999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

抗體庫的起源、發展及應用前景

2011-02-26 13:21:16戴和平
生物工程學報 2011年5期

戴和平

中國科學院水生生物研究所 淡水生態與生物技術國家重點實驗室,武漢 430072

1 抗體庫的起源及抗體庫技術的發展

自從Susumu Tonegawa[1](利根川進,日本學者)闡明了產生抗體多樣性的分子機制,獲得了1987年的諾貝爾醫學獎后,人們逐漸意識到每個高等生物個體實際上就是一個抗體庫。一般哺乳動物的抗體基本單體結構是由兩條重鏈和兩條輕鏈組成,每條重鏈或輕鏈又是由可變區和恒定區組成。編碼抗體可變區的V基因和恒定區的C基因位于染色體DNA中的不同區域,在淋巴細胞的分化過程中,這些抗體基因片段能在染色體基因組內進行重排,形成各種各樣的抗體重鏈或輕鏈基因,然后轉錄并翻譯成完整的抗體重鏈和輕鏈。據估計,在小鼠中,經由基因重排、隨機組合和體細胞突變所產生的抗體多樣性可以達到 109~1011。這些多樣性的抗體組合存在于每一個個體中,這就是抗體庫最基本的來源[2]。

每一種B淋巴細胞只攜帶一種抗體基因,沒有經歷特異抗原刺激的B淋巴細胞處于靜息狀態。只有當外源抗原與特異性B細胞受體相互結合,啟動一系列信號傳導和代謝變化后,才能導致特異性 B細胞增殖和分化,產生分泌型B細胞,分泌特異抗體,同時也產生記憶B細胞,持續保留,以備在二次免疫應答時,快速產生特異性抗體。

傳統的多克隆抗體的制備技術,是將動物個體作為現成的抗體庫,通過純化的抗原,誘導特異性B淋巴細胞的增殖,產生大量的特異識別抗原的特異性抗體。由于一個抗原可能存在不止一個抗原決定簇 (4~6個氨基酸組成一個抗原決定簇),因此該抗原所誘導的特異性B細胞可能是由不同種類的B細胞組成的細胞群,所產生的抗體可能不是一種,而是多種可以識別該抗原上不同抗原決定簇的多種抗體,所以這種抗體稱為多克隆抗體。

單克隆抗體的制備技術,是將特異抗原免疫后的小鼠B淋巴細胞從動物體內取出來,再與人類腫瘤細胞融合,然后分離單細胞株,用ELISA方法鑒定分泌特異結合抗體的單克隆雜交瘤細胞,從而獲得單克隆抗體細胞株。單克隆抗體技術的優勢是將抗體庫從動物體內取出,在離體狀態下操作,是現代抗體庫技術的前奏。

基因工程抗體庫的構建,是在1985年噬菌體展示技術[3]建立之后的 1990年開始的[4]。噬菌體展示技術的最大優點是將外源蛋白的基因型和表達型有機地結合在一個噬菌體上,使得目的蛋白及其基因可以通過與固相化的配體相互作用而得到選擇,通過再次感染大腸桿菌而得以擴增。目前噬菌體展示技術已成功地應用于各種抗體庫的構建,該技術可以不經過動物免疫,直接從動物的脾臟、外周血和骨髓中提取淋巴細胞的mRNA,轉錄成cDNA,再用專門設計的引物,利用PCR技術,將編碼抗體的可變部分的基因擴增出來,與編碼噬菌體外殼蛋白P3的基因偶聯,以融合蛋白質的形式在噬菌體表面展示,如此而構建高容量的噬菌體展示抗體文庫。其特異抗體的選擇模擬了自然免疫系統,用固相化的抗原從噬菌體展示抗體文庫中選擇特異性親和吸附的噬菌體抗體,然后將特異性吸附的噬菌體再感染大腸桿菌,得以擴增。這樣,經過幾輪吸附-洗脫-擴增的親和選擇過程,特異性親和吸附的噬菌體抗體就會得到大大的富集,達到從抗體庫中分離出來的目的。噬菌體展示抗體庫技術明顯優于單克隆抗體雜交瘤技術,使特異性單克隆抗體的獲取更方便、更省時省力;可被高通量自動化操作,也可被工廠化生產,被認為是最具有發展潛力的、可與蛋白質組學配套、為抗體芯片制備提供充足抗體資源的技術。噬菌體展示技術現在已擴展到細胞表面展示技術,如細菌、酵母、人細胞等的表面展示。還有最小單位的展示系統,如mRNA展示、DNA展示系統等,都是將一個蛋白的基因型和表達型直接地連為一體。由于這類展示系統靠體外轉錄和翻譯系統進行蛋白表達,靠PCR技術對目的抗體基因進行擴增,不需要宿主細胞,所以克服了宿主細胞的局限性,可以使抗體庫的多樣性達到 1012~1014。這些不同的展示系統可以統稱為分子展示,在 Gr?wall和St?hl綜述[5]中有較詳細的描述,本文不再贅述。表1是對目前主要用于抗體庫構建的各種分子展示系統的簡單歸納,并沒有完全包括所有的展示系統。

