999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

運動與IL-6shRNA干擾影響胰島素抵抗發生的作用及其機制研究

2012-01-06 02:00:32蔡建光
成都體育學院學報 2012年5期
關鍵詞:胰島素

唐 暉,雷 雨,周 亮,蔡建光

(1.湖南科技大學體育學院,湖南 湘潭 411201;2.銅仁學院體育系,貴州 銅仁 554300)

運動與IL-6shRNA干擾影響胰島素抵抗發生的作用及其機制研究

唐 暉1,雷 雨2,周 亮1,蔡建光1

(1.湖南科技大學體育學院,湖南 湘潭 411201;2.銅仁學院體育系,貴州 銅仁 554300)

目的:探討運動是否通過IL-6抑制胰島素抵抗的發生,以及p38MAPK信號蛋白在此的可能作用。方法:大鼠高脂飲食8周以形成胰島素抵抗,通過葡萄糖鉗夾實驗確定胰島素抵抗是否發生;在此過程中采用8周跑臺運動和/或IL-6shRNA載體注射干預,檢測血清IL-6、空腹胰島素、空腹血糖、葡萄糖輸注率、各組織IL-6基因表達水平及磷酸化p38活性等指標。結果:高脂飲食8周形成胰島素抵抗,IL-6shRNA注射組各組織IL-6mRNA水平與對照組相比顯著降低(P<0.05,或P<0.01);8周有氧運動顯著降低胰島素抵抗發生,但是運動注射IL-6shRNA組的胰島素抵抗與運動不注射注射IL-6shRNA組相比葡萄糖輸注率顯著降低(P<0.05,或P<0.01),高脂飲食大鼠磷酸化p38顯著升高,運動高脂飲食大鼠與之相比顯著降低(P<0.05,或 P<0.01),但是運動注射IL-6shRNA組大鼠磷酸化p38的變化卻沒有明顯規律。結論:運動抑制胰島素抵抗的發生可能通過激活IL-6和/或下調p38MAPK信號通路而起作用。

p38MAPK;運動;IL-6shRNA;胰島素抵抗

運動可以抑制胰島素抵抗發生,改善肥胖、糖尿病等代謝綜合癥的癥狀,然而其分子機制仍然不太清楚。根據以下文獻報道:(1)運動導致機體不同組織,特別是骨骼肌IL-6基因表達和循環血IL-6濃度顯著增加[1];(2)IL-6 基因敲除大鼠會形成繼發性肥胖[2];(3)肥胖及糖尿病人靜息血清IL-6濃度與正常人相比顯著升高[3];(4)IL-6具有激素樣作用,從組織釋放出來后進入血液循環,調節機體的糖代謝和脂代謝[4],我們認為運動可能通過IL-6抑制胰島素抵抗的發生。為此,我們采用RNA干擾技術,通過在體注射IL-6shRNA載體的方法導致IL-6基因沉默,以此來研究運動抑制胰島素抵抗發生是否通過IL-6起作用。

p38MAPK是與IL-6及胰島素抵抗關系密切的一條信號通路。p38MAPK在不同刺激引起機體釋放IL-6中具有重要作用[5],同時IL-6從組織釋放出來以后調節靶組織的信號途徑又與激活p38MAPK有關[6]。Hemi的結果表明,肝臟p38MAPK在各種應激刺激下激活,而它的上調在應激引起的胰島素受體底物1絲氨酸磷酸化和胰島素抵抗中具有重要作用[7]。因此本研究通過分析運動及RNA干擾抑制IL-6基因表達時機體不同組織的p38MAPK激活來探討p38MAPK在胰島素抵抗發生的作用。

1 材料與方法

1.1 shRNA載體構建及在體注射

在預實驗中,我們選擇了4段IL-6核苷酸序列作為干預靶序列:IL-6-rat-356、IL-6-rat-410、IL-6-rat-479、IL-6-rat-578,并設計一條亂序非編碼片段作為空白對照。成功建立這四個片段的shRNA載體后,培養大鼠骨骼肌原代細胞,待細胞融合至70%后,用建立的四種shRNA載體轉染細胞,結果表明,4個干預片段的轉染率都在80%以上。進行RT-PCR和Western blotting檢測,結果表明,骨骼肌細胞 IL-6mRNA水平分別為:正常對照(18.2±3.4)、空白載體對照(17.1±2.8)、IL-6-rat-356(8.4±1.6)、IL-6-rat-410(2.5±0.6)、IL-6-rat-479(5.2±1.9)、IL-6-rat-578(6.1±1.7),骨骼肌IL-6蛋白濃度分別為:正常對照(131.2±35.7)、空白載體對照(120.3±39.1)、IL-6-rat-356(60.2±19.7)、IL-6-rat-410(20.6±11.3)、IL-6-rat-479(30.9±18.7)、IL-6-rat-578(51.4±16.5)。該結果表明載體IL-6-410封閉目的基因效果最好,因此我們選擇它作為正式試驗的干預載體。

