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轉錄因子基因Mfhb-1的表達對苜蓿體細胞胚胎發生過程中營養元素含量的影響

2012-04-29 09:17:34周巖何男男魏琦超張勝利薛曉鋒趙俊杰
湖北農業科學 2012年6期

周巖 何男男 魏琦超 張勝利 薛曉鋒 趙俊杰

摘要:Mfhb-1基因是在苜蓿體細胞胚胎發生誘導早期經扣除雜交得到的HD-Zip Ⅰ類轉錄因子基因,相關研究表明,Mfhb-1基因在苜蓿體細胞胚胎發生誘導的早期可能發揮重要作用。為了進一步探討Mfhb-1基因的生物學功能與營養元素吸收的關系,試驗以經2,4-D誘導的苜蓿幼嫩葉片的葉肉細胞為材料,利用電感耦合等離子體發射光譜技術,對Mfhb-1基因的正義、反義轉化植株體細胞胚胎發生發育過程中的10種營養元素含量進行了測定。結果顯示,Mfhb-1基因的表達可能在苜蓿體細胞胚胎發生誘導初期促進了對Na元素的吸收,同時抑制了對Mg、Zn元素的吸收;Cu、K、Fe、Mn等元素的含量變化可能受Mfhb-1基因表達的影響較小。不過Mfhb-1基因表達與營養元素吸收的關系,以及進而如何影響苜蓿體細胞胚胎發生的詳細分子作用機理等有待于進一步研究。

關鍵詞:苜蓿;Mfhb-1基因;HD-Zip轉錄因子;體細胞胚胎;營養元素;電感耦合等離子體發射光譜技術

中圖分類號:S541+.1;Q786;Q813.7 文獻標識碼:A文章編號:0439-8114(2012)06-1165-06

Effect of the Expression of Transcription Factor Gene Mfhb-1 on the Content of Nutrient Elements in the Somatic Embryogenesis in Medicago falcata

ZHOU Yan1,HE Nan-nan1,2,WEI Qi-chao1,ZHANG Sheng-li1,XUE Xiao-feng1,ZHAO Jun-jie1

(1. School of Life Science and Technology, Henan Institute of Science and Technology, Xinxiang 453003, Henan, China;

2. Hongqi Farm of the Sixth Agricultural Division, Xinjiang Production Crops, Changji 831702,Xinjiang, China)

Abstract: The gene named Mfhb-1 which was isolated during the induction of the early stages of somatic embryogenesis in Medicago falcata L. by subtractive cDNA cloning technology belonged to a kind of HD-Zip I transcription factor gene. Relevant studies had indicated that the Mfhb-1 gene closely associated to somatic embryogenesis in M. falcata. In this study, young leaf cell from sense and antisense transgenic plants with Mfhb-1 gene was inducted by 2,4-D to process the somatic embryogenesis, 10 kinds of nutrient elements were surveyed by inductively coupled plasma emission spectroscopy(ICP-AES) technology. The results showed that the expression of Mfhb-1 gene most likely promoted the increase of the content of Na elements while inhibited the content of Mg, Zn element during the somatic embryogenesis in M. falcata; Alternatively, the expression of Mfhb-1 had not showed an obvious impact on the change of the content of Cu, K, Fe and Mn, respectively. Further study would be required to illustrate the relationship between the expression of Mfhb-1 gene and the content of nutrient elements so that to take a step leading to reveal the insight of the detailed molecular mechanism of the Mfhb-1 gene.

