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貞芪扶正注射液的提取純化工藝研究

2012-10-16 01:15:38張峻穎黃羅生
實用藥物與臨床 2012年12期
關鍵詞:工藝

張峻穎,付 瑛,黃羅生

貞芪扶正注射液是根據“扶正培本、扶正驅邪”的祖國醫學理論,以黃芪與女貞子等中藥為原料制成的復方注射液,具有補氣養陰、調節免疫功能的作用[1-2]。其中黃芪多糖是黃芪中含量最多、免疫活性最強的一類物質[3]。大量的研究表明,黃芪多糖具有免疫調節、抗腫瘤、抗炎、抗病毒、抗氧化、抗輻射、降血脂、降血糖、保肝等多種功能[4-5]。女貞子多糖主要由鼠李糖、阿拉伯糖、葡萄糖及巖藻糖4種糖組成,臨床上常與其他中藥配伍,用于治療腫瘤及改善化療后的白細胞減少等癥狀[6]。本實驗采用4因素3水平正交試驗L9(34),選擇多糖為綜合考察指標,優化貞芪扶正注射液的提取純化工藝,為其進一步開發、利用提供實驗依據。

1 儀器與試藥

GW751分光光度計,D-(+)-葡萄糖標準對照品(中國藥品生物制品鑒定所);中空纖維超濾器(10 K,外流型),北京市旭成超濾設備廠;BS-100A自動部分收集器,上海滬西分析儀器廠。

黃芪購自甘肅,經鑒定其原植物為蒙古黃芪,女貞子產地浙江,經鑒定為木犀科植物女貞的干燥成熟果實;甲醇、乙腈為色譜純,其余試劑均為分析純。

2 方法與結果

2.1 正交試驗設計[7-8]按L9(34)表條件對女貞子與黃芪進行多糖的提取和測定,其收率與含量的加權平均值計入綜合評判,并以其作為考察指標。為了提高統計分析的可靠性,每一個條件下都進行重復試驗(n=2),測定結果取其平均值供統計分析用。因素水平表見表1。

表1 因素水平表

2.2 多糖的提取與收率測定 取黃芪和女貞子藥材,粉碎成粗粉,各稱取100 g,按L9(34)組合試驗條件進行提取,合并提取液,濾過;減壓濃縮成每1 mL相當于1 g生藥的藥液,加乙醇至含醇量達90%,靜置24 h,濾過;沉淀用95%的乙醇洗滌,揮盡乙醇,取沉淀加適量蒸餾水溶解,再加乙醇至含醇量達80%,靜置24 h,離心濾過。沉淀用無水乙醇洗滌,減壓過濾,低溫干燥,即得多糖粗品,稱重,與取藥材量相比,即得收率。

2.3 5%苯酚溶液的配制 取苯酚100 g,加鋁片0.1 g和碳酸氫鈉0.05 g,蒸餾,收集182℃餾分,稱取10 g置棕色瓶內,加水溶解并稀釋至200 mL,搖勻,置冰箱中備用。對照品溶液的制備:精密稱取105℃干燥至恒重的無水葡萄糖對照品25 mg,置100 mL量瓶中,加水溶解并稀釋至刻度,搖勻。

2.4 標準曲線繪制[9]取經105℃干燥至恒重的葡萄糖25 mg,精密稱定,置100 mL量瓶中,加水溶解并稀釋至刻度,搖勻,作為儲備液。精密量取儲備液 0、1.0、2.0、4.0、5.0、6.0、7.0 mL 共 7份,分別置25 mL量瓶中,加水稀釋至刻度,搖勻。各精密量取2.0 mL,置具塞試管中,再加入5%苯酚溶液1.0 mL,搖勻,迅速滴加濃硫酸5.0 mL,搖勻,放置5 min,置水浴中加熱15 min,取出,迅速冷卻至室溫。于490 nm波長處測定吸收值(A),以A為縱坐標、葡萄糖對照品量為橫坐標(C),進行回歸計算,得回歸方程A=4.221C-0.022(r=0.999 1)。

2.5 樣品含量測定 取“2.2”項下所得粗多糖約50 mg,105℃干燥至恒重,精密稱定,置于50 mL量瓶中,加水溶解并稀釋至刻度,搖勻,精密量取10 mL,置100 mL量瓶中,加水稀釋至刻度,搖勻,作為供試品溶液。精密量取供試品溶液2.0 mL,按“2.4”項下自“再加入5%苯酚溶液1.0 mL”起,依法測定吸收值。并依回歸方程計算,得多糖的相對含量。為了與收率在綜合分中占有相同重要地位,將其實際測得值縮小為原值的1/100供統計分析。