按以下程序制備和注射shRNA載體和空白載體(參照Crosswhite[8]的方法并進行適當修改)。

(1)以250ul Opti-MEM(r)I稀釋5ul Lipofectamine(tm)2000,輕輕混勻,室溫下孵育5分鐘。

(2)以250ul Opti-MEM(r)I分別稀釋20ul shRNA或陰性shRNA,輕輕混勻。

(3)孵育5分鐘后,混合稀釋的shRNA(或陰性shRNA)和稀釋的Lipofectamine(tm)2000,輕輕混合,在室溫下孵育20分鐘,以形成復合物。

(4)在正式實驗開始后的第一、三、五、七周的星期一上午8點,根據分組,各大鼠分別尾靜脈注射一次300ul shRNA復合物、陰性shRNA復合物或生理鹽水。

1.2 試驗動物與分組

從中南大學湘雅醫學院實驗動物中心購買中南72只雄性 Sprague-Dawley(SD)大鼠,3周齡,體重110±10g,分籠飼養,每籠5只,正式實驗前自由飲食。飼養籠采用大小鼠獨立通風籠IVC,該設備購于蘇州市蘇杭科技器材有限公司,設備采用自動通風模式。實驗動物許可證號:SYXK(湘)2010-0103.動物房恒溫24℃,相對濕度55%,自然光照。

適應1周后,72只大鼠隨機分為3大組:安靜普通飼料組(RN)、安靜高脂飼料組(RH)、運動高脂飼料組(EH),每一大組又分為注射生理鹽水(SRN,SRH or SEH)、注射空白載體和(BRN,BRH or BEH)注射shRNA載體3個小組(PRN,PRH or PEH),每小組8只。

1.3 動物運動方案

動物適應性喂養1周后,運動組大鼠在跑臺上適應性運動2天。兩天后運動組大鼠進行8周遞增負荷的有氧訓練。訓練方案參照Jung的報道并進行改進[9],跑臺坡度為0,每周訓練6天,休息一天,每天訓練一次(見表1)。

表1 大鼠8周跑臺運動負荷

1.4 動物飲食方案

動物適應性喂養1周后(適應期所有大鼠喂食標準嚙齒動物飼料),安靜普通飼料大組大鼠喂食標準嚙齒動物飼料,安靜高脂飼料和運動高脂飼料組大鼠喂食高脂飼料。所有飼料均購自于中南大學湘雅醫學院實驗動物中心。高脂飼料配方參照 Zhang的報道[10]并進行適當修改。高脂飼料具體配方為:豬油20%、蔗糖20%、蛋黃粉10%、食鹽5%、豬膽鹽0.3%、標準飼料 44.7%,能量為 4.9kcal/g。

1.5 高胰島素-正糖鉗夾實驗

本實驗所采取的高胰島素-正糖鉗夾實驗方案是根據已有的報道進行的[11]。8周實驗完成后,所有動物禁食12小時,然后腹腔注射異戊巴比妥鈉(25 mg/kg)麻醉,將大鼠放在微熱的實驗桌上以保持正常體溫。大鼠右頸靜脈置一插管以注射葡萄糖和胰島素,左頸動脈置另一插管以提取血樣。葡萄糖和胰島素溶液儲存在兩個數字注射泵內,這兩個注射泵通過“Y”連接頭與頸靜脈插管相連。胰島素(Novolin R,Novo Nordisk Pharmaceuticals,Denmark)以 mU·kg-1·min-1的速率通過頸靜脈插管注射,血糖水平通過血糖儀(Surestep,Johnson,USA)連續監測,每隔5分鐘調整葡萄糖輸注率(glucose infusion rates,GIR)以維持血糖在較高的水平((5.0±0.5)mmol/L)。鉗夾在90分鐘內達到穩態并維持30分鐘的時間,最后60分鐘的平均GIR(Mean GIR60-120min)認為是評價機體整體利用葡萄糖水平的重要指標。

