宋 蕊,陳艷宇,李婉秋,竇健霖,張 戈,孫 林△
(1.昆明醫(yī)科大學第二附屬醫(yī)院心內科,昆明650101;2.廣東省第二人民醫(yī)院病理科,廣州510317)
在動脈粥樣硬化(atherosclerosis,AS)和冠心病的發(fā)生、發(fā)展過程中,脂代謝異常是一重要的危險因素。有研究證實,降低冠心病患者的總膽固醇(TC)、低密度脂蛋白膽固醇(LDLC)水平可大幅降低心血管事件病死率及事件再發(fā)生率[1-2]。大量的研究表明,白藜蘆醇能有效抑制脂質過氧化,抑制AS的形成,但其具體機制報道較少。本研究擬通過高脂飲食構建AS兔模型,觀察白藜蘆醇對AS兔血脂的影響,明確其抗脂質過氧化的作用,并闡述白藜蘆醇的抗氧化作用與促分裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinases,MAPKs)家族及核因子-κB(nuclear factor kappa B,NF-κB)細胞信號通路之間的關系,現(xiàn)報道如下。
1.1 材料 普通級8周齡純種雄性日本大耳白兔50只,體質量2.2~2.6kg,健康,購自昆明醫(yī)科大學實驗動物科[許可證號:滇實動證第2005064 號,實驗動物設施合格證號:SCXK(滇)2011~0004]。分為對照組(A 組),高脂模型組(B組),白藜蘆醇低劑量組(C組),白藜蘆醇中劑量組(D 組),白藜蘆醇高劑量組(E組),每組10只。白藜蘆醇購自上海納貝生物公司;谷胱甘肽(glutathione,GSH)、谷胱甘肽過氧化物(glutathione peroxidase,GSH-PX)、谷胱甘肽硫基轉移酶(glutathione-S-transferase,GST)、γ-谷 氨 酰 半 胱 氨 酸 合 成 酶(γ-glutamyl cysteinyl synthetase,γ-GCS)、過氧化氫酶(catalase,CAT)、超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)、丙二醛(malondialdehyde,MDA)檢測試劑盒購于南京建成生物工程所;NFκB、細胞外信號調節(jié)激酶1/2(extracellular signal regulated kinase1/2,ERK1/2)、絲裂原活化蛋白激酶(p38mitogen-activated protein kinase p38,p38 MAPK)、氨基末端激酶(c-Jun Nterminal protein kinase,JNK)、甘油醛-3-磷酸脫氫(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase,GAPDH)鼠單克隆抗體,辣根過氧化物酶(HRP)標記的羊抗鼠二抗購自美國Cell Signal Technology 公 司、美 國Santa Cruz 公 司;聚 偏 二 氟 乙 烯(PVDF)膜購自美國Millipore公司。
1.2 方法
1.2.1 動物模型的制備 選取成熟健康雄性日本大耳兔50只,給予普通飼料(黃豆粉、麩皮、粗纖維、麥粉組成)適應性喂養(yǎng)7d后分成5組開始試驗(實驗0周),A 組繼續(xù)普通飼料喂養(yǎng),B、C、D、E 組均高脂飼料喂養(yǎng);C、D、E 組高脂飼料飼養(yǎng)10周后通過喂服膠囊分別給予白藜蘆醇15、45、80 mg·kg-1·d-1,連續(xù)給藥10周。高脂飼料配方為2.0%膽固醇+10.0%豬油+0.2%丙硫氧嘧啶+87.8%基礎飼料[3]。每只兔子限制飼料100~120g/d,自由飲水。白藜蘆醇劑量根據(jù)參考文獻[4]確定。
1.2.2 采血測定血脂水平及血清抗氧化酶水平 實驗動物于第1、20周末,清晨空腹從兔耳中動脈采集血液2mL,靜置后離心分離血清,-20 ℃保存。全自動生化儀測定TC、TG、LDL-C、HDL-C 水平。按南京建成生物工程室提供試劑盒操作步驟測定CAT、SOD、GST、GSH、γ-GCS、MDA 水平。
1.2.3 Western blot檢測NF-κB和MAPKs信號通路蛋白表達 RIPA 法提取組織蛋白,以BCA 法進行蛋白定量后,取50 μg總蛋白,10%十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDSPAGE)分離,PVDF 膜電轉移,5% 脫脂奶粉的TBST 緩沖液室溫封閉2h,加入一抗4 ℃孵育過夜;TBST 洗膜后與HRP標記的羊抗鼠二抗室溫孵育1h;TBST 洗膜,加入免疫印跡化學發(fā)光劑室溫下反應、暗室曝光、顯影和定影。掃描條帶,并用Image J1.43u軟件對成像結果進行分析,測定各個蛋白條帶的平均光密度值,根據(jù)平均光密度值進行統(tǒng)計分析。