表1 各種分子展示系統Table 1 Various molecular display system

還有一種類似于酵母雙雜交模式的抗體庫技術,稱為胞內抗體庫,其抗體的表達和篩選在細胞內進行。首先通過基因操作,將目的抗原與一種蛋白的DNA結合域融合,將其cDNA轉入酵母細胞中,以此作為釣餌;另一方面,將這種蛋白的激活域與抗體庫的單鏈抗體融合,將其cDNA也轉入酵母細胞中。當抗體庫中某個抗體可以與目標抗原相結合時,就會導致該細胞成活,進而導致該特異性識別抗體得到表達和純化。因為胞內抗體 (Intrabody) 的篩選是在細胞內進行的,所以保證了所獲得的抗體都具有生物功能[18]。

2 抗體庫的種類

在臨床大量使用的多克隆抗體和單克隆抗體多為免疫球蛋白IgG1形式,其完整天然抗體是由2條重鏈和2條輕鏈所組成,分子量約為150 kDa。由于分子量較大,在一些方面的應用受到了限制,如較低的組織穿透性 (腫瘤),或者無法與某些小裂隙中的分子表面結合 (HIV包膜糖蛋白) 等。抗體的可變部分是特異識別抗原的結構域,只占完整抗體的一小部分,抗體工程就是利用基因工程技術,將編碼抗體的這一小部分基因克隆,其優勢之一是可以制造小分子量的抗體,以解決天然抗體無法解決的問題。目前分子展示抗體庫的類型主要是由鼠源、人源或駱駝等其他動物來源的抗體片段組成,如單鏈抗體 (Single chain fragment of variable,ScFv),是由一個柔軟的小肽連接重鏈和輕鏈的可變區,組成一個單鏈多肽,分子量約在28 kDa左右;再就是Fab抗體,主要由重鏈和輕鏈的可變區和部分恒定區組成,分子量約54 kDa左右;還有單獨重鏈或單獨輕鏈的可變區,分子量約15 kDa等等。這些抗體片段具有與天然抗體一樣的抗原識別特異性,一樣的親合力 (Affinity),但是由于它們都是單價位與抗原結合,因此它們與抗原的親合結合力 (Avidity) 比天然抗體弱。通過基因工程技術,實現了兩價至多價的小抗體片段組合體;或將抗體的恒定區Fc片段與小分子抗體可變區片段連接,使鼠源的抗體人源化,恢復其協同體內其他免疫分子和細胞清除外源抗原的能力,并提高其穩定性,這方面的研究綜述可參考文獻[19]和[20]。