1.6 動物宰殺

將鉗夾實驗時注射葡萄糖和胰島素前的動脈血樣10ml置于一管內,以1000×g的速度離心15分鐘以分離血清,分裝后放入液氮待測。鉗夾實驗結束后立即對大鼠斷頭處死,迅速剪除小塊股四頭肌、肝臟和腹部白色脂肪組織,放入液氮待測。

1.7 血樣測定

空腹血糖采用葡萄糖-過氧化物酶法進行(試劑盒購于南京建成生物有限公司)。空腹血胰島素與IL-6濃度利用酶聯免疫法法測定(試劑盒購于上海康成生物有限公司)。

1.8 Real- time PCR

各組大鼠的IL-6 mRNA水平通過實時定量PCR方法測定。3種組織的總RNA提取使用Trizol試劑盒(購于美國Invitrogen公司,產品編號:#15596-026)。每個樣品的2ug RNA通過反轉錄成cDNA(試劑盒購于MBI Fermentas公司,編號:#K1631)。RT-PCR的基因擴增試劑盒購于美國 ABI公司,產品編號:4309155。RT-PCR擴增程序為:首先在95°C下變性5min,再 72°C5min,然后是 94°C,58°C,72°C 時各20s40次循環,最后55°C下10s。沒有cDNA的樣品作為陰性對照,每個樣品點樣三孔。IL-6的前引物序列為:5'TCGAGCCCACCAGGAACGAAA3',后引物序列為:5'TGGCTGGAAGTCTCTTGCGGAGA 3'(84bp)。GAPDH作為看家基因,其前引物序列為:5'CTCATGACCACAGTCCATGC3',后 引 物 序 列 為 5'TTCAGCTCTGGGATGACCTT3'(155bp)。

1.9 Western blotting

總蛋白抽提試劑盒購于美國ProMab公司,產品編號:SJ-200501。用剪刀剪取約0.5mg組織,置于組織勻漿器中,加入1ml總蛋白提取液,勻漿5min~20min直到組織充分破碎,然后冰上放置10~20min后,再勻漿5min~20min,將勻漿液吸出放到1.5ml離心管中。超聲3次,每次3s。然后9000rpm離心10min,取適量上清置于新的1.5ml離心管中,-20℃凍存。測定每個樣品的總蛋白含量。

將樣品體積與樣品緩沖液按5:1的比率混勻,樣品緩沖液的組成為:0.6ml 1mol/L的Tris-HCl(Ph6.8)、5ml 50%的甘油、2ml 10%的 SDS、0.5ml 2 - 巰基乙醇、1ml 1%溴酚藍和0.9ml蒸餾水。在100℃加熱3分鐘以使蛋白質變性。將樣品進行sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel(SDS-PAGE)電泳,再電轉移到硝酸纖維素膜上。電轉完畢后,將電轉膜置于5%的脫脂奶粉(PBS配制)中封閉,4℃過夜。封閉的膜用PBST漂洗2次。然后用磷酸化p38MAPK抗體(在PBST中用5%牛血清蛋白按1:400的比率稀釋,抗體購于美國Santa cruz公司,產品編號:sc-166182)搖床哺育,4℃過夜。換液,PBST洗滌4次。然后加入二抗(羊抗鼠IgG抗體/HRP,在PBST中用5%牛血清蛋白按1:5000的比率稀釋)室溫下搖床哺育1小時。換液,PBST洗滌4次。將膜風干,貼在玻璃紙上,加底物,做化學發光得到膠片。將背景較高的底片片放入PIERCE公司X光片背景去除液中。樣品的蛋白含量以與GAPDH的相對量表示。GAPDH一抗在PBST中用5%牛血清蛋白按1:1000的比率稀釋,抗體購于美國ProMab公司,產品編號:Mab-2005079。

1.10 統計學分析

所有統計分析均利用Sigma Plot 10.0軟件完成。數據以平均值±標準差表示。統計學差別用單因素方差分析(ANOVA)進行檢驗。兩組之間的顯著性差異進行t檢驗,3組及多組之間的顯著性差異進行post hoc比較。顯著性水平定為P<0.05。

