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乳腺癌細胞膜蛋白的SELDI-TOF-MS分析

2012-11-23 09:12:48韻雪雪楊永長肖代雯黃文芳
中國實驗診斷學 2012年3期
關鍵詞:乳腺癌差異分析

韻雪雪,楊永長,姜 偉,肖代雯,閆 慧,黃文芳*

(1.四川省醫學科學院 四川省人民醫院,四川 成都610072;2.重慶醫科大學醫學檢驗系 臨床檢驗診斷學教育部重點實驗室,重慶400016)

乳腺癌是一種嚴重危害育齡婦女健康的惡性腫瘤,占全身惡性腫瘤的7-10%,據統計,全球每年發病約250萬人,50萬人死亡。2004年Jemal等統計,早期診斷乳腺癌五年生存率可達97%,而擴散后的五年生存率僅為23%[1]。影像學檢查和CA-153標志物是目前乳腺癌檢查常用的技術指標,但由于乳腺炎癥,射線過敏和敏感性方面的問題[2,3],不足以滿足臨床和大規模篩查的需要,細胞膜在細胞生命活動中發揮重要作用,已有研究發現膜蛋白腫瘤過程中發生特異性變化[4],SELDI-TOF-MS是目前蛋白研究的先進技術,具有高通量,檢測快速,敏感度和特異性高,分析全面精確的特點,在蛋白質組學研究中應用廣泛,本實驗擬通過SELDI-TOF-MS分析乳腺癌及正常乳腺細胞株膜,尋找差異蛋白,為乳腺癌亞細胞蛋白水平標志物的研究奠定基礎。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 細胞 人類乳腺正常細胞株HBL-100購自上海中科院細胞庫,人類乳腺癌細胞株MDA-MB-231及MCF-7均由重慶醫科大學惠贈。

1.1.2 主要試劑及來源 細胞膜蛋白提取試劑盒購自Sigma公司,小牛血清,1640培養基,0.25%胰酶均購自GIBCO公司,TritonX-114購自Amresco公司,芥子酸(SPA)、乙腈(ACN)、三氟乙酸(TFA)、細胞色素C和肌紅蛋白均購自Sigma公司。

1.1.3 主要儀器 CO2培養箱由德國Heraeus生產;表面增強激光解吸蛋白飛行時間質譜(SELDITOF-MS)儀、Au蛋白質芯片為Ciphergen公司產品;Vortex-Genie 2渦旋振蕩器為美國Scientific Industries公司產品。

1.2 方法

1.2.1 細胞培養與收集細胞MDA-MB-231,MCF-7,HBL-100培養于含有10%的小牛血清的RPMI-1640培養基中,細胞貼壁70-90%時傳代,加入PBS洗2次,2×107每管凍于-80℃冰箱保存。

1.2.2 膜蛋白蛋白的分離純化 膜蛋白的分離純化按照試劑盒說明進行,步驟為:①每管細胞中加入600μl的裂解液,冰浴10min,②4℃×10 000g離心細胞5min,轉移上清至以新的管中,③37℃孵育5min,可以觀察到液體變為云霧狀渾濁。④37℃×3 000g離心3min,棄上清下部沉淀為細胞膜脂筏蛋白和疏水性蛋白。

1.2.3 丙酮沉淀 加預冷丙酮至膜蛋白提取物,-20℃冰箱沉淀過夜,4℃×12 000g離心10min,棄上清重復丙酮沉淀即為膜蛋白,加4‰Tritonx-114充分溶解。

1.2.4 蛋白定量 Olympus AU 2700生化分析儀檢測各管中蛋白量,用4‰TritonX-114調節樣品濃度為100μg/μl。

1.2.5 質量校準 SELDI-TOF-MS儀每次使用前,采用蛋白標準品胰島素、細胞色素C和肌紅蛋白對SELDI-TOF-MS進行相對分子質量校準,確保系統的質量偏差范圍控制在0.1%以內。

1.2.6 SELDI-TOF-MS分析蛋白指紋圖譜 10 μl 50%飽和SPA(能量分子,含50%ACN和0.5%TFA)與經過處理的等體積膜蛋白樣品混合,上樣Au蛋白芯片,每孔4μl,每個標本重復2條芯片,每條2個點,待干后每孔重復加入1μl SPA2次,完全干燥后,選擇激光強度為190,靈敏度為8,SELDITOF-MS分析蛋白指紋圖譜,Protein-chip Software Bio-maker自動采集數據。

1.2.7 數據收集處理 采用Biomarker Wizard 3.1軟件對乳腺癌和正常乳腺細胞線粒體蛋白質分別進行指紋圖譜分析,設定有意義的蛋白質峰出現頻率閾值為10%,分別設定5,2兩次信噪比(S/N)過濾。確定兩組間蛋白質峰值比較時,對初步篩選的蛋白質峰進行t檢驗,以P<0.05篩選差異蛋白。

1.2.8 溶劑影響 4‰TritonX-114與SPA等量混合,按照1.2.6條件點樣分析蛋白指紋圖。

1.2.9 長期凍存對結果影響 選擇-80℃凍存達3-6個月的細胞,提取膜蛋白分析指紋圖譜,與新收集細胞膜蛋白指紋圖譜比較,觀察兩者蛋白峰數目及豐度有無統計學差異。

2 結果

2.1 細胞膜蛋白指紋圖譜分析結果

經蛋白指紋圖譜標準化后,MDA-MB-231和MCF-7與HBL-100相比,膜蛋白差異點分別為32個和34個(P<0.05),其中7.8kD,8.3kD和8.8 kD的蛋白在兩株癌細胞中表達均降低,9.6kD的蛋白在兩株癌細胞中表達均增高,見表1和圖1、2。