有的抗體庫來源于經特異抗原免疫過的動物,這樣的抗體庫中具有大量已經誘導的特異性抗體,可有效地針對目的抗原選擇高親和力的特異性抗體。但是其局限性也是顯而易見的,這樣的抗體庫的應用范圍比較窄,必須針對不同的抗原構建不同的抗體庫。為了擴大抗體庫的使用范圍,有的抗體庫來源于非免疫過的動物。一般而言,構建天然抗體庫需要從未經特異性免疫過動物的骨髓干細胞、外周血淋巴細胞和脾臟B細胞中獲取抗體可變區的mRNA[21]。因為在骨髓中分化成熟的B淋巴細胞在進入外周血前,已經通過某種機制,將能識別自身抗原的B淋巴細胞殺死,從而避免自身免疫疾病的發生[2]。為了提供抗體的多樣性,避免某些抗體的過量存在,必須選用未免疫過的動物,并將其骨髓中的B淋巴細胞也要提取出來,才能保證抗體的多樣性。天然抗體庫的庫容量需要達到109~1010以上,才能保證抗體的多樣性在理論意義上滿足各種抗原特異性抗體的淘選,因此天然抗體庫構建的工作量很大,但是應用范圍較廣泛。大容量天然抗體庫特別適用于一些用傳統多克隆和單克隆抗體技術無法獲取的抗體,比如識別高度物種保守的蛋白序列的抗體,或識別有毒抗原的抗體,或僅識別不同連接鍵、而氨基酸序列完全相同的抗原結合位點,等等。大容量天然抗體庫結合高通量技術,在蛋白質組學研究領域具有強大的應用前景[22]。抗體-抗原結合的特異性取決于結合區域的空間構象,主要與抗體重鏈和輕鏈的可變區中的 3個互補決定區(Complementarity determining region,CDR) 環狀結構的氨基酸序列有關。將CDR區的編碼基因序列進行計算機設計,對其進行隨機突變,但是保留CDR區外的框架結構不變,可以大大提高抗體庫的多樣性,這種通過人工操作增加抗體多樣性所構建的抗體庫稱為人工合成抗體庫[20,23]。

目前,出現了各種各樣非免疫球蛋白的抗體替代物。這些抗體替代物在一級結構上與抗體分子完全不同,但在框架結構上與抗體可變區有相似結構特點。通過計算機設計,在保證框架結構不變的基礎上,對某一特定的蛋白分子表面區域的氨基酸組成進行隨機化組合,從而構建類似于抗體庫的框架蛋白 (Scaffold proteins) 文庫[24],并將其展示在噬菌體表面,用于篩選特異性識別各種抗原的蛋白結合體。這些框架蛋白來源廣泛,有的來自原核細菌,有的來自人類,雖然它們的一級結構完全不同,但它們通常都具有以下特點:1) 蛋白穩定性高,能耐受高溫和高濃度變性劑的影響,室溫中長期保存不變性;2) 蛋白分子小,具有很好的滲透性和遷移性;3) 蛋白可溶性高,能夠在大腸桿菌中以高產量表達,造價低廉。框架蛋白文庫的研究在歐美發展迅速,特別是在歐洲,幾十種框架蛋白文庫已被成功構建。一些特異識別癌細胞的框架蛋白從框架蛋白文庫中得到了成功地分離,并通過了臨床實驗,應用于癌癥的診斷和藥物導航,有的已經實現了商品化。但在中國,新型框架蛋白文庫的構建幾乎為零。表2列舉了一些框架蛋白。綜述文獻[24-26]對框架蛋白有較為詳細的敘述。

表2 框架蛋白舉例Table 2 Examples of protein scaffolds

另外一種抗體替代物是 RNA/DNA適配子(Aptamer)[41]。這是一種人工合成的RNA或DNA隨機序列片段,這些隨機序列可以形成無數種構象,RNA/DNA適配子文庫的多樣性可以達到 1015。RNA/DNA適配子庫可以展示在微珠上,對小分子化合物和大分子蛋白質等其他分子可以通過反復的吸附、洗脫、PCR擴增過程,從文庫中篩選到特異識別的適配子。與蛋白類抗體庫技術相比,適配子庫有更多的優點。首先,適配子與抗體一樣具有特異性識別分子的能力和高親合力,但它的選擇和分離完全不需要生物宿主;適配子的選擇和生產完全是在體外操作和化學合成,不受生物條件限制,因此結果的重復性更好;最后,適配子比抗體耐高溫,因此穩定性更好。有關適配子的應用在文獻綜述[41-42]中有詳細的敘述,可以參考。