Key words: Medicago falcata L.; Mfhb-1 gene; HD-Zip transcription factor; somatic embryo; nutrient element; inductively coupled plasma emission spectroscopy

苜蓿(Medicago falcata L.)是研究植物體細胞胚胎發生的典型模式植物之一,Mfhb-1基因是在苜蓿體細胞胚胎發生誘導早期,經扣除雜交得到的 同源異型域——亮氨酸拉鏈蛋白(Hemeodomain leuzine zipper,HD-Zip)Ⅰ類轉錄因子基因。為了研究該基因的生物學功能,在前期利用正義、反義轉化技術將該基因導入到了苜蓿中,并已得到該基因過量表達和低量表達的轉化植株[1,2]。

轉錄因子對各種功能基因的調控作用可能受到光照、植物激素、低溫等逆境條件的影響。營養元素是植物體內一系列生理生化反應的關鍵輔助因子,因而在參與調控植物早期生長發育及其植物形態構建的過程中發揮著重要作用。前期研究結果顯示,基因的表達可能與苜蓿體細胞胚胎發生過程密切相關[1],但具體的分子機理尚不清楚。本研究利用電感耦合等離子體發射光譜(Inductively coupled plasma emission spectroscopy,ICP-AES)法檢測Mfhb-1基因正義、反義轉化植株體細胞胚胎發生過程中的10種營養元素含量,以探討Mfhb-1的過量表達或低量表達對苜蓿體細胞胚胎發生過程中營養元素的吸收產生的影響,從而確定在苜蓿體細胞胚胎發生過程中該基因表達與營養元素含量變化的關系,進而為全面揭示Mfhb-1基因作用的分子機理提供相關的研究方法和理論依據。

1材料與方法

1.1植物材料

試驗所用的苜蓿材料共有4 種,分別是47/1-5、D3、F4、C5;其中47/1-5為苜蓿未轉化的材料,作為試驗的對照;D3、F4和C5是以 47/1-5為起始材料經轉化得到的轉化體,D3為攜帶Mfhb-1基因編碼區反向序列的反義轉化植株;F4為攜帶Mfhb-1 基因編碼區序列的正義轉化植株;C5為攜帶全長 Mfhb-1基因,包括編碼區以及該編碼區上游的保守序列開放閱讀框(upstream open reading frames,uORF)序列的正義轉化植株。4 種苜蓿材料均在MS固體培養基、22 ℃、光照時間16 h/d的條件下進行試驗材料的擴大培養。

參照Denchev等建立的的苜蓿直接體細胞胚胎發生體系[3],取培養8~12 d的植株,剪下靠近頂端的葉片約 12片,在含有少許 B5O培養基的培養皿里切成小塊,然后吸出液體,把切碎的葉片轉入含有40 mL B5Ⅳ(2,4-D 4.0 mg/mL)培養基的100 mL三角瓶里,進行液體懸浮振蕩培養,直接誘導其體細胞胚胎發生,誘導時間為18 d。然后轉入B5/3 M培養基中,使前期葉肉細胞懸浮培養物繼續發育,每 10 d 更換培養基一次,共發育培養30 d。培養條件為溫度 22 ℃、光照時間16~18 h/d、轉速為120 r/min。在苜蓿體細胞胚胎發生誘導培養的開始、第五天、第十天、第十五天、第十八天和發育培養的第十天、第二十天、第三十天分別取材,并稱取1 g培養物,3次重復,經液氮速凍后放入超低溫冰箱(-80 ℃)中保存,待用。

將材料從超低溫冰箱中取出后放入烘箱中,105 ℃殺青3 h,80 ℃烘干至恒重,轉移至瓷坩堝中,用馬弗爐200 ℃ 炭化1 h、400 ℃灰化3 h,至灰化完全(無黑色顆粒)后取出冷卻,加 3 mL HCl-HClO4(4∶1,體積比)混合液混勻,在電阻板上加熱至完全溶解,定容至10 mL。

1.2Mfhb-1基因結構

Mfhb-1基因正義與反義結構如圖1所示,在圖1中,Construct 2為攜帶Mfhb-1基因編碼區上游的開放閱讀框(uORF)序列;Construct 3為Mfhb-1基因反義編碼區,D3 植株攜帶該片段;Construct 4為Mfhb-1基因正義編碼區(CDS),F4植株攜帶該片段;Construct 5為Mfhb-1基因全長序列(開放閱讀框+編碼區序列),C5植株攜帶該片段。