1.3 統(tǒng)計學處理 采用SPSS15.0 軟件進行分析,計量資料以±s表示,數(shù)據(jù)經(jīng)正態(tài)檢驗均為正態(tài)分布,采用單因素方差分析(one-way ANOVA)后Scheffe檢驗,進行組間兩兩比較,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 白藜蘆醇對血脂的影響 實驗第0周各組間血清TG、TC、LDL-C、HDL-C水平比較,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。第20周末,A 組與第0周對比有輕微變化,但差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05);B、C、D、E組與同組第0周時相比及與同時期A組比較,TG、TC、LDL-C、HDL-C水平均明顯升高(P<0.01);與B組比較,C、D、E 組TG、TC、LDL-C 水平均有不同程度下降,HDL-C水平升高,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.01);C、D、E組間兩兩比較發(fā)現(xiàn),TG、TC、LDL-C水平逐漸降低,HDL-C 水平逐漸升高,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。結果顯示,白藜蘆醇對于血脂TG、TC、LDL-C、HDL-C 水平的影響呈現(xiàn)出一定的劑量依賴性,見表1。
2.2 白藜蘆醇對血清抗氧化酶的影響 與A 組比較,B 組CAT、SOD 活力有所下降,而MDA 水平有所上升,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05);給予白藜蘆醇干預后,CAT、SOD 活力隨著白藜蘆醇劑量的增加而增強,MDA 水平隨白藜蘆醇劑量的增加而降低,呈劑量依賴性,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),見表2。與A 組 相 比,B 組GSH-PX 活 力 降 低,GSH 水 平、γ-GCS、GST 活力驟然升高,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05);給予白藜蘆醇干預后,GSH 水平、GSH-PX 活力有所增強,γ-GCS、GST 活力則隨著白藜蘆醇劑量的增加而下降,呈劑量依賴性,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),見表3。
表1 第20周末各組血脂水平(±s,mmol/L)

表1 第20周末各組血脂水平(±s,mmol/L)
▲:P<0.01,與A 組比較;★:P<0.05,與B組比較;■:P<0.01,與C組比較;◆:P<0.05,與D組比較。
組別TC TG LDL-C HDL-C A組1.20±0.25 0.80±0.26 0.40±0.10 0.39±0.16 B組 35.95±3.84▲ 2.64±0.32▲ 20.62±2.24▲ 1.13±0.42▲C組 31.80±6.42▲★ 2.20±0.37▲★ 17.09±3.77▲★ 3.24±0.83▲★D組 25.45±4.01▲★■ 1.59±0.38▲★■11.49±2.90▲★■4.15±0.73▲★E組 19.67±7.30▲★■◆1.24±0.42▲★■◆8.43±2.78▲★■◆4.36±0.70▲★
表2 各組CAT、SOD 活力、MDA 水平比較(±s)

表2 各組CAT、SOD 活力、MDA 水平比較(±s)
▲:P<0.01,與A 組比較,★:P<0.05,與B組比較,■:P<0.05,與C組比較,◆:P<0.05,與D組比較。
組別 CAT(U/mL) SOD(U/mL) MDA(nmol/mL)A組18.29±2.56 84.00±10.39 2.37±0.56 B組 8.12±2.03▲ 58.24±7.39▲ 46.45±11.85▲C組 12.13±2.53▲★ 127.61±23.76▲★ 23.32±10.35▲★D組 16.17±3.34▲★■ 240.56±22.30▲★■ 19.43±4.60▲★■E組 15.27±3.51▲★■◆ 304.05±32.04▲★■◆ 9.63±2.66▲★■◆
表3 各組GSH 水平、GSH-PX、γ-GCS、GST 活力比較(±s)

表3 各組GSH 水平、GSH-PX、γ-GCS、GST 活力比較(±s)
▲:P<0.01,與A 組比較;★:P<0.05,與B組比較;■:P<0.05與C組比較;◆:P<0.05,與D組比較。