3 抗體庫的應用現狀和問題

抗體庫技術模擬并簡化了天然抗體庫的特異性抗體的產生過程,使得抗體選擇可以根據人類的需要,在體外操作,通過特異性抗體選擇策略的不斷優化和抗體工程設計,賦予了抗體在天然狀態下不可能具備的新功能。分子展示抗體庫或抗體替代物文庫主要應用于如下一些方面:1) 作為分子診斷工具,應用于微生物病原體、癌癥生物標志物的檢測,生命科學研究中的分子識別。2) 組成微陣列芯片,更新了免疫診斷的模式,使診斷水平上升到蛋白質組學的高度;3) 作為特異性親合吸附的分子工具,將其與細胞毒性藥物或標識物偶聯,應用于藥物導航和體內示蹤診斷;4) 作為空間構象的識別體,應用于穩定或區別不同構象的目的蛋白;5) 作為具有中和病原體和毒素效應的抗體,應用于治療病毒感染和解毒;6) 將小分子的抗體引入細胞內(Intrabody),發揮分子調節的功能,應用于HIV、癌癥、神經退化性疾病和器官移植等治療中;7) 作為親合吸附材料,偶聯在層析柱上,用于分離和純化目的蛋白;等等。這些應用領域都在相關綜述[43-47]中得到了詳細地敘述,供讀者參考。

從上述對抗體庫應用的簡述中可以看到,抗體庫技術結合抗體工程,有多種靈活機動的應用技巧和廣泛的應用范圍,但到目前為止,抗體庫技術的應用潛力還遠遠沒有發揮出來。比如,抗體庫最大的特點就是它的多樣性和它的高通量,而目前大多數的應用是將單個抗原從高容量的抗體庫中淘選特異性結合抗體。實際上,自然情況下的動物個體的免疫系統是同時對環境出現的多種抗原作出平行反應的,生物體有自己一套高效率的機制,可以同時從抗體庫中選擇、擴增相應B細胞,制備出各種識別外源物的抗體。而當用人工方法模擬這種高通量選擇方法時,困難還是很大的。因為目前的分子展示抗體庫的分離和選擇過程涉及到抗原的固相化、抗體-抗原結合、洗脫、擴增、鑒定等步驟,涉及到大量的克隆子,需要進行平行操作。如何將多抗原同時、平行地從抗體庫中選擇各自的特異性抗體,是目前所面臨的挑戰。已有一些實驗室在這方面作出了開創性的工作[48-49]。一般采取兩種策略,一是將各種抗原固相化在96孔板、NC膜,或芯片上,借助自動化平行操作平臺,對抗體庫進行淘選;另一種策略是,將各種抗原分別固相化在小磁珠上,借助流式細胞儀對抗體庫進行淘選。這方面的研究進展可參考文獻[25,50-52]。

4 抗體庫的應用前景和展望

隨著后基因組時代的發展,人們對生命現象的了解已經不能滿足于對一個生物分子的單獨研究,而是希望對生物整體的分子變化和響應進行研究,因此將抗體庫與蛋白質組建立一一對應的鏡像關系,發揮其高通量分子識別的作用越來越重要,由此提出了親和力蛋白質組學的概念[53]。所謂親和力蛋白質組學,是以親和力為基礎的抗體或抗體替代物,作為工具應用于基礎研究和藥物開發以及診斷學,主要包括蛋白質組學層面的蛋白質的高效純化方法,蛋白質表達譜的高通量檢測以及蛋白質相互作用網絡的探測方法等。

但是目前抗體庫對高通量抗原的篩選技術的發展困難很大。到目前為止,還只能是用幾個抗原對抗體庫進行平行篩選[54-55],遠遠沒有解決將成百上千個抗原同時對抗體庫平行篩選的問題。這是因為依賴于生物宿主的抗體庫分子展示系統存在諸多影響因素,比如宿主細胞個體存在生長速度的差異性,蛋白質相互作用的非特異性結合,選擇壓力的偏向性等都會使得篩選過程的陽性克隆鑒定面臨海量的單克隆個體,超出了目前高通量自動化操作平臺的能力。一般而言,一個抗原對抗體庫的篩選將導致200~1 000個單克隆子的平行鑒定。作者認為,解決抗體庫高通量篩選的技術瓶頸的首要問題是解決生物宿主的問題。生物宿主具有生命,受很多因素的限制,因此最好的辦法就是繞開它。目前,無細胞分子展示抗體庫和DNA/RNA適配子庫因為不依賴于細胞生長,應該是重點選擇的對象,而DNA/RNA適配子庫完全是化學合成的,結合目前已經比較成熟的DNA高通量測序技術,有可能是解決上述瓶頸問題的突破口[56]。

