Aβ寡聚體預處理的BV2細胞對PC12細胞凋亡的影響

藺慕會， 徐忠信， 陳曉虹

β淀粉樣蛋白(amyloid protein，Aβ)導致的tau蛋白異常磷酸化、神經原纖維纏結、神經元凋亡被認為是導致阿爾茨海默病(Alzheimer disease，AD)的主要原因［1］。有研究認為小膠質細胞可在AD的發生發展中清除Aβ，起到保護神經元的作用，但也有研究認為小膠質細胞可通過炎癥反應加重神經元損傷。本研究將預先被Aβ寡聚體處理的BV2細胞與PC12通過篩網共育，部分模擬體內小膠質細胞與神經元關系，來探討小膠質細胞對神經元損傷的作用。

1 材料與方法

1.1 材料 PC12細胞購于中國科學院北京細胞生物研究所，BV2細胞購于上海復祥生物科技有限公司。細胞轉移篩網購于美國BD Falcon公司;1640培養基、DMEM培養基、胎牛血清購于GIBCO公司;Aβ1-42，HFIP(六氟丙醇)，抗 tau，tau(pS396)一抗、二抗購于sigma公司;BCA蛋白定量試劑盒購于美國PIERCE公司;Western blot化學發光檢測試劑盒購于武漢博士德公司;MTT(噻唑藍)購于上海華舜生物工程有限公司;雙染凋亡試劑盒購于上海寶賽公司。

1.2 方法

1.2.1 Aβ 寡聚體的制備及細胞培養 按Klein WL(2002)方法制備 Aβ1 ～42 寡聚體［2］，用1640培養液(含10%胎牛血清，100u/ml青霉素，100g/L鏈霉素)將PC12細胞培養在24孔培養板中。用DMEM培養液(含10%胎牛血清)將BV2細胞培養在轉移篩網上。在BV2細胞經Aβ1-42處理24h后，將培養液及生長有BV2細胞的轉移篩網同時移入PC12細胞培養板與PC12細胞共育。

1.2.2 分組 在PC12細胞培養液中分別加入0、1、5、10μmol/L Aβ1-42 處理24h 作為對照組即Aβ+PC12;實驗組則在BV2細胞培養液中加入0、1、5、10μmol/L Aβ1-42 預處理24h，然后通過轉移篩網將Aβ1-42處理過的BV2細胞及培養液移入未處理過的PC12細胞培養孔共育24h，即Aβ+BV2+PC12。

1.2.3 MTT方法檢測 PC12細胞抑制率 棄去 PC12 上清，加入 MTT(0.5mg/ml)，37℃孵育 4h，細胞內見到藍色沉淀后，吸出培養上清液，每孔加入200μl DMSO，使結晶物充分溶解，空白孔調零，經全自動酶標儀于490nm處測定各孔數值(655nm作為參考波長)。細胞抑制率計算:1－(OD實驗組/OD對照組)×100%。

1.2.4 流式細胞儀檢測細胞凋亡 收集細胞，PBS洗3遍，1000r/min離心10min，細胞沉淀中加入70%乙醇2ml，－20℃固定過夜，1000r/min離心10min，細胞沉淀中加入PI染色液1ml，流式細胞儀檢測，用Cell Quest3.0軟件分析。

1.2.5 Western blot方法檢測 tau、tau(pS396)蛋白表達 將蛋白裂解緩沖液(預冷至0℃)加入經過漂洗的單層PC12細胞中，靜置20min;收集細胞，用蛋白定量分析(bicinchonic acid assay BCA法)測定總蛋白濃度。加樣蛋白含量50μg，經10%SDSPAGE電泳分離，4℃條件下轉膜，置膜于5%脫脂奶粉封閉1h，在室溫下分別加入兔抗大鼠 tau(pS396);tau一抗(1∶1000)，4℃ 過夜，室溫下加入辣根過氧化物酶標記的二抗(1∶4000)，60min?；瘜W發光顯色，計算機掃描分析。

1.2.6 統計學處理 實驗數據以 χ±SD表示，采用統計程序軟件SPSS10.0 for windows，采用t檢驗。

2 結果

2.1 MTT法檢測PC12細胞抑制率 除空白對照外(0μmol/L Aβ1-42)，所有濃度的 ADDLs均可導致PC12細胞抑制，且PC12細胞抑制表現為ADDL濃度依賴性關系，即隨著Aβ濃度增加PC12抑制率也明顯增加，10μmol/L組最明顯，與空白對照組相比，差異有統計學意義(P＜0.05);其中實驗組PC12細胞抑制率增加更明顯，10μmol/L組最明顯，并且與對照組中相同濃度組比較，PC12細胞抑制率增加更明顯，其差異有統計學意義(P＜0.05)，見表1。

表1 MTT檢測PC12細胞抑制率酶標儀檢測結果(OD值)

