雜交鱘體表潰瘍病的病原及藥敏研究

張玉貴 (四川省水產學校合川校區,重慶合川401 520)

胡 波 (四川省水產學校郫縣校區,四川郫縣611 730)

黃曉莉,汪開毓 (四川農業大學獸醫院,四川 雅安62501 4)

隨著鱘魚養殖技術的普及推廣,我國的鱘魚養殖得到快速發展,鱘魚養殖品種呈現多樣化,產量也越來越高,目前已經躍居世界第一。筆者在對四川的鱘魚養殖基地的調查中發現,隨著養殖密度的加大,加之鱘魚對于水體溫度的特殊性要求,在養殖過程中也面臨一些問題。鱘魚疾病也成為一個不容忽視的問題,特別是雜交鱘 (西伯利亞鱘Acipenserbaerii♂×施氏鱘A.schrenckii♀)的體表潰爛現象較為常見 (暫定為體表潰瘍病)。為了為該病的診斷、預防與治療提供依據,筆者對該病的病原學和藥物敏感性作了初步研究,現將結果報告如下。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 試驗動物

病魚為采自四川彭州新興鎮日興特種養殖場所養殖的雜交鱘,每尾體重平均為595.5g。病魚的體表多處出現明顯的開放性潰瘍。健康魚為購自四川鱘魚養殖基地的健康雜交鱘,每尾體重平均為52.5g。健康魚飼養在120cm×80cm×50cm的玻璃缸中,飼養采用完全曝氣的自來水,24h連續增氧,試驗前暫養1周,暫養期間投喂顆粒浮性餌料,試驗過程中不投餌料。

1.1.2 主要培養基

采用細菌分離常用的標準培養基:普通營養瓊脂平板、胰酪胨大豆瓊脂肉湯 (TSB)、血清肉湯培養基、血清瓊脂平板。

1.1.3 主要試劑

生理鹽水、分子生物學鑒定試劑、大腸桿菌JM 109、PCR擴增的上游引物為5'-GAGCGGATAACAAT TTCACACAGG-3',下游引物為5'-CGCCAGGGTT T TCCCAGTCACGAC-3'、HE染色主要試劑、10%中性福爾馬林固定液、伊紅染液、水乙醇、二甲苯、石蠟、冰醋酸、明礬、氧化汞、中性樹脂膠、20%戊二醛、20%戊二醛+20%新潔爾滅。

1.2 試驗方法

1.2.1 細菌的分離

取發病癥狀典型的病魚,用無菌生理鹽水沖洗病魚體表,在無菌條件下,用接種環分別挑取病魚潰爛灶邊緣的肌肉,以及病魚的肝臟、脾臟、腎臟接種TSB肉湯;將接種后的TSB肉湯放入水浴振蕩器中120r/min、28℃下培養24h后觀察細菌生長狀況,然后將帶菌肉湯在TSA平板上劃線培養,挑取單個菌落,顯微鏡鏡檢后進行細菌的純培養[1]。

1.2.2 回歸感染試驗

選擇在實驗室水族箱中暫養1周以上的健康雜交鱘,每10尾1組。將分離純化培養的菌株分別接種TSA平板,培養24h后,用無菌生理鹽水洗下菌苔,制成3.0×108cfu/ml的菌懸液,分別進行注射感染、創傷感染和浸泡感染。其中,注射感染:肌肉注射0.1ml/尾菌懸液,對照組注射0.1ml/尾的無菌生理鹽水;創傷感染:將試驗魚體表人為劃破,浸泡在細菌懸液中,對照組浸泡于無菌生理鹽水中,浸泡感染:將體表無損傷的健康試驗魚,浸泡在細菌懸液中,對照組浸泡于無菌生理鹽水中。觀察7d,并記錄試驗魚的發病情況。

1.2.3 病原菌的鑒定

(1)病原菌的形態觀察 單個菌落接種于TSB肉湯,28℃培養18h后取菌液,經涂片、固定和革蘭氏染色,顯微鏡觀察。

(2)生理生化試驗 將細菌接種于 TSA平板和鮮血平板上觀察其菌落形態和生長情況,將培養24h斜面上的細菌采用穿刺發接種于微生物生化鑒定管中,28℃恒溫培養24h后觀察結果[2]。

(3)16S rDNA基因克隆及測序 分離菌株種的鑒定采用16S rDNA基因特異性擴增法進行,分別以細菌核酸提取液和菌細胞懸液為模板進行PCR擴增[3]。取對數生長期的新鮮菌液,離心收集菌體,提取基因組 DNA。PCR 反應體系 (50μ l):5μ l 10 ×buffer,4μ l dNTP,2μ l primer,5μ l模版,4μ l 25nmol Mg2+,0.4μ l Taq酶,加水至 50μ l。PCR反應條件:首先 94℃變性 5min,然后進入參數為 94℃1min,54℃1min,72℃2min的循環,共30個,最后72℃延伸10min。經0.8%的瓊脂糖凝膠電泳檢測其擴增片段大小應在1500bp左右。PCR產物經DNA純化試劑盒純化,克隆到pMD18-T載體中后測序[4]。

(4)系統進化樹分析 將測序所得16S rDNA的互補DNA序列,與GenBank數據庫中的已知核酸序列進行Blast分析,調出與該序列相關性較高的核酸序列,采用DNAStar軟件的Multiple Sequence Alignment程序進行多序列比對和系統發育樹構建[4]。