1.3主要試劑與設備

HCl、HClO4、HNO3均為分析純,由天津德恩化學試劑有限公司生產;試驗用水均為超純水,由德國SG公司Ultra Clear UV Plus超純水機現制現用。

使用Optima 2100 DV電感耦合等離子體原子發射光譜儀(美國PerkinElmer公司),垂直觀測,觀察位置自動優化;雙陣列背投式固態CCD檢測器光學系統、RYTON材料霧化器、內置式三通道蠕動泵、40.68 MHz 自激式固態高頻發生器、空氣切割消除尾焰技術系統、Polyscience循環水冷卻系統等均為實驗室原已具備的儀器。

營養元素標準溶液儲備液為Cu、Fe、Zn、Mn、Na、K、Ca、Mg、Se、Co 混合標準液,濃度均為1 000 μg/mL(德國默克公司)。將標準儲備液用體積分數為2% 的 HNO3逐級稀釋,Cu、Fe、Zn、Mn、Na、K、Ca、Mg、Se、Co等混合標準液按0.00、0.50、1.00、2.00、4.00、8.00 μg/mL梯度進行配制。

1.4ICP-AES工作參數

用ICP-AES檢測樣品溶解液中Cu、Fe、Zn、Mn、Na、K、Ca、Mg、Se、Co的離子濃度,ICP-AES儀器工作參數分別是工作功率1.3 kW、輔助氣體流量0.2 L/min、冷卻氣體流量15.0 L/min、載氣0.8 L/min、進樣泵流量1.5 L/min,

2結果與分析

2.1分析波長的選擇及背景的校正

ICP-AES法對每種營養元素的測定都可以同時選擇多條特征譜線,且具有同步背景校正功能。因此,試驗過程中對每種檢測營養元素同時選取2~3條譜線進行測定,綜合分析強度、干擾情況及穩定性,選擇譜線干擾少、精密度高的分析線。各營養元素的分析波長選擇結果分別是Cu 324.75 nm、Fe 259.93 nm、Zn 213.85 nm、Mn 257.61 nm、Na 589.59 nm、K 766.49 nm、Ca 317.93 nm、Mg 279.07 nm、Se 196.02 nm、Co 228.85 nm。

2.2回歸方程和相關系數

按選擇的工作條件檢測各營養元素在配制好的系列梯度濃度的標準品混合溶液下的峰面積,用峰面積(y)對標準液濃度(x,μg/mL)繪制標準工作曲線。各營養元素的線性方程和相關系數見表1。

2.3樣品測定結果

經ICP-AES檢測,4種苜蓿材料中Co元素和Se元素含量的測定結果為負值,低于系統檢出限;其他8種營養元素的測定結果見圖2,其中圖2A為Ca元素的含量動態變化,圖2B為Mg元素的含量動態變化,圖2C為Na元素的含量動態變化,圖2D為Zn元素的含量動態變化,圖2E為Cu元素的含量動態變化,圖2F為K元素的含量動態變化,圖2G為Fe元素的含量動態變化,圖2H為Mn元素的含量動態變化。

由4種苜蓿材料體細胞胚胎發生發育過程中各營養元素含量動態變化可以看出,Ca元素在4種苜蓿材料體細胞胚胎發生發育過程中均表現出先下降后上升再下降并保持平穩的變化趨勢,在誘導培養階段的第五天,4種苜蓿材料的Ca元素含量由高到低表現為F4、47/1-5、C5、D3;在誘導培養后期(18 d),C5和F4的Ca元素含量上升,D3和47/1-5的Ca元素含量保持平穩的態勢。

Mg元素含量在4種苜蓿材料體細胞胚胎發生發育過程中的動態變化較為復雜。在體胚誘導培養階段內,除47/1-5表現出先下降后上升的趨勢外,D3、F4和C5均表現出先上升后下降的變化,而D3的峰值在誘導培養階段的第十天出現,早于C5的第十五天,也早于F4的發育培養階段第十天。Mg元素含量在發育培養階段的初期(發育培養10 d)還有一個高峰出現,此時4種苜蓿材料的Mg元素含量由高到低分別為F4、C5、47/1-5、D3。

