劉飛,焦月華,郭文奎,于微,谷春濤,高學軍
(1.東北農業大學,乳品科學教育部重點實驗室,食品科學與工程博士后流動站,哈爾濱 150030;2.丹尼斯克(中國)有限公司博士后科研工作站,昆山 江蘇 215300;3.黑龍江省中醫藥大學,藥物安全性評價中心,哈爾濱 150040)
弱后酸化保加利亞乳桿菌突變菌株的遺傳穩定性研究
劉飛1,2,焦月華3,郭文奎1,于微1,谷春濤1,高學軍1
(1.東北農業大學,乳品科學教育部重點實驗室,食品科學與工程博士后流動站,哈爾濱 150030;2.丹尼斯克(中國)有限公司博士后科研工作站,昆山 江蘇 215300;3.黑龍江省中醫藥大學,藥物安全性評價中心,哈爾濱 150040)
對從傳統乳制品中篩選得到的德氏乳桿菌保加利亞亞種自發突變株KLDS 1.9201-4的遺傳穩定性進行研究。將突變菌株進行連續傳代,觀察形態學變化,利用HPLC分析葡萄糖和乳酸的代謝情況,RAPD分析基因組DNA的穩定性。結果表明,突變菌株KLDS 1.9201-4能夠穩定遺傳至第8代,在傳代過程中菌落和菌體特征沒有發生明顯變化,KLDS 1.9201-4對初始葡萄糖的代謝率逐漸升高,終產物中乳酸的濃度也逐漸升高。KLDS 1.9201-4的基因組DNA相對穩定,沒有發生明顯變異。弱后酸化德氏乳桿菌保加利亞亞種的自發突變株KLDS 1.9201-4具有適宜的遺傳穩定性,可被用于制作弱后酸化的酸奶發酵劑。
德氏乳桿菌保加利亞亞種;遺傳穩定性;突變株;后酸化
酸奶作為一種具有益生作用的乳制品,已經普遍被消費者認可,但是由于酸奶正常發酵結束后,在產品貯存、運輸、銷售等過程會發生后酸化,使感官質量下降,影響酸奶的保質期[1]。德氏乳桿菌保加利亞亞種是導致酸奶發生后酸化的主要原因,它具有較強的耐酸性,當外界環境中pH值降低時,其質膜H+-ATPase能將細胞內的質子泵出胞外,形成跨膜pH梯度差,使胞內代謝酶活力不受影響。當環境中pH值達到3.5時,跨膜pH梯度差才不存在,新陳代謝活動受到抑制[2-3],然而,理想酸奶產品的pH值在4.2左右。因此,針對酸奶“后酸化”這一問題,本研究對通過誘變育種得到的H+-ATPase缺陷的德氏乳桿菌保加利亞亞種菌株的遺傳穩定性進行研究[3],為最終開發弱后酸化酸奶發酵劑奠定基礎。
1.1.1 菌株和培養基
①德氏乳桿菌保加利亞亞種 (Lactobacillus delbrueckii subsp.bulgaricus)KLDS 1.9201-4為本實驗室保藏菌種。②培養基:MRS培養基[4],脫脂乳培養基。
1.1.2 主要試劑和儀器
葡萄糖和乳酸標樣,rTaq和dNTP,其余試劑均為分析純。低溫冷凍離心機,PCR擴增儀9700,光學顯微鏡,紫外分光光度計DU-800,HPLC Waters 2695等。
將實驗室保存的KLDS 1.9201-4接入到MRS液體培養基中,在37℃培養,每24 h傳代一次,均按照3%接種量接種。
在傳代培養過程中,每次傳代之前都觀察菌株在液體培養基中的菌液狀態,并利用光學顯微鏡觀察菌體細胞的形態。
將KLDS 1.9201-4以3%(v/v)接種量接種于MRS broth中,在37℃下培養,每24 h傳代一次,每次傳代之前利用pH計測定發酵液的pH值、利用HPLC測定葡萄糖和乳酸的含量。
1.4.1 乳酸含量測定
色譜分離柱為Waters Park C18柱;檢測器為UV214 nm。流動相A為濃度0.02 mol/L的NaH2PO4,流動相B為乙腈,A與B的比例是為9∶1;流速1 mL/min,進樣量為10 μL。 取發酵液50 mL,以10 000 g,4℃下離心10 min,取上清液經0.22 μm濾膜過濾后經適當稀釋進行色譜分析[3]。
1.4.2 葡萄糖含量測定
色譜分離條件:色譜柱為氨基柱;柱溫為30℃;流動相為乙腈∶水=70∶30;流速為0.8 mL/min;進樣體積為20 μL;檢測器為折光。取發酵液50 mL,以10 000 g,4℃下離心10 min,取上清液經0.22 μm濾膜過濾后經適當稀釋進行色譜分析[3]。
1.5.1 基因組DNA的提取
采用天根基因組提取試劑盒提取KLDS 1.9201-4的基因組DNA,具體的操作方法按照試劑盒的說明書進行。分別提取KLDS 1.9201-4第1代和第8代的基因組DNA,取1 μL DNA樣品,稀釋200倍后,測定OD260和OD280。選取濃度1.8≤OD260/OD280≤2.0的樣品。然后,將DNA質量濃度稀釋至50 mg/L作為模板備用。
1.5.2 RAPD的引物和擴增條件