表1 乳腺正常細胞膜與乳腺癌細胞膜差異蛋白(kD)

圖1 分子量7.8kD和8.3kD的差異蛋白指紋圖

圖2 分子量8.8kD和9.6kD的差異蛋白指紋圖

2.2 溶液對結果影響分析

蛋白指紋圖譜分析4‰TritonX-114點樣Au蛋白芯片后除基質峰外無任何蛋白峰,證明該濃度TritonX-114對結果分析無影響,見圖3。

圖3 芯片洗滌后點樣4‰TritonX-114分析圖譜

2.3 長期凍存對結果影響分析

新鮮提取細胞與凍存3-6個月的細胞線粒體蛋白指紋圖譜比較,兩者在蛋白峰的數量和豐度上均無統計學差異(P>0.05),表明在此時間范圍內保存不影響結果分析,見圖4。

圖4 新鮮細胞與凍存細胞膜蛋白指紋圖譜

3 討論

細胞膜蛋白約占蛋白總量的1/3,在信號傳遞,物質轉運方面發揮重要的作用,腫瘤細胞膜蛋白連接數量少而且發育差,微絨毛數量增多,一些質膜蛋白如受體蛋白、轉運蛋白、黏附蛋白、抗原蛋白等過量表達、缺失或發生修飾,使細胞的信號轉導、物質運輸、黏附作用、免疫原性等發生改變,與腫瘤細胞的惡性行為如侵襲和轉移密切相關。同時膜蛋白是藥物作用靶點之一,目前80%臨床使用藥物的靶點都集中在膜蛋白上,細胞膜蛋白改變時,會引起細胞對藥物的反應改變,導致化療失敗。在乳腺癌中,Jensen等[5]研究發現一種以γ-氨基丁酸A型受體為配體的氯離子通道蛋白異常表達。Garcia Pedrero JM[6]等發現AnnexinA1在乳腺癌中表達下調,其下調程度與其上皮分化狀態、局部淋巴結轉移程度、組織病理學分級密切相關,惡性程度越高,表達下調程度越明顯。Adam P J等[7]通過對乳腺癌細胞質膜大規模蛋白質組學分析,建立了500多個的蛋白的乳腺癌細胞質膜蛋白數據集,其中27%功能未知,進一步的定位實驗、相互作用分析和免疫組化發現了3個以前未鑒定的蛋白質BCMP11、BCMP84和BCMP101可能在癌變過程中起作用。

SELDI-TOF-MS問世以來,因其分析速度快,相對分子質量范圍大,可以有效捕獲低分子量、低豐度的蛋白的特點,在亞細胞蛋白研究中得到極大的應用,已通過SELDI-TOF-MS在乳腺癌全細胞蛋白研究中捕獲標志物[8]。本實驗利用SELDI-TOFMS檢測兩株乳腺癌及一株乳腺正常上皮細胞株膜蛋白,發現分子量7.8kD,8.3kD和8.8kD的蛋白在兩株癌細胞中表達均降低,分子量9.6kD的蛋白在兩株癌細胞中表達均增高。同時本實驗選擇的Au芯片,與以往CM10,WCX等相比,可以重復利用,成本極低,適合大面積篩查。在標本保存時間上,比較-80℃凍存3-6月的細胞膜蛋白與新鮮細胞膜蛋白指紋圖譜,發現兩者在蛋白峰數目及豐度均無統計學差異,表明在此范圍內保存不影響指紋圖譜分析,與既往研究一致[9]。提示本實驗可用于長期保存標本的研究。

本實驗在亞細胞水平初步篩選出了乳腺癌特異性蛋白,但能否將篩選的蛋白用于乳腺癌的診斷,還有很長的路要走。在下一步實驗中,我們對差異蛋白分離、純化和鑒定,同時收集各種類型的臨床標本進行驗證,以期為乳腺癌標志物研究鑒定更多依據。

[1]Jemal A,Tiwari RC,Murray T,et al.Cancer statistics[J].CA Cancer J Clin.2004,54(1):8.

[2]Chagpar AB,McMasters KM.Trends in mammography and clinical breast examination:apopulation-based study[J].J Surg Res,2007,140(2):214.

[3]Hinestrosa MC,Dickersin K,Klein P,et al.Shaping the future of biomarker research in breast cancer to ensure clinical relevance[J].Nat Rev Cancer,2007,7(4):309.

[4]Kanzaki A,Yoi M,Nakayama K,et al.Expression of multidrug resistanc-related transporters in human breast carcinoma[J].J Cancer Res,2001,92(4):452.

[5]Roberts SS,Mendona-Torres MC,Jensen K.et al.GABA receptor expression in benign and malignant thyroid tumors[J].Pathol Oncol Res.,2009,15(4):645.

[6]Garcia Pedrero JM,Fernandez MP,Morgan RO ,et al.Annexin A1down-regulation in head and neck cancer is associated with epithelial differentiation status[J].Am J Pathol,2004,164(1):73.

[7]Adam P J,Boyd R,Tyson KL,et al.Comprehensive proteomic analysis of breast cancer cell membranes reveals unique proteins with potential roles in clinical Cancer[J].J Biol Chem,2003,278(8):6482.

[8]Mannel F,Medda V,Tonti GA,et al.Protein profile analysis of the breast microenvironment to differentiate healthy women from breast cancer patients[J].Expert Rev Proteomics,2009,6(1):43.

[9]Leong S,Christopherson RI,Baxter RC,et al.Profiling of apoptotic changes in human breast cancer cells using SELDI-TOF mass spectrometry[J].Cell Physiol Biochem,2007,20(5):579.

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