Na元素含量在4種苜蓿材料體細胞胚胎發生發育過程中的變化波動較為復雜,F4和47/1-5大致表現為在誘導培養階段的第五天有一個高峰,然后下降,最后在發育培養階段的末期有一個小幅上升;C5的Na元素含量在誘導培養階段峰值出現前有一個下降的過程,誘導培養的第五天開始迅速上升,誘導培養的第十天達峰值后開始下降,在發育培養階段表現出與F4和47/1-5類似的變化趨勢;D3的Na元素含量在誘導培養階段一直增加,在發育培養階段開始后才表現出下降趨勢。

Zn元素含量在4種苜蓿材料體細胞胚胎發生發育過程中的變化十分明顯,除了D3的峰值出現在誘導培養階段的第十天外,其他3種材料的峰值均出現在誘導培養階段的第十五天,4種材料在誘導培養階段的Zn元素含量峰值由高到低分別為D3、C5、47/1-5、F4。而在發育培養階段開始后,4種苜蓿材料的Zn元素含量基本上一直處于很低的水平,并且保持平穩。

Cu元素含量在4種苜蓿材料體細胞胚胎發生發育過程中的變化跌宕起伏,F4、C5、47/1-5、D3都表現為在誘導培養階段先下降后上升再下降的變化趨勢;進入發育培養階段后,都是先上升后下降;以47/1-5材料的Cu元素含量最高,峰值出現在誘導培養階段的第十五天;其次是C5材料,Cu元素含量峰值出現在誘導培養階段的第十天;第三是D3材料,Cu元素含量峰值出現在發育培養階段的第十天;而F4材料的Cu元素含量峰值出現在誘導培養階段的第十五天。到發育培養階段結束前10 d(發育培養20 d),4種材料的Cu元素含量都處在最低值,并且一直維持到發育培養階段結束。

K元素含量在4種苜蓿材料體細胞胚胎發生發育過程中基本上處于下降的趨勢,4種材料的K元素含量峰值大都沒有超過誘導培養階段的起始水平;到發育培養階段結束時(發育培養30 d),4種苜蓿材料的K元素含量由高到低分別為47/1-5、F4、C5、D3。

Fe元素含量在苜蓿4種材料體細胞胚胎發生發育過程中的變化起伏很大,在發育培養階段結束前10 d(發育培養20 d),與Cu元素含量的變化趨勢基本一致,4種材料的Fe元素含量大都處在最低值;但在發育培養20 d后,4種材料的Fe元素含量出現了戲劇性的變化,其含量水平大幅上升,最后都超過了前面水平,達到了峰值,此時4種苜蓿材料的Fe元素含量由高到低分別為C5、47/1-5、D3、F4。

Mn元素含量在4種苜蓿材料體細胞胚胎發生發育過程中的變化趨勢和Zn元素正好相反,其在誘導培養階段基本上都處在較平穩的狀態,而一進入發育培養階段,4種材料的Mn元素含量立即大幅度上升,峰值出現在發育培養階段的第十天,而后迅速下降,到發育培養階段結束時,又恢復到誘導培養階段的水平。4種材料的Mn元素含量達峰值時由高到低的排序為F4、D3、47/1-5、C5。

3討論

3.1Mfhb-1基因的表達對苜蓿體細胞胚胎發生發育的影響

苜蓿4種材料體細胞胚胎發生發育的顯微觀察[4,5]顯示,在誘導培養階段的第十天,F4和47/1-5的表面會形成一些突起結構;在第十五天時,D3和C5表面才出現微小的突起結構。在發育培養階段,D3和C5的表面白色組織增多,且培養液渾濁不清,在發育培養的第三十天時,觀察到F4培養物中出現一些小的子葉胚,而其他3種材料多是魚雷胚。在發育培養的第二十八天時,統計4種材料的體細胞胚胎數目,由高到低依次為F4、47/1-5、C5、D3。上述結果表明,Mfhb-1基因編碼區的表達可能促進了苜蓿體細胞胚胎胚性細胞的誘導,從而促進了苜蓿體細胞胚胎的發生,而uORF的表達可能對該基因的表達有一定的抑制作用。

