李飛飛,黃佳斌,陳 珍,陳 彤,鮑思偉
(臺州學院 生命科學學院,浙江 臺州 318000)
日本薯蕷(Dioscorea japonica Thunb.)別名尖葉薯蕷,又名野山藥,根莖中提取的薯蕷皂甙元(通稱薯蕷皂素)是合成性激素和甾體類激素的重要原料,廣泛用于治療癌癥、心腦血管疾病、呼吸道疾病等,也可作為避孕藥物等[1,2]。日本薯蕷生長于向陽山坡的灌叢中或林下,分布于西南、華南、華中、華東各地。由于薯蕷屬植物的藥用價值高,在醫(yī)藥生產(chǎn)過程中原料需求量大而導致過度采挖,以致野生資源瀕臨枯竭。薯蕷地下根莖的自然恢復需要3~5年,且其種子的萌發(fā)比較困難,在自然狀況下僅1%左右的種子能夠成苗,生產(chǎn)原料的供需矛盾十分突出[3-5]。利用植物組織培養(yǎng)技術實現(xiàn)日本薯蕷的快速繁殖,有望解決上述問題。作者調(diào)查發(fā)現(xiàn),日本薯蕷在浙江臺州的天臺、臨海等縣市的山區(qū)有廣泛分布。為開發(fā)利用本地中藥材資源,我們開展了日本薯蕷的組培快繁研究。
日本薯蕷(Dioscorea japonica Thunb.)采自浙江省天臺縣華頂山。
1.2.1 材料的消毒
春季,剪取日本薯蕷當年生植株,用洗潔精清洗后流水沖洗約30 min。轉(zhuǎn)置超凈工作臺進行植株表面消毒,75%酒精漂洗30 s,無菌水沖洗3~4次,再投入到0.1%升汞溶液中浸泡10 min,無菌水沖洗4~5次,切取帶節(jié)莖段為外植體,接種至各種固體培養(yǎng)基上(添加活性炭0.15%,蔗糖3%)(表1)。
1.2.2 塊莖誘導
切取單個芽接種至附加細胞分裂素6-芐氨基腺嘌呤 (6-BA)1.0 mg/L和生長素α-萘乙酸(NAA)0.1 mg/L及活性炭(AC)0.15%與蔗糖3%的MS基本培養(yǎng)基中,觀察根和塊莖的誘導情況。
將日本薯蕷的無菌帶節(jié)莖段接種于表1所列的培養(yǎng)基中,5~6 d后能看到芽點萌動,10 d后能明顯看出所選培養(yǎng)基均可誘導腋芽的萌發(fā),14 d后在不同培養(yǎng)基中的外植體長勢逐漸出現(xiàn)差異,20 d后外植體在含有激素的培養(yǎng)基中形成叢生芽(圖1)。統(tǒng)計結果表明,細胞分裂素6-BA濃度在1.0~2.0 mg/L,生長素NAA濃度在0.2~1.0 mg/L時,均能誘導叢生芽,葉片顏色濃綠,苗健壯。當NAA濃度相同時,芽萌發(fā)數(shù)隨著6-BA濃度的升高而增多,但芽萌動時間相對較遲;當6-BA濃度都為2.0 mg/L時,NAA為0.5 mg/L芽的誘導率和增殖率都最高。因此可選用MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L+AC 0.15%為日本薯蕷不定芽誘導和增殖培養(yǎng)基。

表1 不同濃度6-BA和NAA對日本薯蕷不定芽誘導和增殖的影響Table 1 Effects of different concentrations of 6-BA and NAA on the induction and multiplication of bud of Dioscorea japonica

圖2 日本薯蕷的生根培養(yǎng)Fig.2 Formation of adventitious root of Dioscorea japonica
切取叢生芽接種至MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L+AC0.15%的培養(yǎng)基中,半個月后可誘導生根(圖2)。繼續(xù)培養(yǎng)至2~3個月,靠近培養(yǎng)基的節(jié)間也生出不定根,同時在基部誘導形成塊莖(圖3和圖4)。

