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正交試驗優選姜黃素明膠微球的處方工藝Δ

2012-12-03 03:34:56黃桂紅鄧俊剛桂林醫學院附屬醫院廣西桂林541001
中國藥房 2012年15期
關鍵詞:工藝標準

鄧 航,陳 薇,黃桂紅,李 江,鄧俊剛(桂林醫學院附屬醫院,廣西桂林 541001)

姜黃素是從姜科姜黃屬植物姜黃、莪術等根莖中提取的一種有效成分。姜黃素對熱穩定,但在光照和堿液中不穩定[1]。姜黃素具有抗炎、抗氧化、抗腫瘤等多種生物學功能,并且毒性低[2]。但其水中溶解度小,穩定性差,口服吸收少,生物利用度低,這限制了姜黃素的推廣使用[3]。研究表明,給患者每天口服500~800mg姜黃素,全身監測不到姜黃素的濃度,只有當口服達到10~12 g才能在少數患者中測到微量姜黃素。如何改善姜黃素生物利用度,已經成為亟待解決的課題[4,5]。明膠以其生物可降解、低毒、價格低廉等優點,目前廣泛應用于藥物新劑型——微球的研究。本試驗以乳化交聯法制備姜黃素明膠微球,優選微球的最佳制備工藝,為開發臨床用靶向新制劑提供理論基礎。

1 儀器與試藥

1100型高效液相色譜(HPLC)儀,包括泵系統、紫外檢測器、柱溫箱、手執控制器與威瑪色譜數據工作站(美國Aglilent公司);TB-2雙向磁力攪拌器(金壇市盛藍儀器制造有限公司);FA2004電子分析天平(上海恒平科學儀器公司);B25005-MT超聲清洗器(必能信超聲(上海)有限公司,功率:250 W,頻率:40 kHz);SHB-111循環水式多用真空泵(鄭州長城科教儀器有限公司)。

姜黃素標準品(美國Sigma公司,批號:A0218404);藥用明膠(天津市科密歐化學試劑有限公司,批號:20081124);液體石蠟(藥用級)、異丙醇、戊二醛、司盤80、乙醚、無水乙醇等試劑均為分析純。

2 方法與結果

2.1 姜黃素明膠微球的制備

采用乳化交聯法制備姜黃素明膠微球。將明膠制成水溶液,姜黃素用適量無水乙醇溶解,再將姜黃素加到明膠水溶液中,將無水乙醇蒸出,作為分散相;液體石蠟作為分散介質,加入一定量乳化劑,將分散相緩慢加入分散介質中,于50℃水浴中,通過機械攪拌,乳化形成乳劑(W/O型);轉入冰浴,加入固化劑固化,異丙醇脫水,異丙醇、乙醚洗滌,過濾,干燥,即得姜黃素明膠微球。

2.2 姜黃素的含量測定

2.2.1 色譜條件 色譜柱:Sinochrom ODS-AP柱(250mm×4.6mm,5μm);流動相:乙腈-5%冰醋酸(55∶45);流速:1.0 mL·min-1;檢測波長:425 nm。

2.2.2 標準品溶液的制備 精密稱取姜黃素標準品100 mg,置于10 mL容量瓶中,從中吸取1 mL至100 mL容量瓶中,加流動相稀釋至刻度,搖勻,制成質量濃度為10 μg·mL-1的標準品溶液。

2.2.3 標準曲線的制備 精密稱取一定量姜黃素標準品至10 mL容量瓶中,加乙醇溶解,定容,得姜黃素標準品貯備液。精密吸取此貯備液適量,用流動相逐級稀釋成一系列濃度的姜黃素標準品溶液,分別取10 μL進樣,記錄峰面積。以峰面積積分值(A)為縱坐標,檢測濃度(c)為橫坐標,制備標準曲線,得回歸方程為A=360922 c-47001(r=0.9999,n=6)。結果表明,姜黃素檢測濃度在0.5~32.0μg·mL-1范圍內與峰面積積分值呈良好線性關系。