1.2.4 藥敏試驗

將純化培養24h的細菌以無菌生理鹽水洗下,制備成細菌懸液,取0.1ml菌液涂布于TSA平板。將抗生素紙片 (7mm)貼于平板表面,28℃恒溫培養24h后觀察其抑菌圈的有無及直徑大小。根據抑菌圈直徑判斷標準[5],判斷菌株對藥物的敏感性結果 (抑菌圈越大表明敏感性越強)。用游標卡尺測量抑菌圈的大小并作好記錄。

2 結果與分析

2.1 病原菌的分離鑒定

經常規細菌分離,得到一疑似致病菌株,命名為K070401菌。該菌株在TSA平板上生長呈邊緣光滑、有光澤的圓形白色菌落,顯微鏡下為革蘭氏陰性短桿菌。該菌葡萄糖氧化發酵陽性,氧化酶檢測陽性,0%NaCl生長,脂酶陽性。能利用甘露醇,具運動性,能發酵麥芽糖,不產生H2S,葡萄糖產酸陽性,葡萄糖產氣陽性,精氨酸雙水解酶陽性,DNA酶陽性,鳥氨酸脫羧陰性,還原硝酸鹽。

2.2 致病菌的動物回歸感染試驗

通過肌肉注射、劃痕浸泡和浸泡感染3種方式對健康魚進行人工感染,結果發現,肌肉注射和劃痕浸泡都能引起試驗魚發病,而浸泡感染不引起魚發病。人工感染24h后可觀察到體表創面面積明顯增大;44h后觀察到潰瘍的出現,創面處的皮膚部分脫落,肌肉明顯充血;53h后觀察到潰瘍進一步擴大,創面處的皮膚幾乎全部脫落,嚴重充血的肌肉暴露。解剖檢查,腎臟輕微腫大,并可見輕微腸炎,其他臟器無明顯變化。在無菌條件下,從人工感染發病的鱘魚病灶周圍肌肉和肝臟中分離到與K070401株形態與生化特性一致的相同的病原細菌,表明K070401株是鱘魚皮膚潰爛病的致病菌病原。

2.3 K070401菌株16Sr DNA的PCR擴增結果與系統發育分析

PCR擴增出K070401菌株的16S rDNA片段經瓊脂糖電泳檢測表明,其大小約 1500bp(圖1)。將獲得的序列用DNAstar軟件進行多序列比對分析和構建系統發育樹(圖2),結果表明K070401菌在系統發育數上與嗜水氣單胞菌聚為一簇,同源性最高為99.2%(圖3),結合形態學和理化特征鑒定其為嗜水氣單胞菌 (Aeromonashydrophila)。

圖1 分離菌株K070401的16S rDNA的PCR擴增產物的電泳圖譜

圖2 K070401菌株及相關嗜水氣單胞菌株的系統進化樹

2.4 藥敏試驗

藥敏試驗結果詳見表1。由表1可知,磺胺異噁唑、洛美沙星、阿奇霉素的抑菌圈直徑分別為20、22、24mm,表現為高度敏感 (抑菌圈直徑大于20mm);克拉霉素、強力霉素、鏈霉素、美滿霉素抑菌圈直徑15～18mm,表現為敏感 (抑菌圈直徑大于15mm);氨芐青霉素、萬古霉素、阿莫西林無抑菌圈,表現為不敏感,有耐藥性。

3 小結

表1 K070401的藥敏試驗結果

(1)本研究從雜交鱘體表潰瘍旁側的肌肉分離得到1菌株,革蘭氏染色為陰性,鏡檢下呈短桿狀,兩頭鈍圓,大多數細菌單獨存在,少數細菌成對甚至成鏈存在。菌落 1.5～2.0mm,邊緣光滑,凸起,半透明。該菌葡萄糖氧化發酵陽性,氧化酶檢測陽性,0%NaCl生長,脂酶陽性。能利用甘露醇,具運動性,能發酵麥芽糖,不產生 H2S,葡萄糖產酸陽性,葡萄糖產氣陽性,精氨酸雙水解酶陽性,DNA酶陽性,鳥氨酸脫羧陰性,還原硝酸鹽。K070401株形態、生化特性與嗜水氣單胞菌標準菌株一致。

(2)應用細菌通用引物,擴增出K070401菌株的16SRNA的互補DNA片段,該片段大小為1591bp。經與其他細菌比對,通過同源性分析比較與嗜水氣單胞菌標準菌株的同源性高達99.2%,最終鑒定為嗜水氣單胞菌。

(3)通過動物回歸感染試驗,用分離的菌株獲得相同病灶特征的病魚,可以基本確定K070401菌株是體表潰瘍病的致病菌。

(4)藥敏試驗結果表明,該菌對羅美沙星、磺胺異噁唑、阿奇霉素敏感;對克拉霉素、強力霉素、鏈霉素、美滿霉素較敏感;對氨芐青霉素、萬古霉素、阿莫西林不敏感。該菌不同類型的抗生素的敏感性有較大差異,因而在防治該類疾病的過程中要有選擇性。

[1]毛芝娟,劉國勇,陳昌福,等.大黃魚潰瘍病致病菌的初步分離與鑒定[J].安徽農業大學學報,2002,29(2):178-181.

[2]陳雅芳,王 軍,蘇永全,等.養殖石斑魚潰瘍病病原哈維氏弧菌胞外產物的研究 [J].海洋科學,2006,30(10):30-34.

[3]Weisbnrg W G,Bams S M,Pelletier D A,et al.16S rDNA amplification for phylogenetic study[J].J Bacteriol,1991,173:696-703.

[4]陳 償,胡超群,陳曉燕,等.新發現的紅擬石首魚潰瘍病病原海藻施萬氏菌的分離和分子鑒定[J].海洋與湖沼,2003,34(1):1-8.

[5]蘇秀梅.泥鰍體表潰瘍癥的防治 [J].科學養魚,2006,(11):55.