組別 GSH(g/L) GSH-PX(U/mL) γ-GCS(U/mL) GST(U/mL)A 組 10.11±1.61 288.04±43.60 16.99±3.34 18.37±2.34 B組 199.06±41.86▲ 192.15±28.84▲ 42.91±5.98▲ 32.57±4.50▲C組 304.63±30.33▲★ 230.05±39.20▲★ 37.00±7.12▲★ 41.23±5.61▲★D組 326.25±24.29▲★■ 246.76±28.89▲★■ 32.34±6.03▲★■ 46.79±8.20▲★■E組 366.87±26.28▲★■◆ 278.25±38.65▲★■◆ 25.70±3.34▲★■◆ 51.97±6.81▲★■◆
2.3 白藜蘆醇對NF-κB、MAPKs信號通路的影響 按照實驗分組提取組織蛋白,運用Western blot檢測NF-κB、MAPKs信號通路蛋白的表達發(fā)現(xiàn),對于NF-κB 通路,B組相對于A 組NF-κB 磷酸化表達明顯上調,給予白藜蘆醇處理后表達有所抑制,且呈劑量依賴性。對于MAPKs通路,在高脂飲食成模后MAPKs信號通路(包括ERK1/2、JNK 和p38MAPK)磷酸化明顯上調,而在給予不同劑量白藜蘆醇治療后JNK 和p38 MAPK 的蛋白磷酸化水平得到不同程度的抑制,并呈劑量依賴性,見圖1。

圖1 白藜蘆醇對MAPKs和NF-κB信號通路蛋白磷酸化的影響
對于AS的形成與發(fā)展的研究表明,氧化應激與炎性反應是AS發(fā)生、發(fā)展的兩個關鍵環(huán)節(jié),氧化應激引起血管內膜損傷,引起局部炎性反應,進一步發(fā)展為AS。
對于氧化應激,唐玉涵等[5]、朱立賢等[6]通過構建大鼠高脂血癥模型證實,高脂血癥可加強脂質過氧化作用,使MDA生成增加,SOD 活力降低,白藜蘆醇可以抑制高脂血癥大鼠的MDA 升 高 及SOD、GSH-PX、CAT 的 下 降。Shen 等[7]也 提出,白藜蘆醇可以抑制大鼠缺血再灌注心肌MDA 的產(chǎn)生,提高SOD 的活力,增加缺血心肌的存活率。本研究證實,在高脂飲食致AS兔模型中白藜蘆醇也可以降低MDA 的水平,升高SOD、CAT 等抗氧化酶的活力,從而發(fā)揮其抗氧化及心血管保護作用。
此外,有研究發(fā)現(xiàn)白藜蘆醇可通過增加血管平滑肌細胞內還原型GSH 的水平,降低細胞內氧化劑水平,從而保護細胞免受氧化損傷[8]。也有研究提示,GSH 的慢性缺乏會加劇負荷性心臟病的心室重構和心力衰竭[9]。本研究發(fā)現(xiàn),AS兔血中GSH 水平升高,GSH-PX 活力降低,GST、γ-GCS等的活力增加,給予白藜蘆醇后可觀察到GSH 的水平進一步增加,GSH-PX的活力也有所提升,GST、γ-GCS的活力則相對降低。GSH-PX、GST、γ-GCS作為合成GSH 的關鍵因子,其活力的變化提示白藜蘆醇可能通過影響GSH 的合成來發(fā)揮其抗氧化作用。
平滑肌細胞中的活性氧(ROS)可激活MAPKs信號通路,引起細胞增殖,還可激活NF-κB 信號通路,引發(fā)局部炎性反應,促進AS的發(fā)生[10-11]。白藜蘆醇可能通過抑制MAPKs信號通路來阻礙血管平滑肌細胞的增殖,從而發(fā)揮其抗AS 作用,還可以通過抑制NF-κB 信號通路的激活,抑制炎性反應,進而抗AS[12]。除外這些作用,還有研究表明外界刺激可激活ERK1/2、p38MAPK,活化的ERK1/2、p38MAPK 可使轉錄因子cfoscjun磷酸化,從而在轉錄水平調控γ-GCS mRNA 表達,使細胞質翻譯合成γ-GCS增加,GSH 的合成作用增強[13]。有研究發(fā)現(xiàn),ERK 通路可以被CAT 所抑制,而抗氧化劑CAT 可以減少NF-κB的激活[14-15]。本實驗觀察到,高脂飲食可以激活MAPKs和NF-κB 信號通路,表現(xiàn)為ERK1/2、p38MAPK、JNK、NF-κB信號蛋白的磷酸化水平增加,給予不同劑量的白藜蘆醇干預后發(fā)現(xiàn),ERK1/2、p38MAPK、JNK、NF-κB 信號蛋白的磷酸化水平得到不同程度的抑制,并呈現(xiàn)一定的劑量依賴性。
綜上所述,筆者認為白藜蘆醇抗AS的作用可能是通過減低血脂水平,提高抗氧化酶活力,降低氧化應激,進而抑制MAPKs和NF-κB信號通路的激活來實現(xiàn)的。
[1] Nakaya N,Mizuno K,Ohashi Y,et al.Low-dose pravastatin and age-related differences in risk factors for cardiovascular disease in hypercholesterolaemic Japanese:analysis of the management of elevated cholesterol in the primary prevention group of adult Japanese(MEGA study)[J].Drugs Aging,2011,28(9):681-692.