2 實驗結果與分析

各空白載體注射組與各生理鹽水組相比均沒有顯著性差異,表明注射空白載體對機體沒有顯著性影響。因此下面各組的數據均省略了空白載體注射組。

2.1 運動和/或RNA干擾IL-6基因對胰島素抵抗發生的影響

方差分析表明(表2),與各自生理鹽水注射組(S-)相比,IL-6shRNA載體注射組(P-)的空腹血糖顯著升高(安靜高脂組,即RH組除外)、空腹胰島素濃度顯著升高(運動高脂組,即EH組除外)、葡萄糖輸注率顯著降低(P<0.05或P<0.01)。與各自安靜對照組相比,安靜高脂組與運動高脂組的空腹血糖均顯著升高(P<0.05或 P<0.01);安靜高脂組的空腹胰島素濃度顯著升高(P<0.05),但運動高脂組的空腹胰島素濃度卻沒有顯著性差異(P>0.05);除了生理鹽水運動高脂組外,其余各組的葡萄糖輸注率均顯著降低(P<0.01)。運動高脂組與各自的安靜高脂組相比,空腹血糖均顯著降低(P<0.01);空腹胰島素濃度只有IL-6shRNA載體注射組顯著降低(P<0.05);葡萄糖輸注率顯著升高(P<0.05或P<0.01)。

表2 各組大鼠空腹血糖(mmol/L)、空腹胰島素(mIU/L)和葡萄糖輸注率(Mean GIR60-120min,mg/kg/min)的比較一覽表(n=8)

2.2 運動和/或RNA干擾IL-6基因對機體血清IL-6蛋白濃度與各組織IL-6基因表達的影響

方差分析表明(表3),與各自生理鹽水注射組(S-)相比,IL-6shRNA載體注射組(P-)的血清IL-6及各組織IL-6mRNA水平均顯著降低(P<0.05或P<0.01)。與各自安靜對照組相比,安靜高脂組與運動高脂組的的血清IL-6與各組織IL-6mRNA水平均顯著升高(P<0.01)。運動高脂組與各自的安靜高脂組相比,血清IL-6與各組織IL-6mRNA水平均顯著升高(P <0.01)。

表3 各組大鼠血清IL-6濃度(pg/ml)、各組織IL-6mRNA水平(/GAPDH)的比較一覽表(n=8)

2.3 P38MAPK在運動和/或RNA干擾IL-6基因對胰島素抵抗發生的影響

方差分析表明(表3),與各自生理鹽水注射組(S-)相比,IL-6shRNA載體注射組(P-)的p-p38水平一般顯著降低(P<0.05或P<0.01),但是PEH組與SHE組相比的骨骼肌p-p38及PRN組與SRN組相比的肝臟p-p38沒有顯著性差異(P>0.05),并且PEH組與SHE組相比的肝臟p-p38及PRN組與SRN組相比的脂肪p-p38卻顯著增加(P<0.05或P<0.01)。與各自安靜對照組(RN組)相比,安靜高脂組(SRH組)與運動高脂組(SEH組)的的骨骼肌pp38均沒有顯著性差異(P>0.05),SRH組的肝臟與脂肪p-p38顯著降低(P<0.01),SRH組的肝臟pp38顯著降低(P<0.01),脂肪組織的p-p38顯著升高(P<0.01)。運動高脂組(EH組)與各自的安靜高脂組相比(RH組),各生理鹽水注射的運動高脂組(SEH)的 p-p38均顯著降低(P<0.05或 P<0.01),但是IL-6shTNA注射的動高脂組(PEH組)的pp38卻沒有顯著性差異(P>0.05)。

表4 各組大鼠各組織磷酸化p38MAPK水平(/GAPDH)的比較一覽表(n=8)

3 討論

從表2可以看出,與對照組相比,安靜高脂飲食組空腹血糖與胰島素濃度顯著升高,葡萄糖輸注率顯著降低,并且空腹血糖濃度的平均值達到13.86 mmol/L,說明8周的高脂飲食確實形成了胰島素抵抗。雖然高脂運動組與安靜對照組相比,空腹血糖仍然顯著升高,葡萄糖輸注率仍然顯著降低,但是高脂運動組與安靜高脂組相比,空腹血糖顯著降低,葡萄糖輸注率顯著升高,其空腹血糖濃度的平均值為8.26 mmol/L,該結果表明,運動只能一定程度地抑制高脂飲食形成的IR,并不能完全抑制高脂飲食所形成的胰島素抵抗。本實驗結果也表明生活方式(降低高脂飲食攝入)與適度的運動兩者的結合對于預防胰島素抵抗的發生的重要性。