在我國,目前還沒有一個具有自主創新的抗體庫構建成功的報道,對分子展示抗體庫的應用與先進國家相比差距也較大。作者個人認為,一種新型抗體庫的構建是要基于非常深厚的研究積累和條件的,而目前各種抗體庫的種類已經夠多的了,我們國家沒有必要再花金錢和人力去新添一種抗體庫,而是應該將精力放在應用技術的創新上。比如,抗體庫篩選的高通量、自動化操作平臺的改進或創新,還有很大的發展空間[57],通過我國生物科學、化學和物理學科技人員的合作和努力,應該可以取得創新性成果;另外,抗體庫目前應用較多的是醫療領域,特別突出的是癌癥的生物標志物的檢測和體內示蹤,而在環境污染的健康風險評價方面卻應用得很少,而這個研究領域也是需要對環境污染暴露的生物和人體的整體分子響應進行高通量分析,抗體庫應該在這個領域大有作為。總之,抗體庫的優勢和潛力要靠應用而發揮,抗體庫的技術問題也要靠應用而得到解決。

[1] Newmark P. Nobel prize for Japanese immunologist. Nature, 1987, 329(6140): 570.

[2] Liu JX, Zheng CX. Current Immunology—Elements of Immune Cells and Molecules. Beijing: Tsinghua University Press, 2002.劉建欣, 鄭昌學. 現代免疫學——免疫的細胞和分子基礎. 北京: 清華大學出版社, 2002.

[3] Smith GP. Filamentous fusion phage: novel expression vector that display cloned antigens on the viron surface. Science, 1985, 228(4705): 1315?1317.

[4] McCafferty J, Griffiths AD, Winter G, et al. Phage antibodies: filamentous phage displaying antibody variable domains. Nature, 1990, 348(6301): 552?554.

[5] Gr?wall C, St?hl S. Engineered affinity proteinsgeneration and applications. J Biotechnol, 2009, 140(3/4): 254?269.

[6] Barbas CF III, Burton DR, Scott JK, et al. Phage Display: A Laboratory Manual. New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2001.

[7] Daugherty PS. Protein engineering with bacterial display. Curr Opin Struct Biol, 2007, 17(4): 474?480.

[8] L?fblom J, Sandberg J, Wernérus H, et al. Evaluation of staphylococcal cell surface display and flow cytometry for postselectional characterization of affinity proteins in combinatorial protein engineering applications. Appl Environ Microbiol, 2007, 73(21): 6714?6721.

[9] Boder ET, Wittrup KD. Yeast surface display for screening combinatorial polypeptide libraries. Nat Biotechnol, 1997, 15(6): 553?557.

[10] Ho M, Nagata S, Pastan I. Isolation of anti-CD22 Fv with high affinity by Fv display on human cells. Proc Natl Acad Sci USA, 2006, 103(25): 9637?9642.

[11] Hanes J, Plückthun A. In vitro selection and evolution of functional proteins by using ribosome display. Proc Natl Acad Sci USA, 1997, 94(10): 4937?4942.

[12] Nemoto N, Miyamoto-Sato E, Husimi Y, et al. In vitro virus: bonding of mRNA bearing puromycin at the 3’-terminal end to the C-terminal end of its encoded protein on the ribosome in vitro. FEBS Lett, 1997, 414(2): 405?408.

[13] Roberts RW, Szostak JW. RNA-peptide fusions for the in vitro selection of peptides and proteins. Proc Natl Acad Sci USA, 1997, 94(23): 12297?12302.

[14] Tabuchi I, Soramoto S, Nemoto N, et al. An in vitro DNA virus for in vitro protein evolution. FEBS Lett, 2001, 508(3): 309?312.

[15] Bertschinger J, Grabulovski D, Neri D. Selection of single domain binding proteins by covalent DNA display. Protein Eng Des Sel, 2007, 20(2): 57?68.

[16] Sepp A, Tawfik DS, Griffiths AD. Microbead display by in vitro compartmentalisation: selection for binding using flow cytometry. FEBS Lett, 2002, 532(3): 455?458.

[17] Nord O, Uhlén M, Nygren P. Microbead display of proteins by cell-free expression of anchored DNA. J Biotechnol, 2003, 106(1): 1?13.