2.2.4 姜黃素含量測定 精密稱取姜黃素明膠微球100 mg,置10 mL容量瓶中,加入適量蒸餾水,溫水浸泡20 min,加流動相稀釋至刻度,超聲提取10 min,10000 r·min-1離心5 min,用0.45 um微孔濾膜濾過,制成樣品溶液,進樣10 μL分析,測定峰面積積分值,根據上述回歸方程計算檢測濃度和微球中藥物總量,并按下式計算載藥量和包封率:載藥量(%)=微球中藥物的總量/微球的重量×100%;包封率(%)=微球中藥物的總量/投入藥物量×100%。

2.3 處方工藝考察

2.3.1 因素水平的選擇 根據相關文獻報道[6,7],影響明膠微球制備的因素包括乳化劑的選擇、油水相比例、藥物加入量、乳化時間、固化劑的加入量和固化時間等。通過單因素考察,當乳化劑的量為2.5%時可得到理想的乳劑,姜黃素的量加至120 mg時載藥量不再增加,故筆者選擇影響較大的因素:明膠濃度(A)、油水比例(B)、乳化時間(C)進行正交試驗。因素水平見表1。

表1 因素水平Tab 1 Factors and levels

2.3.2 正交試驗結果 以載藥量、包封率、微球粒徑(采用顯微計數法考察微球的粒徑,每次計數不少于500粒)為指標進行考察,并進行綜合評分,各項指標數值之和為綜合評分分值,其值越大表明微球質量越好。正交試驗結果見表2;方差分析結果見表3。

表2 正交試驗結果Tab 2 Results of orthogonal experiments

表3 方差分析結果Tab 3 Results of variance analysis

由表2、表3可知,制備姜黃素明膠微球各因素影響大小順序為A>B>C,其中A因素的影響最大,最佳工藝為A3B2C3,即明膠濃度為25%,油水比例為1∶5,乳化時間為30 min。

2.4 工藝驗證試驗

按確定的處方工藝制備3批樣品,并照上述方法測定載藥量、包封率、粒徑。結果,平均載藥量為(8.13±0.51)%,平均包封率為(73.61±1.38)%,平均粒徑為(17.42±0.89)μm,顯微鏡下觀察所得微球為圓形,表面平整,表明該工藝制備的姜黃素明膠微球重現性較好,工藝穩定。姜黃素明膠微球電鏡圖片見圖1。

圖1 姜黃素明膠微球電鏡圖片Fig 1 Electronic microphotograph of Curcumin gelatin microspheres

4 討論

黃素素是一種很強的抗氧化劑,對熱穩定,對光和堿不穩定,本試驗采用在避光的條件下制備姜黃素明膠微球。

由于明膠在達到一定溫度和濕度條件下會出現液化和粘連現象,所以在制備明膠微球的過程中要求實驗室相對濕度不要過高,室內溫度低于20℃,用于脫水和洗滌用的異丙醇和乙醚都要求在冰箱內放冷低于10℃,這樣可以避免微球由于溫度的變化而出現粘連不宜分離的情況。

[1]張 軍,郭 衛,翟光喜.姜黃素劑型的研究概況[J].食品與藥品,2010,12(3):133.

[2]賈紹華,張舜堯.姜黃素藥理作用研究進展[J].中國現代藥物應用,2009,22(3):188.

[3]楊文杰,榮 蓉,張 偉,等.姜黃素制劑的研究進展[J].中國藥師,2010,13(4):565.

[4]Lao CD,Ruffin MT,Normolle D,et al.Dose escalation of a curcuminoid formulation[J].BMC Complement Altern Med,2006,6:10.

[5]鄧舒婷,甘 霖,周 琦,等.姜黃素固體脂質納米粒單用或順鉑聯用對人卵巢癌SKOV3細胞增殖的抑制作用研究[J].中國藥房,2011,22(29):2729.

[6]曹豐亮,席延偉,唐 琳,等.姜黃素肺靶向明膠微球的制備及性質研究[J].中藥材,2009,32(3):423.

[7]于 蓮,張傳美,李愛臣,等.參芎明膠微球的制備工藝研究[J].時珍國醫國藥,2010,21(3):667.

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