雖然學者們對于運動抑制或改善胰島素抵抗的機制進行了較多的研究,但是,它的確切機制仍然沒有闡明。作為一種運動時釋放最快,釋放量最多的一種細胞因子[12],IL-6在安靜時主要釋放于脂肪組織,運動時主要釋放于骨骼肌[13]。IL-6從組織釋放后進入血液,以激素樣作用于靶組織而調節物質與能量代謝[14],并且 IL-6 基因敲除鼠會形成繼發性肥胖[2]。所有這些報道使我們相信,運動在抑制胰島素抵抗形成或改善胰島素抵抗的癥狀時很有可能通過IL-6而起作用。

為了消除IL-6的影響,我們采用了RNA干擾技術。自從1998年Fire[15]等發現RNA干擾技術以來,它已經成為廣泛用于在體或離體沉默某特定基因的一種重要實驗方法[16]。Lu[17]給大鼠在體注射 p65 siRNA(0.25 μmol/kg),對照組則注射生理鹽水。他認為RNA干擾治療是癌癥治療中一種較新的轉染方法,可以避免一些副作用。Crosswhite[8]將腺病毒轉染的IL-6 shRNA給大鼠尾靜脈注射一次,結果與對照組相比,其組織內的IL-6基因表達顯著降低。我們用真核細胞轉染的shRNA給大鼠尾靜脈注射4次,結果表明(如表3所示),各shRNA注射組與對照組相比,其骨骼肌、肝臟與脂肪組織的IL-6基因表達顯著降低說明采用我們的方法,能夠顯著抑制大鼠機體組織內IL-6基因的表達。

通過表2和3可以發現,運動高脂IL-6RNA干擾組(PEH)雖然與安靜高脂IL-6RNA干擾組(PRH)相比空腹血糖顯著降低,葡萄糖輸注率顯著升高,但是與對照組(PRN)和運動高脂生理鹽水注射組(SEH)組相比,空腹血糖顯著升高,葡萄糖輸注率顯著降低。表明運動雖然可以一定程度上改善胰島素抵抗,但是運動同時沉默IL-6基因的大鼠其改善胰島素抵抗的作用明顯減弱。因此,高脂形成胰島素抵抗,運動在一定程度上抑制胰島素抵抗的發生,但是運動+IL-6干擾卻不能抑制胰島素抵抗,反而形成了胰島素抵抗。本結果充分表明,運動抑制胰島素抵抗發生在一定程度上是通過IL-6而起作用。

雖然在血清IL-6和組織IL-6基因表達方面我們得到了和其他人比較一致的結果,但是我們的研究第一次比較了不同狀態下不同組織IL-6表達的差異,結果發現,安靜狀態時,骨骼肌IL-6 mRNA水平最低,肝臟較高,脂肪組織最高。高脂飲食形成胰島素抵抗和運動干預抑制胰島素抵抗時,各組織IL-6基因表達均顯著增加,但依然是骨骼肌IL-6表達最低,脂肪組織IL-6表達最高。高脂運動組中各組織IL-6基因表達也顯著增加,但是骨骼肌中的增加幅度最大。據此,我們認為,安靜狀態下,相對于骨骼肌而言,在肝臟和脂肪組織中可能存在有強有力的激活IL-6基因表達的因素存在。而在運動時,運動應激則大幅度提高了骨骼肌IL-6的基因表達。

作為應激激活的蛋白激酶,p38MAPK與胰島素抵抗的關系十分密切。目前對于胰島素抵抗患者機體內的p38信號的激活狀態與機制還不太清楚。Hemi[7]的研究發現,肝臟中p38MAPK被多種刺激因素激活,如游離脂肪酸等。他認為p38的激活對于胰島素受體底物1絲氨酸磷酸化和胰島素抵抗具有主要作用。Masharani的報道表明[18],在胰島素抵抗患者的肌肉組織中,p38沒有激活,但是磷酸化JNK和胰島素受體底物1絲氨酸磷酸化均顯著增加。本次研究發現,與對照組相比,高脂飲食形成胰島素抵抗的大鼠骨骼肌組織的p38沒有明顯改變,但是肝臟和脂肪組織的p38卻顯著激活了。由此可以認為,脂肪和肝臟組織中p38MAPK信號通路的激活在胰島素抵抗形成過程中具有重要作用。這可能與胰島素抵抗形成時機體的慢性炎癥反應有關[19],因為炎癥反應會激活p38MAPK 信號通路[20]。