[18] Visintina M, Melib GA, Cannistracia I, et al. Intracellular antibodies for proteomics. J Immunol Methods, 2004, 290(1/2): 135?153.

[19] Bradbury A, Velappan N, Verzillo V, et al. Antibodies in proteomics I: generating antibodies. Trends Biotechnol, 2003, 21(6): 275?281.

[20] Holliger P, Hudson PJ. Engineered antibody fragments and the rise of single domains. Nat Biotechnol, 2005, 23(9): 1126?1136.

[21] Sommavilla R, Lovato V, Villa A, et al. Design and construction of a na?ve mouse antibody phage display library. J Immunol Methods, 2010, 353(1/2): 31?43

[22] Pansri P, Jaruseranee N, Rangnoi K, et al. A compact phage display human scFv library for selection of antibodies to a wide variety of antigens. BMC Biotechnol, 2009, 9: 6.

[23] Filpula D. Antibody engineering and modification technologies. Biomol Eng, 2007, 24(2): 201?215.

[24] Hey T, Fiedler E, Rudolph R, et al. Artificial, non-antibody binding proteins for pharmaceutical and industrial applications. Trends Biotechnol, 2005, 23(10): 514?522.

[25] Tomizaki K, Usui K, Mihara H. Protein-protein interactions and selection: array-based techniques for screening disease-associated biomarkers in predictive/early diagnosis. FEBS J, 2010, 277(9): 1996?2005.

[26] Hosse RJ, Rothe A, Power BE. A new generation of protein display scaffolds for molecular recognition. Protein Sci, 2006, 15(1): 14?27.

[27] Koide A, Bailey CW, Huang XL, et al. The fibronectin type III domain as a scaffold for novel binding proteins. J Mol Biol, 1998, 284(4): 1141?1151.

[28] Xu LH, Aha P, Gu K, et al. Directed evolution of high-affinity antibody mimics using mRNA display. Chem Biol, 2002, 9(8): 933?942.

[29] Nord K, Gunneriusson E, Ringdahl J, et al. Binding proteins selected from combinatorial libraries of an alpha-helical bacterial receptor domain. Nat Biotechnol, 1997, 15(8): 772?777.

[30] Beste G, Schmidt FS, Stibora T, et al. Small antibody-like proteins with prescribed ligand specificities derived from the lipocalin fold. Proc Natl Acad Sci USA, 1999, 96(5): 1898?1903.

[31] Borghouts C, Kunz C, Groner B. Peptide aptamers: recent developments for cancer therapy. Expert Opin Biol Ther, 2005, 5(6): 783?797.

[32] Silverman J, Liu Q, Bakker A, et al. Multivalent avimer proteins evolved by exon shuffling of a family of human receptor domains. Nat Biotechnol, 2005, 23: 1556?1561.

[33] Binz HK, Amstutz P, Plückthun A. Engineering novel binding proteins from nonimmunoglobulin domains. Nat Biotechnol, 2005, 23(10): 1257?1268.

[34] Dennis MS, Lazarus RA. Kunitz domain inhibitors of tissue factor-factor Vlla. I. Potent inhibitors selected from libraries by phage display. J Biol Chem, 1994, 269(35): 22129?22136.

[35] Williams A, Baird LG. DX-88 and HAE: a developmental perspective. Transfus Apher Sci, 2003, 29(3): 255?258.

[36] Schneider S, Buchert M, Georgiev O, et al. Mutagenesis and selection of PDZ domains that bind new protein targets. Nat Biotechnol, 1999, 17(2): 170?175.

[37] Ferrer M, Maiolo J, Kratz P, et al. Directed evolution of PDZ variants to generate high-affinity detection reagents. Protein Eng Des Sel, 2005, 18(4): 165?173.

[38] Smith GP, Patel SU, Windass JD, et al. Small binding proteins selected from a combinatorial repertoire of knottins displayed on phage. Mol Biol, 1998, 277(2): 317?332.

[39] Lehti? J, Teeri TT, Nygren P?. Alpha-amylase inhibitors selected from a combinatorial library of a cellulose binding domain scaffold. Proteins, 2000, 41(3): 316?322. [40] Hey T, Fiedler E, Rudolph R, et al. Artificial, non-antibody binding proteins for pharmaceutical and industrial applications. Trends Biotechnol, 2005, 23(10): 514?522.