2.2 流式細胞儀分析PC12細胞凋亡率結果對照組與實驗組中空白對照組均為少量PC12細胞凋亡，兩組相比無統計學意義;當Aβ濃度為1、5、10μmol/L時，對照組與實驗組中均可見PC12細胞凋亡增多(P＜0.05)，并呈濃度依賴性升高;Aβ濃度相同時兩組比較，實驗組PC12細胞凋亡進一步增多，其差異有統計學意義(P＜0.05)(見圖1、圖2)。

2.3 PC12細胞tau(pS396)、tau蛋白表達情況各組PC12細胞tau蛋白表達無明顯差別，對照組中 Aβ(1、5、10μmol/L)組 tau(pS396)表達增多，差異有統計學意義(P ＜0.05);實驗組 Aβ(1、5、10μmol/L)組中PC12細胞tau(pS396)表達明顯增多，差異有統計學意義(P＜0.05);實驗組與對照組相同Aβ濃度組相比PC12細胞tau(pS396)表達增加，差異有統計學意義(P＜0.05)，見圖3。

3 討論

目前認為AD是一種由于基因缺陷直接或間接改變淀粉樣蛋白前體(APP)表達或蛋白酶解過程從而影響Aβ聚集穩定性的病理綜合征。Aβ導致的tau蛋白異常磷酸化，神經遞質丟失，神經膠質增生和炎癥反應等，最終可導致神經元功能失調，死亡。小膠質細胞作為腦內重要的免疫細胞之一，參與多種疾病的發生、發展，包括 AD［3～5］。但小膠質細胞在AD發生發展中的作用是清除Aβ保護神經元，還是通過炎癥反應加重神經元損傷尚有爭議。本研究通過PC12細胞抑制率、細胞凋亡檢測及Tau蛋白表達變化的分析，觀察了BV2細胞被Aβ寡聚體處理后對PC12細胞凋亡的影響，進而探討了小膠質細胞在神經元損傷中的作用。

圖1 Aβ(5μmol/L)對照組PC12細胞凋亡

圖2 Aβ(5μmol/L)實驗組PC12細胞凋亡

圖3 PC12細胞tau(pS396)、tau蛋白表達

有研究發現來源于AD患者腦內的小膠質細胞對培養皿底部預先聚集的Aβ沉積物有明顯趨向性，3w內Aβ沉積物被小膠質細胞覆蓋。在動物實驗及尸檢也證實AD患者及動物模型中小膠質細胞能聚集于老年斑周圍并內吞Aβ。有學者發現裝載Aβ的小膠質細胞遷移到血管或腦室旁試圖清除腦內Aβ。即小膠質細胞對Aβ具有趨化作用和吞噬性。關于小膠質細胞是吞噬、清除Aβ阻止AD發展，還是在Aβ作用下分泌細胞毒性物質加速AD發展，目前仍存在爭議。

本研究選擇與神經元有很多相似之處的PC12細胞及已被廣泛用來體外培養、代替小膠質細胞的BV2細胞［6］通過細胞篩網共同培養，進而觀察被Aβ寡聚體預處理的BV2細胞對PC12細胞凋亡的影響。PC12細胞來自鼠腎上腺嗜鉻細胞瘤細胞系，BV2細胞來源于鼠小膠質細胞瘤細胞。篩網孔徑8μm，允許篩網內外的大分子蛋白和液體交流及細胞突觸通過，不允許細胞通過。該模型可分別對PC12細胞及BV2細胞的形態、蛋白質、RNA等進行檢測，是較理想的模型。結果表明，所有濃度的ADDLs均可導致PC12細胞凋亡，且PC12細胞凋亡表現為ADDL濃度依賴性關系，即隨著Aβ濃度增加PC12抑制率、細胞凋亡、tau(pS396)表達也明顯增加，其中用Aβ寡聚體預處理BV2細胞24h后再與PC12細胞共育，與Aβ寡聚體直接處理的PC12細胞組相比，前者PC12細胞上述指標增加更明顯，對照組與實驗組中空白對照組未見明顯的PC12細胞凋亡。提示BV2細胞能放大β淀粉樣蛋白對PC12細胞的損傷，加速tau蛋白異常磷酸化，增加神經元凋亡，但“靜止狀態”下的小膠質細胞(Aβ寡聚體0μmol/)無神經元損傷作用。支持在病理狀態下小膠質細胞在神經元損傷中起促進作用，因此可能加重AD的病情。但本研究應用的PC12細胞及BV2細胞不是原代培養的神經元及小膠質細胞，并且僅此二細胞共育，并不能完全模仿體內復雜的內環境如血液、腦脊液、其他細胞成分的影響等，因此有一定的局限性。本研究結果提示，小膠質細胞在一定條件下可促進神經元損傷。因此，進一步探討小膠質細胞在神經元損傷中的作用機制，對于揭示AD發病機制以及為AD的臨床治療提供理論依據將具有重要的意義。

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