較多的實驗已經證明,運動具有抗炎癥作用[21]。本實驗結果表明,高脂飲食8周,大鼠形成胰島素抵抗。在這個過程中,運動組大鼠與安靜組相比,胰島素抵抗形成顯著降低,同時,骨骼肌、肝臟與脂肪組織中的磷酸化p38水平也顯著降低。因此,我們推測,運動抑制胰島素抵抗的形成很有可能是通過下調p38MAPK等信號通路而影響機體的炎癥反應來起作用的。而Bumrungpert[22]等人在研究山竹果的主要活性成分倒捻子素(mangostin,MG)時,發現MG可以減弱LPS誘導的人脂肪細胞炎癥反應和胰島素抵抗也是可能通過抑制p38MAPK等MAPK信號通路的激活而起作用。

如上所述,運動抑制胰島素抵抗形成可能通過激活IL-6和/或抑制p38MAPK信號通路,那么在IL-6和p38MAPK之間是否存在一種聯系?有部分實驗研究了不同因素導致胰島素抵抗時IL-6和p38MAPK的狀態[23],但是并沒有對這兩者之間的關系進行探討。通過本次研究,發現運動導致機體IL-6基因表達與蛋白釋放顯著增加,同時p38MAPK信號通路顯著抑制。根據這個結果,我們可以推測IL-6基因表達與蛋白釋放的激活可能會抑制p38MAPK信號通路,因為IL-6具有抗炎癥作用。而大部分抗炎癥作用的因素都可以下調p38MAPK信號通路。此外,我們通過 IL-6shRNA使 IL-6基因沉默,此時p38MAPK信號通路的激活卻比較復雜,骨骼肌、肝臟與脂肪組織中p38激活、不變、甚至也會抑制。因此我們得出結論:IL-6基因表達與蛋白釋放增加可能抑制p38MAPK信號通路,但是IL-6基因的沉默卻不一定激活p38MAPK信號通路。

4 結論

(1)運動抑制胰島素抵抗發生在一定程度上是通過IL-6而起作用的。

(2)安靜和高脂飲食形成胰島素抵抗狀態下,肝臟和脂肪組織中IL-6基因表達最強;而運動應激則大幅度提高了骨骼肌IL-6的基因表達。

(3)高脂飲食形成胰島素抵抗的大鼠肝臟與脂肪組織p38MAPK顯著激活。

(4)運動抑制胰島素抵抗的形成與p38MAPK信號的下調有關。

(5)IL-6激活可能抑制p38MAPK,但是IL-6基因的沉默卻不一定激活p38MAPK。

[1]Fisman EZ,Tenenbaum A.The ubiquitous interleukin-6:a time for reappraisal[J].Cardiovasc Diabetol,2010,9(1):62 -67.

[2]Wallenius V,Wallenius K,Ahren B,et al.Interleukin-6-deficient mice develop mature - onset obesity[J].Nat Med.2002,8(1):75-79.

[3]Abe M,Okadak K,Maruyama T,et al.Relationship between erythropoietin responsiveness,insulin resistance,and malnutrition-inflammation-atherosclerosis(MIA)syndrome in hemodialysis patients with diabetes[J].Int J Artif Organs,2011,34(1):16 -25.

[4]Pedersen BK,Febbraio MA.Muscle as an endocrine organ:focus on muscle-derived interleukin-6[J].Physiol Rev.2008,88(4):1379-1406.

[5]Chu Y F,Jiang Y,Zhang JC,et al.The role of p38 mitogen-activated protein kinase in interleukin-6 induction by lipopolysaccharide in vascular smooth muscle cells[J].Zhongguo Wei Zhong Bing Ji Jiu Yi Xue,2010,22(5):291-294.

[6]Ehlting C,Lai WS,Schaper F,et al.Regulation of suppressor of cytokine signaling 3(SOCS3)mRNA stability by TNF-alpha involves activation of the MKK6/p38MAPK/MK2 cascade[J].J Immunol,2007,178(5):2813 -2826.

[7]Hemi R,Yochananov Y,Barhod E,et al.p38 Mitogen-Activated Protein Kinase-Dependent Transactivation of ErbBReceptor Family:A Novel Common Mechanism for Stress- Induced IRS-1 Serine Phosphorylation and Insulin Resistance [J].Diabetes,2011,60(4):1134-1145.

[8]Crosswhite P,Sun Z.Ribonucleic acid interference knockdown of interleukin 6 attenuates cold-induced hypertension[J].Hypertension,2010,55(6):1484-1491.