2.6 方差分析結果 見表2。

表2 方差分析表

將正交設計試驗結果進行方差分析,結果表明,因素A(提取次數)差異有統計學意義(P<0.05),因素B(提取時間)及C(加水倍數)差異無統計學意義(P>0.05)。因此,程度依次為A>C>B。各因素的最佳水平可確定為A3B1C1,即加8倍量水,煎煮3次,每次1.5 h。

2.7 驗證實驗 按照理論最佳工藝A3B1C1,進行驗證實驗,結果得率為2.0%,粗多糖含量為28.54%,得率及粗多糖含量較高,認為正交試驗得出的結果可靠,且工藝穩定可行。

2.8 超濾法純化貞芪總多糖 貞芪多糖中分子量在3 000~40 000的多糖是產生有效作用的物質[10]。貞芪多糖原液用裝有能切割3 000~40 000分子量中空纖維超濾膜的超濾裝置過濾,除去相對分子量>4萬的樹膠等大分子物質。而影響超濾的主要因素有原液濃度(C)和壓力(P),采用正交試驗設計[L4(22)]對其進行優化。據多糖自身特點,濃度選擇0.25 mg/mL(C1)和0.50 mg/mL(C2),壓力選擇0.15 MPa(P1)和0.20 MPa(P2),流速為20 mL/min;將膜上液和膜下液分離,膜上液棄去不用,收集膜下液,為相對分子量3 000~40 000餾分,冷凍、干燥,得分離產物,得貞芪總多糖,將多糖的得率和多糖含量作為考察指標,考察超濾效果,結果見表3。

表3 超濾結果比較

由表1可見,超濾過程中,在原液濃度0.5 mg/mL、壓力0.2 MPa下結果最好,其多糖的含量為59.4%。

2.9 貞芪扶正注射液的制備工藝 取上述步驟制備的貞芪總多糖,加適量注射用水使溶解,加等滲調節劑適量,用注射用水配成溶液,加入0.1%的針用活性炭,煮沸15~20 min,過濾,調節pH值至7.0~7.5,濾過;100℃流通蒸汽滅菌40 min,即得。

3 討論

中藥活性多糖作為生物免疫調節劑,通過提高機體的免疫功能,如增強細胞免疫和體液免疫作用達到抗腫瘤目的。

本研究采用傳統的水提醇沉法制備貞芪多糖,并利用正交試驗篩選最佳工藝條件,該方法簡便易行,資源利用率高,生產成本低。

根據上述試驗,貞芪多糖的提取純化方案可確定為:藥材加8倍量水,煎煮3次,每次1.5 h。合并提取液,濾過;減壓濃縮成每1 mL相當于1 g生藥的藥液,加乙醇至含醇量達90%,靜置24 h,濾過;沉淀用95%的乙醇洗滌,取沉淀加適量蒸餾水溶解,再加乙醇至含醇量達80%,靜置24 h,離心濾過。沉淀用無水乙醇洗滌,減壓過濾,低溫干燥,得粗多糖。取0.5 mg/mL粗多糖原液可用裝有能切割3 000~40 000分子量中空纖維超濾膜的超濾裝置過濾,壓力為 0.2 MPa,流速為20 mL/min,將膜上液和膜下液分離,收集膜上液,為相對分子量3 000~40 000餾分,冷凍、干燥,得貞芪總多糖。

為了除去雜質并最大限度保留有效成分,傳統的提取純化工藝經常采用在濃縮的水提液中,加入適量乙醇以除去其中的淀粉、小分子糖、單糖和蛋白質等雜質。

本研究采用膜分離技術代替了醇沉工藝,僅在膜分離之前采用醇沉作為前處理步驟。膜分離技術是一項新興的高效分離技術,被公認為是20世紀末到21世紀中期最有發展前途的重大高新生產技術之一,目前已廣泛應用于醫藥、食品、化工、環保等多個領域[11]。在中藥制藥企業中,主要用于去除藥液中大量的鞣質、淀粉、蛋白質等非藥用大分子物質,增加藥品的澄明度和制劑質量。從本試驗結果可以看出,使用超濾法分離多糖切實可行,且具有操作簡單、節能、無污染、可在常溫下連續操作等優點。但前提條件是,必須知道所要分離的多糖的相對分子量,這樣才能有效地選取中空纖維超濾柱截留值,否則必須通過預選才能確定截留值。另外,超濾時壓力不易過大,過大會影響膜的壽命。

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