根據文獻[5-6],從20種引物中篩選出多態性良好的適宜引物序列,其中引物1的序列為:5’GAGCGGC CAAAGGGAGCAGAC3’;引物2序列為:5’AACAGCTATGACCATG3’; 引物3序列為:5’CCGCAGCCAA3’。
PCR體系為25 μL: 滅菌ddH2O 15 μL,10×Buffer 2.5 μL,dNTP 2.5 μL,DNA模板2 μL,引物1 μL,MgCl21.5 μL,Taq酶0.4 μL。PCR擴增條件為:94℃變性5 min,40℃退火5 min,72℃延伸5min,4 cycles;94℃變性1 min,55℃退火1min,72℃延伸2 min,30 cycles;72℃10 min。
1.5.3 電泳和凝膠成像分析
將3種引物的擴增產物在1%瓊脂糖凝膠中電泳,電壓為100 V,電泳2 h后在紫外燈下觀察并拍照記錄結果,隨后對DNA指紋圖譜的變化情況進行比較分析。
采用SPSS11.5軟件對試驗數據進行統計分析,其中每組試驗有3個重復。
將突變菌株KLDS 1.9201-4進行了連續傳代培養,當傳至第9代時突變菌株又恢復了原來的產酸能力,因此傳代試驗在第10代就結束了。第1代和第8代的菌體形態分別如圖1和圖2所示。由圖1和圖2可以看出,在連續傳代8次后,突變菌株的表型特征沒有發生明顯的變化。

將KLDS 1.9201-4進行連續傳代,發酵液的pH值、葡萄糖和乳酸質量分數的變化結果分別如圖3和圖4所示。
由圖3可以看出,在傳代過程中隨著傳代次數的增加,突變菌株KLDS 1.9201-4發酵終點的pH值逐漸降低,一直傳代到第8代時發酵終pH值仍然大于4.2,直到第9代時發酵終pH開始低于4.2,也就是說突變菌株可能發生了回復突變,不再具有弱后酸化能力。

由圖4可以看出,在傳代過程中隨著傳代次數的增加,發酵液中葡萄糖的質量濃度逐漸減少,也就是說突變菌株KLDS 1.9201-4對培養基中葡萄糖的代謝能力逐漸增強,產乳酸量也逐漸增加。當傳代到第9代時,KLDS 1.9201-4對葡萄糖的代謝量顯著增加,發酵液中的乳酸質量濃度也陡然增加,這表明突變菌株可能發生了回復突變,恢復了親本菌株的產酸能力。
用篩選出的3種引物對傳代不同次數的菌株進行RAPD分析,結果如圖5~圖7所示。

由圖5~圖7可以看出,在連續傳代9次后,RAPD指紋圖譜結果表明,利用引物1、2、3進行擴增時,突變菌株KLDS 1.9201-4的基因組DNA指紋圖譜基本沒有變化,隨機擴增條帶數相同且亮度接近,說明其基因組DNA具有高度的同源性,并沒有隨著菌株弱后酸化能力的丟失而發生變化。然而,突變菌株KLDS 1.9201-4的代謝情況分析表明,其在第9代時已經恢復了原來的產酸能力,這表明其可能發生了回復突變。雖然Fani等的研究表明,RAPD技術可作為評估菌株在環境中遺傳穩定性的一種有效技術手段[7],但是本研究的結果表明RAPD技術可能并不適合用來評估所有細菌的遺傳穩定性。

細菌在經過多次連續傳代培養之后容易發生退化現象[8],其遺傳穩定性會發生變化,從而導致其相應的表型特征的改變,尤其是生理生化特性的改變,這樣在工業生產過程中就可能引起發酵失敗,造成巨大經濟損失[9]。因此,一般的工程菌株都具有很好的遺傳穩定性,這樣才能實現在食品工業中的應用。然而,對直投式酸奶發酵劑來說,如果菌株的穩定性特別好,那么酸奶生產廠家就可通過單次購買直投式發酵劑而獲得該菌株,從而能夠自己生產酸奶發酵劑,不利于知識產權的保護,因此,直投式酸奶發酵劑必須具有適宜的遺傳穩定性[10]。本研究中HPLC分析表明,突變菌株KLDS 1.9201-4從第9代開始就恢復了親本菌株的產酸能力,也就是說它不再具有弱后酸化的能力。然而,RAPD分析的結果卻表明KLDS 1.9201-4在第9代仍然能夠穩定遺傳,這可能是因為本研究中所采用的引物恰好不能擴增出基因組中發生回復突變的核苷酸序列,也可能是RAPD技術并不適用于評估突變菌株KLDS 1.9201-4的遺傳穩定性。因此,如果要想確定突變菌株發生回復突變的核苷酸序列,那么就需要進一步對親本和突變菌株進行全基因測序分析,目前,親本和突變菌株的全基因組測序工作正在華大基因公司進行。綜上所述,本研究中的具有弱后酸化能力的德氏乳桿菌保加利亞亞種KLDS 1.9201-4能夠穩定遺傳至第8代,這個特性不但對直投式發酵劑的生產沒有任何不良影響,而且還非常有利于知識產權的保護,能夠有效的避免菌株資源被竊取。因此,突變菌株KLDS 1.9201-4在傳代過程中的遺傳穩定性恰好能夠被應用于制作弱后酸化酸奶發酵劑。
[1]徐成勇,吳昊,鄭思聰,等.酸乳后酸化影響因子的初步研究[J].食品與發酵工業,2006,32(12):10-14.
