山羊Ets-1基因cDNA的克隆與序列分析

李 君，羅 軍，許會芬，胡仕良

（西北農林科技大學動物科技學院 陜西省農業分子生物學重點實驗室，陜西 楊凌 712100）

轉錄調控因子（E26 transformation-specific，Ets）通過調節細胞的增生［1］、分化、凋亡及細胞與細胞間的相互作用，在許多生理和病理過程中發揮重要作用［2］。Ets轉錄因子受多種信號通路的調控，如MAP激酶（ERK，p38和 JAK）［3］、Ca2+依賴的信號通路、TGF-β 和 JAK/STAT 信號通路等［4］。研究發現，眾多參與細胞外基質降解的蛋白酶類、細胞因子的啟動子序列中都含有Ets-1的結合位點［5］。山羊泌乳過程中脂肪酸代謝受到眾多基因的調節，這些基因的表達調控常常受到多種信號通路以及細胞因子的調控。研究表明，Ets-1基因能通過調控一些細胞因子影響細胞脂肪酸代謝。本研究旨在克隆西農薩能羊Ets-1基因的cDNA，為進一步研究該基因在山羊泌乳過程中的功能奠定基礎。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 樣品 采集處于泌乳末期的西農薩能羊乳腺組織2 g左右，用DEPC滅菌水洗凈樣品表面殘留的血液及雜質，迅速投入液氮中保存備用。

1.1.2 主要試劑 DEPC購自美國Sigma公司；Trizol和5’RACE System for Rapid Amplification of cDNA Ends Version 2.0購自美國Invitrogen公司；3’-Full RACE Core Set Version 2.0、LA Taq DNA 聚合酶、10×LA Buffer II、dNTPs及pMD19-T載體等購自大連寶生物工程有限公司（TaKaRa）；DNA片段快速回收試劑盒購自北京百泰克生物技術有限公司；TOP10感受態細胞、DNA Marker DL2000、MarkerⅢ及普通質粒提取試劑盒等均購自北京天根生化科技有限公司。

1.2 方法

1.2.1 引物設計 通過對GenBank中牛（NM_001099106）、人（NM_005238）和小鼠（NM_011808）等物種的 Ets-1基因進行同源性比對（http：//www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/），找出該基因在不同物種間的保守區域，利用Primer Premier 5.0和Oligo 6.0軟件設計特異性克隆引物（表1），包括：RT-PCR 引物 ES1和 EA1，5’RACE 引物 EGSP、E51、E52，3’RACE 引物 E31和 E32。

表1 山羊Ets-1基因cDNA克隆引物

1.2.2 RNA提取與cDNA合成 采用Trizol法提取總RNA，加入DNaseⅠ去除可能存在的基因組DNA，將所提取的總RNA進行分裝，一部分于-80℃保存備用，另一部分用于紫外分光光度儀測定和瓊脂糖凝膠電泳檢測。按照TaKaRa公司PrimeScriptRT reagent Kit說明將檢測合格的RNA反轉錄成cDNA，-20℃保存備用。

1.2.3 Ets-1基因cDNA的克隆與測序 以西農薩能羊泌乳末期的乳腺組織cDNA為模板，進行CDS區的PCR擴增。其反應體系為：2 μL 10×LA Buffer II（含 Mg2+），2 μL dNTPs（2.5 mmol/L），1 μL ES1（10 μmol/L），1 μL EA1（10 μmol/L），0.2 μL LA Taq DNA 聚合酶 （5 u/μL），50～100 ng模板，加ddH2O至20 μL。PCR反應條件：95℃預變性 4 min；94℃變性 30 s，63℃退火 30 s，72℃延伸 1 min 20 s，32個循環；72℃延伸 10 min，4℃保溫。取 5 μL PCR產物進行瓊脂糖凝膠電泳檢測。

根據 Invitrogen 的 5’RACE System for Rapid Amplification of cDNA Ends操作說明進行5’UTR的擴增，選用EGSP、E51 和 E52；根據 TaKaRa的 3’-Full RACE Core Set操作說明進行3’UTR的擴增，選用引物E31和E32。方法見各自操作說明，退火溫度見表1。

將所有擴增產物于1%瓊脂糖凝膠中進行電泳，用DNA快速回收試劑盒回收目的片段，與pMD19-T載體于16℃連接過夜；次日將連接產物轉化TOP 10感受態細胞，復蘇后涂布于含有 24 μg/mL X-gal，20 μg/mL IPTG及100 μg/mL Amp的LB培養皿表面，37℃培養12～16 h；挑取單個白色陽性菌落進行質粒提取和酶切鑒定，將含陽性重組質粒的菌液送于Invitrogen上海英駿生物技術有限公司測序。

1.2.4 序列分析 利用NCBI中的blastn和blastp（http：//www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/）對測序得到的Ets-1基因序列進行同源性分析；通過BioXM 2.6軟件對Ets-1的氨基酸序列進行物種間多序列比對；利用ExPASy網站的ProtScale程序對氨基酸序列作疏水性分析（http：//us.expasy.org/cgi-bin/protscale.pl）和Protparam對蛋白質的分子量及等電點進行預測（http：//www.expasy.org/tools/protparam.html）；通過CBS Prediction Servers中的 TMH MM（http：//www.cbs.dtu.dk/services/TMHMM/）、SignalP（http：//www.cbs.dtu.dk/services/SignalP/） 和 CPHmodels（http：//www.cbs.dtu.dk/services/CPHmodels/）分別對 Ets-1的跨膜結構、信號肽區域和二級結構進行預測。