3.2Mfhb-1基因的表達對苜蓿體細胞胚胎發生發育過程中營養元素含量的影響

Mfhb-1基因的表達可能促進了苜蓿對Ca元素的吸收。由圖2A可以看出,在苜蓿體細胞胚胎發生發育進行誘導培養的第五天,4種材料的Ca元素含量由高到低依次為F4、47/1-5、C5、D3,這與苜蓿體細胞胚胎發生發育情況和最后(發育培養的第二十八天[4,5])體細胞胚胎數量所觀察到的排序結果相吻合。在誘導培養后期,F4和C5的Ca元素含量上升,D3和47/1-5的Ca元素含量保持平衡,說明Ca元素對胚性細胞的形成可能有一定的促進作用,由此可推測Mfhb-1基因的表達可能促進了苜蓿體細胞胚胎誘導后期階段對Ca元素的吸收。

Mfhb-1基因的表達可能促進了苜蓿對Mg元素的吸收。圖2B表明,Mg元素含量在苜蓿體細胞胚胎發生發育過程中的變化較為復雜。除47/1-5表現出先下降后上升的趨勢外,D3、F4和C5均表現出先上升后下降的趨勢,而D3的峰值在誘導培養階段的第十天出現,早于C5的第十五天,也早于F4的發育培養階段第十天。在發育培養的初期,4種材料的Mg元素含量由高到低表現為F4、C5、47/1-5、D3,并且與最后所觀察到的體細胞胚胎數目排序情況類似[4];由此可推測Mfhb-1 基因的表達可能促進了苜蓿對Mg元素的吸收。

Mfhb-1基因的表達可能促進了苜蓿對Na元素的吸收。圖2C揭示,Na元素含量在苜蓿體細胞胚胎發生發育過程中變化波動較為復雜,在誘導培養階段的第五天,除了C5的Na元素含量呈下降趨勢外,其他3種材料的Na元素含量均呈上升趨勢,其中F4上升的最迅速;該現象可能是由于uORF的表達而導致C5的Na元素含量峰值較F4與47/1-5 滯后。結合體細胞胚胎發生發育觀察結果[4],可以推測Mfhb-1基因的過量表達可能在苜蓿體細胞胚胎發生誘導的初期,就促進了苜蓿對Na元素的吸收。

Mfhb-1基因的表達可能抑制了苜蓿對Zn元素的吸收。由圖2D可以觀察到,Zn元素含量在苜蓿體細胞胚胎發生發育過程中的變化十分明顯,除了D3的峰值出現在誘導培養階段的第十天外,其他3種材料的峰值均出現在誘導培養階段的第十五天,且4種材料在誘導培養階段Zn元素含量峰值由高到低表現為D3、C5、47/1-5、F4,與最后的體細胞胚胎數目統計結果呈反比關系。由此表明,高含量的Zn元素可能不利于苜蓿胚性細胞的分化,由此可推測Mfhb-1基因的表達在苜蓿體細胞胚胎發育培養階段初期就可能抑制了對Zn元素的吸收。

在47/1-5、D3、F4和C5這4種材料中,Cu元素、K元素、Fe元素、Mn元素含量在苜蓿體細胞胚胎誘導和發育過程中的變化大體趨于一致,表明 Mfhb-1基因的過量或低量表達,對Cu、K、Fe、Mn元素的含量變化影響不明顯。

