毛細管電泳法測定頭孢羥氨芐膠囊中頭孢羥氨芐的含量

邵 紅

鄭州人民醫院，河南鄭州 450000

頭孢羥氨芐為第一代口服頭孢菌素，臨床上主要用于治療敏感菌所致的尿路感染，呼吸道感染，皮膚軟組織感染和中耳炎等。毛細管電泳具有操作簡便，分離效率高和易于自動化等優點，被廣泛應用于抗生素的分析研究中。有文獻報道采用近紅外光譜法[1]、分光光度法[2]、導數光譜法[3]和高效液相色譜法[3-6]測定頭孢羥氨芐，目前尚未見采用毛細管電泳分析頭孢羥氨芐的報道。該研究通過對影響毛細管電泳分離因素的考察，建立測定頭孢羥氨芐膠囊中頭孢羥氨芐含量的毛細管電泳法。

1 儀器與試藥

1.1 儀器

P/ACE MDQ 毛細管電泳儀，二極管陣列檢測器，熔融石英毛細管柱（50cm×75 m，有效長度37cm），超純水器，BP211D1/10 萬天平,pHS-3C pH 計。

1.2 試劑

頭孢羥氨芐對照品（純度>95.0%），內標鹽酸班布特羅對照品（批號200705C01），頭孢羥氨芐膠囊（規格250 mg/粒）,水為超純水，其它試劑均為分析純。

2 實驗方法

2.1 溶液的配制

2.1.1 內標溶液的配制 精密稱取班布特羅適量，置于100 mL容量瓶，加水溶解并稀釋至刻度，即得濃度為10.0 mg/mL 的內標溶液。

2.1.2 對照品溶液的配制 精密稱取頭孢羥氨芐對照品適量，置于50 mL 容量瓶，加水溶解并稀釋至刻度，即得濃度為10.0 mg/mL的對照品溶液。

2.1.3 樣品溶液的配制 取20 粒頭孢羥氨芐膠囊內容物共3 批，精密稱定，研細，分別稱取3份相當于各自平均片重的量置于100 mL 容量瓶中，加水充分溶解后用水稀釋至刻度，搖勻，用0.45 m 濾膜過濾，取續濾液即得樣品溶液。

2.2 電泳條件

熔融石英毛細管柱：50 cm×75 m，有效長度37 cm；運行緩沖液：50mmol/L 磷酸鹽緩沖液（pH值5.0）；工作電壓：25 kV；電壓進樣：10 kV×5 s；柱溫25℃；檢測波長230 nm；毛細管在每次運行前用0.1 mol/L 氫氧化鈉溶液、超純水各沖洗5 min，運行緩沖液沖洗10 min，在2次運行之間用緩沖液沖洗3 min。

3 結果

3.1 頭孢羥氨芐對照品及內標

（A）和樣品中頭孢羥氨芐及內標（B）的CE 圖,見圖1。

圖1 對照品（A）和樣品（B）的CE 圖

3.2 線性試驗

精密量取適量的對照品溶液和內標溶液，分別置10 mL 容量瓶中，加水稀釋成含內標物濃度為0.5mg/mL，對照品濃度分別為0.5、1.0、1.5、2.0、2.5、3.0 mg/mL 的溶液。按優化后的電泳條件進樣，以對照品濃度（X）為橫坐標，對照品與內標物峰面積的比值（Y）為縱坐標，進行線性回歸，得回歸方程：Y=11.363X-0.0206,r=0.9996。結果表明，頭孢羥氨芐濃度在0.5～3.0 mg/mL 范圍內線性關系良好。

3.3 精密度試驗

取3.0mg/mL 對照品溶液,按優化后的電泳條件重復進樣6次，頭孢羥氨芐對照品與內標班布特羅峰面積比的RSD 為1.12%，頭孢羥氨芐對照品遷移時間的RSD 為0.89%，班布特羅遷移時間的RSD 為0.93%。