圖3 日本薯蕷的生長和塊莖的誘導Fig.3 Growth and tuber induction of Dioscorea japonica

圖4 日本薯蕷組培條件下誘導的塊莖Fig.4 Tuber of Dioscorea japonica from tissue culture
薯蕷是重要的經(jīng)濟植物,所含薯蕷皂甙元具有較高的開發(fā)利用價值,被廣泛用于醫(yī)藥、食品和衛(wèi)生保健等方面。隨著甾體激素類藥物的廣泛應用,國內(nèi)外市場對薯蕷皂素的需求量不斷增加,薯蕷市場的供需矛盾十分突出。一些重要薯蕷,如穿龍薯蕷、菊葉薯蕷、盾葉薯蕷等,通過葉片、葉柄、莖段、胚乳等外植體進行的組織培養(yǎng)已經(jīng)繁殖成功[6-10],但日本薯蕷的離體快繁及微塊莖的誘導還有待研究。為更好地開發(fā)利用本地中藥材,本研究小組選擇日本薯蕷的葉片和葉柄成功誘導了愈傷組織,不定芽的分化還在繼續(xù)研究中。
莖段外植體較易誘導腋芽的萌發(fā)和不定芽的增殖。黃鳳翔等[11]的研究結果表明,與6-BA相比,6-糠氨基嘌呤(激動素,KT)對菊葉薯蕷外植體誘導效果較差。因此本文以細胞分裂素6-BA和生長素NAA的組合來試驗其對日本薯蕷不定芽形成與增殖的影響,結果表明低濃度的6-BA能啟動不定芽的形成,但增殖系數(shù)不高;隨著其濃度的增加,叢生芽系數(shù)增加;但濃度過高則又抑制芽的增殖和莖葉的生長。這與李光明和劉文海[5]、黃鳳翔等[11]和陳鳳清等[12]在盾葉薯蕷、菊葉薯蕷和穿龍薯蕷等的組培快繁優(yōu)化研究時的發(fā)現(xiàn)均一致。生長素濃度過高容易導致細胞和液泡較大而不利再生苗的誘導[12]。本實驗也觀察到中低濃度的NAA更適合日本薯蕷叢生芽的生長。活性炭能吸附培養(yǎng)基中的有害物質(zhì),包括瓊脂中的雜質(zhì)、培養(yǎng)物分泌的酚、醌類物質(zhì)以及蔗糖在高壓消毒時產(chǎn)生的5-羥甲基糠醛等,從而有利于外植體的生長。我們在研究中發(fā)現(xiàn)活性炭的添加有利于薯蕷不定芽的增殖和塊莖的誘導。
同時我們首次在實驗中獲得了微塊莖,為實驗室內(nèi)大量繁殖日本薯蕷塊莖奠定了基礎。研究表明調(diào)節(jié)激素種類和比例、提高蔗糖含量、改變光照、添加矮壯素(CCC)或者多效唑(PP333)等均可提高薯蕷、半夏等塊莖或試管姜及試管薯的產(chǎn)量[13-16]。進一步試驗日本薯蕷塊莖誘導的最佳條件,可縮短誘導時間和提高產(chǎn)量和質(zhì)量。
[1]蔣玉寶,于元杰.薯蕷植物組織培養(yǎng)的研究進展[J].生物技術,2006,16(4):93-97.
[2]龍雯虹,郭華春,高星,等.3種薯蕷屬植物珠芽糖類含量變化與莖葉生長的關系[J].西北植物學報,2009,29(6):1187-1192.
[3]王軍,張金蓮,李少峰等.盾葉薯蕷組培誘導分化實驗研究[J].云南農(nóng)業(yè)科技,2006,3:23-24.
[4]黃濤,張友德,張君芝等.溫度、光照和幾種藥劑對黃姜種子萌發(fā)的影響[J].華中農(nóng)業(yè)大學學報,1999,18:83-83.
[5]李光明,劉文海.盾葉薯蕷組織培養(yǎng)快速繁殖技術的優(yōu)化研究[J].湘潭師范學院學報,2005,27(4):45-48.
[6]Alizadeh S, Mantell S H, Viana A M.In vitro shoot culture and microtuber induction in the steroid yam Dioscorea composita Hemsl[J].Plant Cell,Tissue and Organ Culture, 1998, 53:107-112.
[7]Ozel C A, Khawar K M, Mirici S, et al.Factors affecting in vitro plant regeneration of the critically endangered Mediterranean knapweed (Centaurea tchihatcheffii Fisch et.Mey) [J].Naturwissenschaften,2006, 93(10):511-517.
[8]羅鳳霞,祝朋芳,周廣柱,等.穿龍薯蕷的組織培養(yǎng)與快速繁殖[J].植物生理學通訊,2004,40(3):329.
[9]李國林,杜曉英,付艷華,等.菊葉薯蕷的快速繁殖研究[J].氨基酸和生物資源,2004,26(4):20-22.
[10]郭永兵,江道菊,李特林.盾葉薯蕷胚乳的組織培養(yǎng)[J].北方園藝,2007,(10):175-177.
[11]黃鳳翔,管艷,梁國平,等.不同植物激素用量對菊葉薯蕷組織培養(yǎng)的影響[J].熱帶農(nóng)業(yè)科技,2007,30(2):21-23.
[12]陳鳳清,付楊,孫冬雪,等.穿龍薯蕷的微塊莖離體誘導及再生植株的建立[J].東北師范大學報自然科學版,2005,37(4):90-93.
[13]張宗勤,撒文清,劉建才.叉蕊薯蕷的微繁殖及微型薯蕷的離體誘導[J].生物技術,1998,8(1):18-20.
[14]張愛民,楊生玉,薛建平,等.多種因素對半夏外植體直接誘導形成試管小塊莖的影響[J].中國中藥雜志,2005,30(8):576-578.
[15]薛建平,黃月琴,張愛民. 懷姜試管姜誘導技術的研究[J].中國中藥雜志,2007,32(16):1621-1624.
[16]寧志珩,呂國華,賈曉鷹. 脫毒馬鈴薯試管薯誘導技術探索[J].中國馬鈴薯,2007,21(1):33-38.