3.3主要營養元素對體細胞胚胎發生發育的影響

目前對營養元素在體細胞胚胎發生發育中的具體生物學功能的研究較少,主要集中在與體細胞胚胎發育模式相似的合子胚上。如許淑蘋[6]在研究杉木[Cunninghamia lanceolata(Lamb.)Hook]合子胚的發育時發現,Cu元素的含量在合子胚發育進程中呈小幅上升變化;P元素含量總體上呈較大幅度上升;K、Mn、Ca元素含量呈先下降后上升的變化;Mg元素含量在體胚發育的后期呈持續上升趨勢,而后達到最高值;Co和Ni元素含量較低,Co元素的含量不超過 1 μg/g,Ni元素的含量不超過3 μg/g。甄艷等[7]在研究濕地松(Pinus elliottii Engelmann)×加勒比松(P. caribaea Morelet)的雜種合子胚發育過程中,發現Mn、Ni、B、Na、Al和K元素在胚胎發育早期的合子胚中含量最高;P、Mg和Fe元素呈相似的變化趨勢,在發育開始后先小幅下降而后隨胚發育逐漸上升;Ca元素在合子胚發育早期的含量較高,隨后下降,而后大幅度上升,在合子胚發育后期達到最大值。本研究發現,對照材料47/1-5的體胚發育培養10 d后,K、Na元素含量隨著胚胎的發育不斷升高;Zn元素含量總體變化不大;Ca、Cu、Fe元素含量峰值均出現在體細胞胚胎誘導或發育的中間階段,Mg元素含量峰值出現在體胚誘導末期;Mn元素含量峰值出現在體胚發育初期。

已有研究發現,高濃度的鈉離子可以使蛋白變性,也可以影響細胞質中蛋白質的功能[8]。液泡缺少鈉離子將會削弱酶的功能,也會限制生長發育。擬南芥(Arabidopsis thaliana L.)atrab28基因在胚胎形成后期表達,它編碼的核內靶蛋白可以增加胚胎形成后期的陽離子容量,當該蛋白在擬南芥中過量表達時還可以促進擬南芥萌芽的發生[8]。鈣離子對于調節植物滲透壓扮演著重要的角色,不同的植物細胞對鈣離子存在不同的響應,一般情況下,鈣離子在細胞信號傳導過程中起到中心作用[9],如在組織培養中,鈣離子的濃度變化體系中含有大量胚胎表達的鈣離子依賴蛋白激酶[10]。鐵是植物生長發育所必需的元素,主要作為結構螯合物或金屬蛋白存在于植物組織中,常參與氧化還原反應,然而鐵的不溶性限制了它的吸收;通過細胞質膜三磷酸腺苷酶的細胞外酸化,可以幫助將鐵泵進細胞內,鐵被膜還原酶還原成二價鐵離子,然后轉運進細胞內[11]。黃立皓[12]研究發現,Cu、Fe和Mg離子含量的增加可以提高愈傷組織中細胞的滲透勢,促進細胞中遺傳物質的形成,從而提高愈傷組織分化率。Priyanka等[13]在研究卵葉車前(Plantago ovata Forssk)體胚與非胚性愈傷組織中營養元素含量時發現,高含量的K、Ca、Fe、Cu和Zn是體胚形成的關鍵因素。本研究發現,在對照材料47/1-5體細胞胚胎的發育過程中(轉入發育培養基10 d之后),體細胞胚胎發育培養物中的K、Na元素含量不斷上升,表明K、Na元素在苜蓿體胚的發育成熟過程中可能起重要的作用。

綜上所述,Mfhb-1基因的表達與苜蓿體細胞胚胎發生發育過程中多種營養元素含量的變化有著密切的關系。該基因的表達可能在體細胞胚胎發生發育過程的不同階段,通過促進植物體細胞胚胎誘導材料對營養元素的吸收(如在體細胞胚胎誘導前期促進Na元素的吸收),同時抑制對另一些營養元素的吸收(如在體細胞胚胎誘導前期對Mg、Zn元素的吸收),或者通過影響這些營養元素含量的變化趨勢或模式,從而參與調節體細胞胚胎發生進程中各類基因群的表達,以及一系列相應的生理生化反應,進而達到調控苜蓿體細胞胚胎發生發育過程的作用。但營養元素含量與Mfhb-1基因表達在苜蓿體細胞胚胎發生發育過程中的相互關系,以及詳細的分子作用機理還有待進一步探討。

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