[9]Jung HL,Kang HY.Effects of endurance exercise and highfat diet on insulin resistance and ceramide contents of skeletal muscle in sprague- dawley rats[J].Korean Diabetes J,2010,34(4):244-252.

[10]Zhang Z,Xue HL,Liu Y,et al.Yi-Qi-Zeng-Min-Tang,a Chinese medicine,ameliorates insulin resistance in type 2 diabetic rats[J].World J Gastroenterol,2011,17(8):987 -995.

[11]Chen L,Cao ZL,Han F,et al.Chronic intermittent hypoxia from pedo-stage decreases glucose transporter 4 expression in adipose tissue and causes insulin resistance[J].Chin Med J(Engl),2010,123(4):463-470.

[12]Ostrowski K,Hermann C,Bangash A,et al.A trauma-like elevation in plasma cytokines in humans in response to treadmill running[J].J Physiol,1998,513(3):889 -894.

[13]Febbraio MA,Pedersen BK.Muscle-derived interleukin-6:mechanisms for activation and possible biological roles[J].FASEBJ,2002,16(11):1335 -1347.

[14]Febbraio MA,Hiscock N,Sacchetti M,et al.Interleukin-6 is a novel factor mediating glucose homeostasis during skeletal muscle contraction[J].Diabetes,2004 J,53(7):1643 -1648.

[15]Fire A,Xu S,Montgomery MK,et al.Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans[J].Nature,1998,391(6669):806 -811.

[16]Ansaloni S,Lelkes N,Snyder J,et al.A streamlined sub -cloning procedure to transfer shRNA from a pSM2 vector to a pGIPZ lentiviral vector[J].J RNAi Gene Silencing ,2010,6(2):411 -415.

[17]Lu W,Zhang G,Zhang R,et al.Tumor site-specific silencing of NF-kappaBp65 by targeted hollow gold nanosphere-mediated photothermal transfection[J].Cancer Res,2010,70(8):3177-3188.

[18]Masharani UB,Maddux BA,Li X,et al.Insulin Resistance in Non-Obese Subjects Is Associated with Activation of the JNK Pathway and Impaired Insulin Signaling in Skeletal Muscle[J].PLoS One,2011,6(5):e19878.

[19]Festa A,Dagostino RJr,Williams K,et al.The relation of body fat mass and distribution to markers of chronic inflammation

[J].Int J Obes Relat Metab Disord,2001,25(10):1407-1415[20]Choi YH,Jin GY,Li GZ,et al.Cornuside Suppresses Lipopolysaccharide-Induced Inflammatory Mediators by Inhibiting Nuclear Factor- Kappa BActivation in RAW 264.7 Macrophages[J].Biol Pharm Bull,2011,34(7):959 -966.

[21]Halldin M,Rosell M,de Faire U,et al.The metabolic syndrome:prevalence and association to leisure-time and work-related physical activity in 60-year-old men and women[J].Nutr Metab Cardiovasc Dis,2007,17(5):349-357.

[22]Bumrungpert A,Kalpravidh RW,Chitchumroonchokchai C,et al.Xanthones from mangosteen prevent lipopolysaccharide-mediated inflammation and insulin resistance in primary cultures of human adipocytes[J].J Nutr,2009,139(6):1185 -1191.

[23]Green CJ,Macrae K,Fogarty S,et al.Counter- modulation of fatty acid-induced pro- inflammatory nuclear factor κBsignalling in rat skeletal muscle cells by AMP-activated protein kinase[J].Biochem J,2011,435(2):463-474.

The effects and mechanism study on the development of insulin resistance intervened by exercise and IL-6shRNA

TANG Hui et al
(Hunan University of Science and Technology,Xiangtan Hunan 411201)

Objective:To probe into whether exercise inhibited the development of insulin resistance(IR)through IL-6 and the possible effects of p38MAPK signal pathway.Methods:Rats were fed by 8 weeks high-fat diets to develop IR,and glucose infusion rates(GIR)were determined by hyperinsulinemic-euglycemic clamping to confirm the development of IR.8 weeks treadmill exercise and/or IL-6shRNA plasmid injection were adopted.The indexes of serum IL-6,fasting blood glucose,fasting serum insulin,GIR,IL-6 gene expression levels and p-p38 in various tissues were determined.Results:Rats fed by 8 weeks high-fat diets were developed IR and the IL-6mRNA levels in various tissues of IL-6shRNA injection groups were significantly lower than those of control group(P <0.05,or P <0.01).The development of IR in exercise rats significantly decreased,however,compared with that,the GIR of exercise rats injected by IL-6shRNA was lower(P<0.05,or P <0.01).The p-p38 significantly increased in the rats fed by high-fat diets,however,p - p38 in the exercise high - fat diets rats significantly decreased than that(P <0.05,or P <0.01).The changes of p-p38 in exercise rats injected by IL-6shRNA were irregular.Conclusions:These results suggested that exercise inhibited the development of IR by activating IL-6 and/or inhibiting p38 MAPK signal pathway.The upregulation of IL-6 gene expression possibly inhibited p38 MAPK signal pathway.

