.Cell Mol Immunol,2011,8(1):59-66.

[14] Shen Z,Zhou S,Wang Y,et al.Higher intratumoral infiltrated Foxp-

3+Treg numbers and Foxp3+/CD8+ratio are associated with adverse prognosis in resectable gastric cancer〔J〕.J Cancer Res Clin Oncol,2010,136(10):1585-1595.

[15] Mahmoud SM,Paish EC,Powe DG,et al.An evaluation of the clinical significance of FOXP3+infiltrating cells in human breast cancer〔J〕.Breast Cancer Res Treat,2011,127(1):99-108.

[16] Bachy E,Bernaud J,Roy P,et al.Quantitative and functional analyses of CD4+CD25+Foxp3+regulatory T cells in chronic phase chronic myeloid leukaemia patients at diagnosis and on imatinib mesylate〔J〕.Br J Haematol,2011,153(1):139-143.

[17] Lin SZ,Chen KJ,Xu ZY,et al.Prediction of Recurrence and Survival in Hepatocellular Carcinoma Based on Two Cox Models Mainly Determined by FoxP3+Regulatory T Cells〔J〕.Cancer Prev Res(Phila),2013,6(6):594-602.

[18] Liotta F,Gacci M,Frosali F,et al.Frequency of regulatory T cells in peripheral blood and in tumour-infiltrating lymphocytes correlates with poor prognosis in renal cell carcinoma〔J〕.BJU Int,2011,107(9):1500-1506.

[19] Kang MJ,Kim KM,Bae JS,et al.Tumor-infiltrating PD1-Positive ly-

mphocytes and FoxP3-Positive regulatory T cells predict distant metastatic relapse and survival of clear cell renal cell carcinoma〔J〕.Transl Oncol,2013,6(3):282-289.

[20] Shimizu K,Nakata M,Hirami Y,et al.Tumor-infiltrating Foxp3+regulatory T cells are correlated with cyclooxygenase-2 expression and are associated with recurrence in resected non-small cell lung cancer〔J〕.J Thorac Oncol,2010,5(5):585-590.

[21] Nizar S,Meyer B,Galustian C,et al.T regulatory cells,the evolution of targeted immunotherapy〔J〕.Biochim Biophys Acta,2010,1806(1):7-17.

[22] Frey DM,Droeser RA,Viehl CT,et al.High frequency of tumor-infiltrating FOXP3(+)regulatory T cells predicts improved survival in mismatched repair-proficient colorectal cancer patients〔J〕.Int J Cancer,2010,126(11):2635-2643.

[23] Bron L,Jandus C,Andrejevic-Blant S,et al.Prognostic value of arginase-Ⅱ expression and regulatory T-cell infiltration in head and neck squamous cell carcinoma〔J〕.Int J Cancer,2013,132(3):E85-93.

[24] Lee S,Cho EY,Park YH,et al.Prognostic impact of FOXP3 expression in triple--negative breast cancer〔J〕.Acta Oncol,2013,52(1):73-81.

[25] Han Y,Wu J,Bi L,et al.Malignant B cells induce the conversion of CD4+CD25-T cells to regulatory T cells in B-cell Non-Hodgkin lymphoma〔J〕.Plos One,2011,6(12):e28649.

[26] Jacobs JF,Nierkens S,Figdor CG,et al.Regulatory T cells in melanoma:the final hurdle towards effective immunotherapy〔J〕.Lancet Oncol,2012,13(1):e32-42.

[27] Pedroza-Gonzalez A,Kwekkeboom J,Sprengers D.T-cell suppression mediated by regulatory T cells infiltrating hepatic tumors can be overcome by GITRL treatment〔J〕.Oncoimmunology,2013,2(1):e22450.

[28] Rech AJ,Mick R,Martin S,et al.CD25 blockade depletes and selectively.reprograms regulatory T cells in concert with immunotherapy in cancer patient〔J〕.Sci Transl Med,2012,4(134):134ra62.

