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攜帶人金屬蛋白酶組織抑制劑1重組腺病毒的構建及在人臍靜脈內皮細胞中的表達*

2013-08-24 09:12:30毛用敏趙莉莉崔讓莊王佩顯
重慶醫學 2013年8期

李 匯,毛用敏,趙莉莉,崔讓莊,王佩顯

(1.天津醫科大學 300070;2.天津市胸科醫院 300051)

基質金屬蛋白酶(matrix metalloproteinase,MMPs)是降解細胞外基質(extracellular matrix,ECM)成分的主要酶系[1],金屬蛋白酶組織抑制劑(tissue inhibitor of metalloproteinase,TIMPs)是MMPs的內源性特異性抑制劑[2]。近年研究發現,MMPs/TIMPs的比例失衡與動脈粥樣硬化、冠狀動脈介入術后再狹窄以及心臟重塑等病理過程密切相關[3]。以腺病毒(adenovirus,AdV)為載體介導TIMP1到靶細胞,調節ECM的生成和降解,從而調節粥樣斑塊的穩定性可能成為冠心病基因治療的新方法[4]。本研究構建攜帶人基質金屬蛋白酶組織抑制劑因子1(human tissue inhibitor of matrix melall oprolease-1,hTIMP1)基因片段的重組腺病毒 Ad-hTIMP1[5],并成功感染體外培養的人臍靜脈內皮細胞CRL-1730,從而為進一步的在體實驗提供平臺,為基因治療動脈粥樣硬化,穩定粥樣斑塊提供靶基因的線索。

1 材料與方法

1.1 材料 AdEasy復制缺陷型腺病毒載體系統(穿梭質粒pAd-Track-CMV和骨架質粒pAdEasy-1)以及包裝細胞系人胚腎細胞(human embryonic kidney 293T,HEK293T)購自北京大學實驗室;pUCm-T載體質粒,BJ 5183菌株、JM109菌株和DH5α菌株均為本實驗室保存。TaqDNA聚合酶為本實驗室提取保存,限制性內切酶BglⅡ、NotⅠ和DNA marker購自TakaRa生物工程(大連)有限公司,PacI購自NEB公司;T4 DNA連接酶、高純度質粒柱式提取試劑盒和脂質體購自Invitrogen公司,胎牛血清(fetal bovine serum,FBS)和 DMEM高糖培養液購自美國Gibco公司;PCR引物由上海生工公司合成。DNA測序由北京三博遠志生物工程公司完成。

1.2 腺病毒重組質粒的構建

1.2.1 pUC-hTIMP1重組質粒的構建 Genebank中搜索人TIMP1序列,設計上游引物為:5′-AGA ACC CAC CAT GGC CCC CT-3′;下游引物為:5′-GAT TCA GGC TAT CTG GGA CCG-3′。從人心肌細胞中提取總RNA,反轉錄PCR(reverse transcription-PCR,RT-PCR)得到人 TIMP1的基因片段,連接到pUCm-T載體質粒中,轉化入感受態JM109細胞,NcoI酶切鑒定正確后行二次轉化入JM109進行擴增,測序正確后提質粒pUC-hTIMP1。

1.2.2 穿梭質粒 pAdTrack-CMV-hTIMP1的構建 分別用BglⅡ和NotⅠ雙酶切pUC-hTIMP1和穿梭質粒pAdTrack-CMV并凝膠回收hTIMP1片段和開環質粒pAdTrack-CMV,連接后轉化JM109感受態細胞,酶切鑒定正確后二次轉化JM109擴增,PmeⅠ酶切使之線性化,命名為重組質粒pAdTrack-CMV-hTIMP1。

1.2.3 同 源 重 組 構 建 重 組 腺 病 毒 質 粒 pAdEasy-GFP-hTIMP1 電穿孔法(2 500V,5ms)將PemⅠ酶切線性化的pAdTrack-CMV-hTIMP1重組質粒和 pAdTrack-CMV(空載體陰性對照)分別轉化到含有pAdEasy-1的電感受態BJ5183中,篩選后BamHI和PacⅠ酶切鑒定。選取重組正確的質粒(pAd-hTIMP1和pAd-Track)在DH5α菌中大量擴增,高純度質粒柱式提取試劑盒提取質粒,PacⅠ酶切線性化后凝膠回收較大片段。

1.3 重組腺病毒在293T細胞中包裝和擴增

1.3.1 陽離子脂質體法將重組腺病毒轉染293T細胞進行包裝 轉染前1d,將2個60mm培養皿中HEK293T細胞調整為0.6×106個細胞/皿,轉染當天應用脂質體lipofectamine 2000及Plus reagent將pAd-hTIMP1和pAd-Track轉染到兩皿中,24h后熒光顯微鏡下觀察綠色熒光蛋白(green fluorescent protein,GFP)表達,倒置相差顯微鏡下觀察細胞病變效應(cytopathogenic effect,CPE)。于轉染后第9天收集細胞,反復凍融法得到重組腺病毒Ad-hTIMP1和Ad-Track上清液。

1.3.2 包裝好的重組腺病毒感染293T細胞進行擴增 取病毒上清液的1/3感染293T細胞,感染后第3天反復凍融法收集重組腺病毒上清液,反復感染4次于293T細胞中擴增病毒到所需滴度。