[2]ROBERT W H,NANCY L N.pH Homeostasis in Lactic Acid Bac-teria[J].Journal of Dairy Science,1993,76(8):2354-2365.
[3]劉飛,杜鵬,王玉堂,等.保加利亞乳桿菌H+-ATPase缺陷型菌株的篩選[J].微生物學報,2009,49(1):23-29.
[4]凌代文.乳酸細菌分類鑒定及實驗方法[M].北京:中國輕工業出版社,1999:85-86.
[5]AKOPYANZ N,BUKANOV N O,WESTBLOM T U,et al.DNA Diversity among Clinical Isolates of Helicobacter Pylori Detected by PCR-based RAPD Fingerprinting[J].Nucleic Acids Research,1992,20:5137-5142.
[6]TORRIANI S,ZAPPAROLI G,DELLAGLIO F.Use of PCR-based methods for rapid differentiation of Lactobacillus delbrueckii subsp.bulgaricus and L.delbrueckii subsp.lactis[J].Appl Environ Microbiol,1999,65:4351–4356.
[7]FANI R,BANDI C,BANDON M G,et al.RAPD Fingerprinting is Useful for Identification of Azospirillum Strains[J].Microbial Releases,1993,1(4):217-221.
[8]何國慶.食品發酵與釀造工藝學[M].北京:中國農業出版社,2001.
[9]杜磊,袁超,杜楊.保藏過程中乳酸菌發酵菌種的選擇[J].食品工業科技,2011,32(10):259-260.
[10]劉飛,楊麗杰,霍貴成.羅地亞9001直投型發酵劑發酵特性研究[J].中國乳品工業,2005,33(1):11-14.
Genetic stability of Lactobacillus delbrueckii subsp.Bulgaricus mutant stain with low post-acidification
LIU Fei1,2,JIAO Yue-hua3,GUO Wen-kui1,YU Wei1,GU Chun-tao1,GAO Xue-jun1
(1.Key laboratory of Dairy Science,Ministry of Education,Postdoctoral Research Station of Food Science and Engineering,Northeast Agricultural University,Harbin 150030,China,2.Danisco(China)Co.,Ltd.,Kunshan 215300,China,3.Center of Drug Safety Evaluation,Heilongjiang University of Chinese Medicine,Harbin 150040,China)
The genetic stability of a mutant with reduced membrane-bound H+-ATPase activity from L.delbrueckii subsp.bulgaricus originated from the traditional dairy product was studied to develop a yoghurt starter culture with low post-acidification capacity.The mutant was propagated in MRS broth continuously,the morphological trait of mutant was examined by microscope,the glucose and lactic acid content of supernatant of fermented broth was determined by HPLC,and the genome DNA stability was analyzed by RAPD.The result showed that the low post-acidification capacity of mutant strain was still stable while being propagated in MRS broth continuously after eight generation.During this period,the morphological trait of mutant cell didn’t change,the glucose content fermented by KLDS 1.9201-4 and the content of lactic acid of fermented broth increased gradually.Furthermore,the RAPD results showed that the genome DNA of KLDS 1.9201-4 was stable all the time.Thus the L.delbrueckii subsp.bulgaricus mutant KLDS 1.9201-4 with reduced membrane-bound H+-ATPase activity had adequate genetic stability,which could be applied to develop yoghurt starter culture with lower post-acidification.
Lactobacillus delbrueckii subsp.bulgaricus;genetic stability;mutant;post-acidification
Q935
A
1001-2230(2012)09-0011-04
2012-02-08
黑龍江省教育廳科研項目(12511051)。
劉飛(1980-),男,博士,主要研究方向為食品微生物與生物技術。
高學軍