2 結果與分析

2.1 山羊Ets-1基因cDNA的克隆 以山羊乳腺總RNA為模板，通過RT-PCR和RACE技術克隆得到山羊Ets-1基因cDNA全長2 263 bp（GenBank收錄號為HQ589338）。經序列分析表明：山羊Ets-1基因的CDS區全長1 326 bp（圖1A），編碼441個氨基酸殘基，其起始密碼子為ATG，終止密碼子為TGA；Ets-1基因的5’UTR為 331 bp（圖 1B）；3’UTR 為 606 bp（圖 1C），包括完整的poly（A）尾巴。

圖1 Ets-1基因克隆產物瓊脂糖凝膠電泳

2.2 山羊Ets-1的同源性分析 經序列比對發現，山羊Ets-1基因與其他物種相似性較高，其ORF與GenBank中牛（NM_001099106）、豬（NM_001162886）、人（NM_005238）和小鼠（NM_011808）的Ets-1基因相比較，核苷酸相似性分別為98%、94%、92%和90%，氨基酸的相似性分別為98%、98%、98%和96%（圖2）。其非翻譯區核苷酸與牛、豬、人和小鼠的相應序列相比較，5＇UTR相似性分別為98%、85%、82%和 71%，3＇UTR 與牛、豬、人和小鼠相似性分別為96%、83%、81%和77%。

圖2 山羊、牛、人、小鼠、豬Ets-1基因氨基酸序列比對結果

2.3 山羊Ets-1的結構分析 經SignalP預測分析，山羊Ets-1不存在信號肽序列（圖略）；經TMHMM跨膜結構預測發現，該序列不存在跨膜結構，屬于膜外蛋白（圖略）；蛋白質疏水性預測分析（圖3）表明，Ets-1的N-端和C-端均存在明顯的親水性區域（Score＞1.5），其中376—384AA殘基具有較強的親水性（Score＞2）；蛋白質的分子量及等電點預測發現，Ets-1的蛋白質分子量為50 340.8D，理論等電點為5.08。

利用CPH models 2.0軟件預測得到山羊Ets-1的蛋白結構，結果發現Ets-1具有典型的螺旋-轉角-螺旋結構，含有3個α-螺旋和4個β-折疊以H1-S1-S2-H2-H3-S3-S4方式排列。

圖3 山羊Ets-1的疏水結構預測

3 討論

Ets家族是最大的信號依賴轉錄調控因子家族之一，在細胞、組織和器官水平，Ets家族轉錄因子參與多種哺乳動物的生長發育過程，包括細胞增殖、分化、遷移、凋亡和細胞間相互作用。本研究首次克隆了西農薩能羊Ets-1基因的cDNA序列，其全長2 263 bp，編碼441個氨基酸。該基因的CDS區與其他哺乳動物間存在高度同源性，與牛、小鼠、大鼠、豬和人的Ets-1基因相比，其核苷酸相似性在90%以上，氨基酸相似性在95%以上。山羊與牛5＇UTR的相似性為98%，3＇UTR的相似性為96%，該基因與其它物種非翻譯區（5＇UTR 和 3＇UTR）的相似性不高，并且存在較大差異。由于非翻譯區對基因轉錄和翻譯水平的調控起到非常重要的作用，大多數調控序列也都集中于非翻譯區。本實驗對山羊Ets-1基因的非翻譯區進行了克隆，為研究該基因的調控機制提供參考。

細胞對外界刺激的反應由一系列信號級聯轉導所控制，它們將細胞外受體接受的信號傳遞到細胞核［6］。Ets家族轉錄因子就屬于信號轉導通路中的細胞核效應物，接受信號后控制基因的轉錄［7］。Ets家族既可以作為信號轉導的上游效應物，表達為多種生長因子的受體；也可以作為信號轉導的下游效應物，其活性直接受磷酸化作用的控制，確定它們是激活還是抑制相應的靶基因［8］。近年來的研究表明，Ets家族轉錄因子的失調與腫瘤的發生發展有密切關系，Ets家族蛋白（如Ets-l和Ets-2）的過度表達，可以誘導體外培養細胞惡性變異，也可以誘導實驗動物發生腫瘤［9-10］。在許多類型的人類腫瘤中都已發現Ets-1的過度表達［11］，且在乳腺癌、肺癌和腸癌中Ets-1的表達水平已成為評價腫瘤惡性度和預后的重要指標。

目前關于Ets-1在腫瘤方面的研究廣泛，在其它方面研究甚少。但對關于激活Ets-1表達的信號通路、受Ets-1調控的靶基因了解不夠充分。因此，本實驗對羊乳腺Ets-1基因進行克隆與分析，為轉錄因子Ets-1在山羊上的功能及調控機理研究奠定基礎。

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