1.3.3 重組腺病毒的純化和觀察 CsCl密度梯度離心法純化重組腺病毒顆粒,采用OD260法測定腺病毒的滴度。并用透射電鏡觀察腺病毒形態。

1.4 腺病毒介導TIMP1在內皮細胞中的表達

1.4.1 分組 體外培養人臍靜脈內皮細胞CRL-1730,將之分到6孔板中(2.4×105細胞/孔)。分為空白對照組、Track對照組和TIMP1實驗組,每組4個復孔。Ad-Track感染Track對照組,Ad-hTIMP1感染TIMP1實驗組。48h后觀察并收集細胞。

1.4.2 RT-PCR法擴增細胞TIMP1基因片段,以GAPDH為內參照 采用UNIQ-10柱總RNA抽提試劑盒提取各組人臍靜脈內皮細胞CRL-1730中的總RNA,反轉錄得到cDNA,PCR擴增TIMP1基因片段。2%瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR擴增產物。以電泳條帶的灰度代表mRNA含量,目的基因與內參電泳條帶灰度比值反應目的基因的相對值。采用Gelpro3.1凝膠成像系統對結果進行分析。

1.5 統計學處理 應用SPSS17.0軟件進行統計學數據分析,計量資料以表示。組間比較采用單因素方差分析和LSD檢驗,以P<0.05為差異有統計學意義。

2 結 果

2.1 pAdEasy-GFP-hTIMP1重組質粒 PacⅠ酶切鑒定 RTPCR法從人心肌細胞中擴增hTIMP1,可以得到637bp的特異帶。在pAd-Track-CMV上有2個PacⅠ的酶切位點,將重組子切為一個大片段和一個約4.5kb的小片段(圖1)。

圖1 PacⅠ 酶切pAd-hTIMP1和pAd-Track重組質粒

圖2 轉染Ad-hTIMP1重組腺病毒

2.2 293T細胞中包裝并擴增腺病毒 重組腺病毒轉染293T細胞后,第4~5天熒光顯微鏡下可觀察到GFP呈“彗星狀”改變,感染293T細胞后第3天可以觀察到典型的CPE(圖2),純化后OD260法測得重組腺病毒 Ad-hTIMP1的滴度為1.9×1012v.p/mL,對照重組腺病毒pAd-Track的滴度為0.6×1012v.p/mL。透射電鏡下見病毒顆粒直徑約90nm,呈多面體形狀,絕大多數病毒顆粒完整(圖3)。腺病毒裂解液TIMP1 PCR,2%瓊脂糖凝膠電泳圖(圖4)。TIMP1實驗組內皮細胞TIMP1mRNA的表達(1.062±0.083)明顯高于空白對照組(0.449±0.128)和Track對照組(0.365±0.164),P<0.05,見圖5。重組腺病毒感染體外培養的人臍靜脈內皮細胞人臍靜脈內皮細胞CRL-1730(圖6)。

圖3 Ad-hTIMP1病毒顆粒透射電鏡圖

圖4 腺病毒裂解液TIMP1PCR擴增片段(可見637bp的特異條帶)

圖5 3組TIMP1 2%瓊脂糖凝膠水平電泳圖

圖6 重組腺病毒感染體外培養的人臍靜脈內皮細胞人臍靜脈內皮細胞CRL-1730熒光表達情況(倒置熒光顯微鏡)

3 討 論

MMPs是一類以Zn2+為輔助因子的蛋白水解酶家族,在體內主要降解ECM。既往研究表明,AS斑塊損傷部位MMPs表達升高,包括屬于間質膠原酶的 MMP1、屬于明膠酶的MMP2和MMP9,以及屬于基質降解酶的 MMP3,而TIMP1和 TIMP2等表達減少[6-7]。Galis等[8]在冠狀 AS中檢測到MMPs與TIMPs的比例失調,認為調節兩者之間的比例可起到治療AS的作用。

Rouis等[9]報道腺病毒介導TIMP1過表達可以減輕ApoE-/-小鼠的頸動脈粥樣硬化損傷程度,并推測此作用是由于TIMP1抑制MMPs活性保護了細胞外基質,進而抑制了平滑肌細胞的移行所致。該研究中,小鼠喂食6周高膽固醇飲食后注射攜帶TIMP1的重組腺病毒,4周后加以評估。發現動脈粥樣硬化斑塊的損傷面積明顯減小。這與之前研究小鼠轉基因過表達人TIMP1抑制 MMPs表達的結果相一致[10-11]。另外,轉染攜帶TIMP1的重組腺病毒(Ad.TIMP1)使豬主動脈內皮細胞過表達TIMP1,可以減少細胞移行及對細胞外基質的侵襲[12]。隨著分子生物學技術的進步,利用分子生物學技術使局部TIMP1過表達,為人們治療AS帶來希望[13]。

本研究采用He等[5]于1998年建立的技術方案,成功地進行了攜帶人TIMP1的重組腺病毒的構建,并采用Zeng等[14]報道的兩步轉化法,即將pAdEsay-1質粒先轉化入BJ5183大腸埃希菌,并制備其電轉化感受態細胞,再利用電轉化儀將pAd-Track-CMV轉入該菌,進而與細胞內的pAdEsay-1進行同源重組。這種方法與一步轉化法相比,可以大大提高同源重組的效率,縮短實驗時間[15]。

本研究發現,重組Ad-hTIMP1可以成功感染內皮細胞使實驗組細胞內TIMP1過表達。為TIMP1作為靶基因用于穩定動脈粥樣斑塊的基因治療奠定了基礎。

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