3.4 加樣回收率試驗

取20 粒已知含量的頭孢羥氨芐膠囊內容物，研細，精密稱取相當于頭孢羥氨芐125 mg 的粉末9份,分別精密加入頭孢羥氨芐對照品適量,內標溶液5.0 mL,置于100 mL 容量瓶中，加水充分溶解后用水稀釋至刻度，搖勻，用0.45 m 濾膜過濾，取續濾液，按優化后的電泳條件進樣，結果見表1。

表1 加樣回收率試驗結果[n(%)]

3.5 樣品測定

精密量取內標溶液0.5 mL，置于10 mL 容量瓶，加樣品溶液至刻度，按優化后的電泳條件進樣，按回歸方程計算含量，結果見表2。

表2 樣品含量測定結果

4 討論

4.1 檢測波長的選擇

應用二極管陣列檢測器對頭孢羥氨芐和內標班布特羅進行掃描，發現頭孢羥氨芐和班布特羅在230 nm 和270 nm 處均有較強吸收。在230 nm 處，頭孢羥氨芐和班布特羅吸收較強，峰形較好，且基線穩定；在270 nm 處，雖然兩者也有較強的吸收，但峰形相對較差，且基線出現波動。因此，選擇230 nm 為檢測波長。

4.2 內標的選擇

內標的選擇，首先考慮了與頭孢羥氨芐結構相似的氨芐西林，通過改變分離電壓、柱溫、緩沖液的濃度和pH 等實驗條件，不能達到基線分離。然后選擇班布特羅，通過優化分離條件，能夠與頭孢羥氨芐基線分離，且遷移時間與頭孢羥氨芐相近。因此，選擇班布特羅為內標物。

4.3 分離電壓的選擇

分離電壓越大，藥物的遷移時間越短，但毛細管中焦耳熱增大，從而使柱效和分離度降低；分離電壓越小，藥物的遷移時間延長，峰形變寬，使分離度降低。分別考察了分離電壓15 kV，20 kV，25 kV，30 kV。結果顯示，分離電壓為15 kV、20 kV時，兩者雖然能夠分離但遷移時間較長，分離效率較低；分離電壓為30 kV時，遷移時間太短，兩者不能得到很好地分離；分離電壓為25 kV時，兩者能達到基線分離，峰形較好，且遷移時間適中。因此，選擇25 kV 為分離電壓。

4.4 溫度的選擇

柱溫升高，溶液粘度降低，藥物遷移時間縮短，分離效率提高；但溫度過高，會引起焦耳熱增大，柱效和分離度也隨之降低。分別考察了柱溫15 ℃，20 ℃，25 ℃，30 ℃。結果顯示，柱溫為25 ℃時兩者能基線分離，且遷移時間適中。

4.5 緩沖液pH值的影響

緩沖液的pH 是影響毛細管電泳分離的關鍵因素。緩沖液pH越高，電滲流也越高，使藥物遷移時間縮短，但過高的pH值會使分離度下降。本文考察了pH值4.0，pH值4.5，pH值5.0，pH值5.5的50 mmol/L 磷酸鹽緩沖液。結果顯示，選用pH值4.0 和pH值4.5的磷酸鹽緩沖液時，兩者雖然能夠分離，但分析時間較長；選用pH值5.5 的磷酸鹽緩沖液時，分析時間縮短，但兩者不能很好的分離；選用pH值5.0 的磷酸鹽緩沖液時，兩者能達到基線分離，遷移時間適中，且能獲得良好的峰形。

4.6 緩沖液濃度的影響

緩沖液濃度越高，電滲流越低，使分離度得到提高，同時分析時間延長，但緩沖液的濃度過高，會產生焦耳熱效應，使色譜峰展寬，分離度下降。該文考察了30 mmol/L，50mmol/L，70mmol/L的磷酸鹽緩沖液（pH值5.0）。選用30 mmol/L 磷酸鹽緩沖液時，兩者不能很好的分離；選用70 mmol/L 磷酸鹽緩沖液時，分析時間變長，色譜峰展寬，分離度下降；選用50 mmol/L 磷酸鹽緩沖液時，頭孢羥氨芐和班布特羅能得到較好分離。因此，選擇50 mmol/L磷酸鹽緩沖液（pH值5.0）。

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