[2] Shepherd J,Cobbe SM,F(xiàn)ord I,et al.Prevention of coronary heart disease with pravastatin in men with hypercholesterolemia[J].Atheroscler Suppl,2004,5(3):91-97.
[3] 李琳,竇健霖,楚天舒,等.高脂飼料喂養(yǎng)加靜脈注射小牛血清白蛋白建立兔動脈粥樣硬化模型[J].中國組織工程研 究,2012,16(20):3690-3693
[4] 姜保周,姬新才,高路,等.白藜蘆醇對兔動脈粥樣硬化模型外周血中hs-CRP和SAA 的影響[J].齊齊哈爾醫(yī)學院學 報,2007,167(13):1537-1538.
[5] 唐玉涵,辛鵬,彭曉琳,等.白藜蘆醇改善高脂高糖飲食誘導的大鼠血管老化及機制研究[R].營養(yǎng)與慢性病——中國營養(yǎng)學會第七屆理事會青年工作委員會第一次學術交流會議,2010.
[6] 朱立賢,金征宇.白藜蘆醇苷對高脂血癥大鼠血脂代謝的影響及其抗氧化作用[J].中成藥,2006,28(2):260-261.
[7] Shen M,Wu RX,Zhao L,et al.Resveratrol attenuates ischemia/reperfusion injury in neonatal cardiomyocytes and its underlying mechanism[J].PLoS One,2012,7(12):e51223.
[8] Brito PM,Mariano A,Almeida LM,et al.Resveratrol affords protection against peroxynitrite-mediated endothelial cell death:A role for intracellular glutathione[J].Chem Biol Interact,2006,164(3):157-166.
[9] Watanabe Y,Watanabe K,Kobayashi T,et al.Chronic depletion of glutathione exacerbates ventricular remodelling and dysfunction in the pressure-overloaded heart[J].Cardiovasc Res,2013,97(2):282-292.
[10] Zhao J,Qi R,Li R,et al.Protective effects of aspirin against oxidized LDL-induced inflammatory protein expression in human endothelial cells[J].J Cardiovasc Pharmacol,2008,51(1):32-37.
[11] Orr AW,Hahn C,Blackman BR,et al.p21-activated kinase signaling regulates oxidant-dependent NF-kappa B activation by flow[J].Circ Res,2008,103(6):671-679.
[12] Kaneko H,Anzai T,Morisawa M,et al.Resveratrol prevents the development of abdominal aortic aneurysm through attenuation of inflammation,oxidative stress,and neovascularization[J].Atherosclerosis,2011,217(2):350-357.
[13] 申嚴,戴愛國.γ-GCS的信號傳導與慢性阻塞性肺疾病[J].國外醫(yī)學:內科學分冊,2004(6):260-263.
[14] Decraene D,Smaers K,Gan D,et al.A synthetic superoxide dismutase/catalase mimetic(EUK-134)inhibits membrane-damage-induced activation of mitogen-activated protein kinase pathways and reduces p53accumulation in ultraviolet B-exposed primary human keratinocytes[J].J Invest Dermatol,2004,122(2):484-491.
[15] Park JY,Cho HY,Kim JK,et al.Chlorella dichloromethane extract ameliorates NO production and iNOS expression through the down-regulation of NF kappa B activity mediated by suppressed oxidative stress in RAW 264.7 macrophages[J].Clin Chim Acta,2005,351(1/2):185-196.