[29] Duraiswamy J,Kaluza KM,Freeman GJ,et al.Dual blockade of PD-1 and CTLA-4.Combined with tumor vaccine effectively restores T-cell rejection function in tumors〔J〕.Cancer Res,2013,73(12):3591-3603.

[30] Correale P,Rotundo MS,Del Vecchio MT,et al.Regulatory (FOXP-

3+)T-cell tumor Infiltration is a favorable prognostic factor in advanced colon cancer patients Undergoing chemo or chemoimmunotherapy〔J〕.J Immunother,2010,33(4):435-441.

猜你喜歡
功能
拆解復雜功能
鐘表(2023年5期)2023-10-27 04:20:44
也談詩的“功能”
中華詩詞(2022年6期)2022-12-31 06:41:24
基層弄虛作假的“新功能取向”
當代陜西(2021年21期)2022-01-19 02:00:26
深刻理解功能關系
鉗把功能創新實踐應用
關于非首都功能疏解的幾點思考
基于PMC窗口功能實現設備同步刷刀功能
懷孕了,凝血功能怎么變?
媽媽寶寶(2017年2期)2017-02-21 01:21:24
“簡直”和“幾乎”的表達功能
中西醫結合治療甲狀腺功能亢進癥31例
主站蜘蛛池模板: 97国内精品久久久久不卡| 中文字幕免费在线视频| 99久久国产综合精品2020| 国产一级毛片网站| 色精品视频| 人妻精品全国免费视频| 伊人久久久久久久久久| 亚洲欧洲日韩综合色天使| 久久国产高潮流白浆免费观看| 野花国产精品入口| 国产亚洲精品自在久久不卡 | 国产91丝袜在线观看| 精品成人一区二区三区电影| 韩日无码在线不卡| 一边摸一边做爽的视频17国产| 久久久久亚洲Av片无码观看| 日韩A级毛片一区二区三区| 成人在线观看不卡| 自拍偷拍欧美| 免费jizz在线播放| 国产97视频在线观看| 操操操综合网| 国产三级国产精品国产普男人| 国产精品视频系列专区| 99久久成人国产精品免费| 青青草综合网| 国产经典免费播放视频| 久久99国产乱子伦精品免| 免费在线国产一区二区三区精品| 国产精品 欧美激情 在线播放| 色135综合网| 精品视频91| 国内嫩模私拍精品视频| 免费看一级毛片波多结衣| 精品久久综合1区2区3区激情| 久久久精品国产SM调教网站| 日本不卡视频在线| 99尹人香蕉国产免费天天拍| 91视频区| 精品久久久久久久久久久| 亚洲成a人片| 三区在线视频| 国产亚洲欧美在线人成aaaa| 亚洲中字无码AV电影在线观看| 国产在线观看一区精品| 小蝌蚪亚洲精品国产| 欧美激情网址| 九九视频在线免费观看| 香蕉视频在线精品| 91无码人妻精品一区| 精品小视频在线观看| 日本在线国产| 又大又硬又爽免费视频| 亚洲国产无码有码| 亚洲日本中文字幕天堂网| 国产成人亚洲毛片| 亚洲AV无码乱码在线观看代蜜桃 | 一区二区无码在线视频| 国产免费福利网站| 免费无遮挡AV| 国产精品一区在线观看你懂的| 成年人国产视频| 中美日韩在线网免费毛片视频 | 国产永久无码观看在线| 亚洲人网站| 999国产精品| 久久精品人人做人人爽97| 国产91无毒不卡在线观看| 98超碰在线观看| 国产成人亚洲精品色欲AV| 伊人国产无码高清视频| 欧美成人第一页| 婷婷亚洲视频| 在线观看无码a∨| 亚洲第一成人在线| 日韩午夜福利在线观看| 伊人久久福利中文字幕| 1769国产精品视频免费观看| 中文字幕人妻无码系列第三区| 久久久久久高潮白浆| 亚洲天堂日韩在线| 国产一区二区三区夜色|