p38MAP;exercise;IL-6shRNA;IR

G804.2

A

1001-9154(2012)05-0072-07

G804.2

A

1001-9154(2012)05-0072-07

國家自然科學基金面上項目(30971413)

唐暉(1973-),男,湖南洞口人,博士,副教授,主要研究方向為運動內分泌。

2012-03-26

猜你喜歡
胰島素
如何選擇和使用胰島素
人人健康(2023年26期)2023-12-07 03:55:46
胰島素種類那么多,別再傻傻分不清
家庭醫藥(2019年9期)2019-09-23 18:54:32
自己如何注射胰島素
胰島素拆封前后保存有別
胰島素筆有哪些優缺點?
胰島素保存和使用的誤區
科學生活(2016年9期)2016-10-20 13:12:45
門冬胰島素30聯合二甲雙胍治療老年初診2型糖尿病療效觀察
忘記注射胰島素怎么辦
人人健康(2015年17期)2015-09-09 16:25:20
糖尿病的胰島素治療
餐前門冬胰島素聯合睡前甘精胰島素治療2型糖尿病臨床效果
主站蜘蛛池模板: 婷婷开心中文字幕| 亚洲一区二区三区国产精品 | 欧美日韩中文国产| 真人免费一级毛片一区二区| 日韩中文欧美| 欧美人与动牲交a欧美精品| 欧美色图久久| 久久久精品无码一区二区三区| 播五月综合| 国产精鲁鲁网在线视频| 91无码网站| 91成人精品视频| 国产超碰在线观看| 国产极品粉嫩小泬免费看| 亚洲人成网站18禁动漫无码| 91综合色区亚洲熟妇p| 欧美视频在线第一页| 国产成人精品免费视频大全五级 | 青青极品在线| 国内熟女少妇一线天| 美女无遮挡被啪啪到高潮免费| 丝袜无码一区二区三区| 爽爽影院十八禁在线观看| 亚洲精品无码日韩国产不卡| 亚洲国产AV无码综合原创| 精品亚洲国产成人AV| 日韩欧美91| 最新国产午夜精品视频成人| 伊人无码视屏| 美女内射视频WWW网站午夜 | 中文字幕乱码二三区免费| 久久久精品国产SM调教网站| 久久永久精品免费视频| 久久国产黑丝袜视频| 99热这里只有精品国产99| 全免费a级毛片免费看不卡| 国产精品私拍在线爆乳| 国产一区在线观看无码| 亚洲性日韩精品一区二区| 亚洲精品在线影院| 婷婷午夜影院| 丰满的熟女一区二区三区l| 精品人妻AV区| 青青国产视频| 欧美专区日韩专区| 亚洲精品动漫| 久久久久青草大香线综合精品| 欧美日韩亚洲综合在线观看| 午夜国产在线观看| 国产一区免费在线观看| 青青青视频91在线 | 青草91视频免费观看| 狠狠色丁婷婷综合久久| 亚洲综合色婷婷| 国产精品短篇二区| 成年人久久黄色网站| 青青久久91| 99热这里只有精品久久免费 | 99精品这里只有精品高清视频 | 免费又黄又爽又猛大片午夜| 国产全黄a一级毛片| 无码粉嫩虎白一线天在线观看| 四虎国产永久在线观看| 国产黄在线免费观看| 欧美午夜性视频| 黄色国产在线| 宅男噜噜噜66国产在线观看| 国产精品人莉莉成在线播放| 国模视频一区二区| 亚洲欧洲日韩国产综合在线二区| 亚洲国模精品一区| 91久草视频| 在线中文字幕网| 无码AV高清毛片中国一级毛片| 久久久久久国产精品mv| 久久成人国产精品免费软件| 久久伊人操| 国产va欧美va在线观看| 欧美精品伊人久久| 91av国产在线| 久久青草视频| 麻豆精品在线视频|