[41] Collett JR, Cho EJ, Ellington AD. Production and processing of aptamer microarrays. Methods, 2005, 37(1): 4?15.

[42] Torres-Chavolla E, Alocilja EC. Aptasensors for detection of microbial and viral pathogens. Biosens Bioelectron, 2009, 24(11): 3175?3182.

[43] Brennan DJ, O'Connor DP, Rexhepaj E, et al. Antibody-based proteomics: fast-tracking molecular diagnostics in oncology. Nat Rev Cancer, 2010, 10(9): 605?617.

[44] Cheng AKH, Sen D, Yu HZ. Design and testing of aptamer-based electrochemical biosensors for proteins and small molecules. Bioelectrochemistry, 2009, 77(1): 1?12. [45] Bratkovi? T. Progress in phage display: evolution of the technique and its applications. Cell Mol Life Sci, 2010, 67(5): 749?767.

[46] Manjappa AS, Chaudhari KR, Venkataraju MP, et al. Antibody derivatization and conjugation strategies: application in preparation of stealth immunoliposome to target chemotherapeutics to tumor. J Control Release, 2011, 150(1): 2?22.

[47] Friedman M, St?hl S. Engineered affinity proteins for tumour-targeting applications. Biotechnol Appl Biochem, 2009, 53(1): 1?29.

[48] Lo ASY, Zhu Q, Marasco WA. Intracellular antibodies (intrabodies) and their therapeutic potential. Handb Exp Pharmacol, 2008, 181: 343?373.

[49] Bradbury A, Velappan N, Verzillo V, et al. Antibodies in proteomics II: screening, high-throughput characterization and downstream applications. Trends Biotechnol, 2003, 21(7): 312?317.

[50] Yang L, Nolan JP. High-throughput screening and characterization of clones selected from phage display libraries. Cytometry A, 2007, 71(8): 625?631.

[51] Turunen L, Takkinen K, S?derlund H, et al. Automated panning and screening procedure on microplates for antibody generation from phage display libraries. J Biomol Screen, 2009, 14(3): 282?293.

[52] Sepp A, Tawfik DS, Griffiths AD. Microbead display by in vitro compartmentalisation: selection for binding using flow cytometry. FEBS Lett, 2002, 532(3): 455?458.

[53] Uhlén M. Affinity as a tool in life science. Biotechniques, 2008, 44(5): 649?654.

[54] Walter G, Büssow K, Lueking A, et al. High-throughput protein arrays: prospects for molecular diagnostics. Trends Mol Med, 2002, 8(6): 250?253.

[55] Liu Y, Adams JD, Turner K, et al. Controlling the selection stringency of phage display using a microfluidic device. Lab Chip, 2009, 9(8): 1033?1036.

[56] Brody EN, Gold L, Lawn RM, et al. High-content affinitybased proteomics: unlocking protein biomarker discovery. Expert Rev Mol Diagn, 2010, 10(8): 1013?1022.

[57] Mayr LM, Fuerst P. The future of high-throughput screening. J Biomol Screen, 2008, 13(6): 443?448.

主站蜘蛛池模板: 国产在线精彩视频论坛| 色综合久久无码网| 午夜激情婷婷| 国产欧美视频综合二区| 最新痴汉在线无码AV| 国产精品自在在线午夜| 免费无码网站| 成年网址网站在线观看| 茄子视频毛片免费观看| 天天色综网| 国产精品亚洲精品爽爽| 亚洲色欲色欲www网| 99精品影院| 91小视频版在线观看www| 亚洲AⅤ波多系列中文字幕| 久久国产黑丝袜视频| 亚洲性一区| 国产欧美视频一区二区三区| 国产在线麻豆波多野结衣| 欧美劲爆第一页| 久久成人国产精品免费软件| 国产精品网拍在线| 国产精品私拍99pans大尺度| 97超级碰碰碰碰精品| 97色伦色在线综合视频| 国产精品欧美亚洲韩国日本不卡| 久久精品中文字幕少妇| 自拍中文字幕| 91精品福利自产拍在线观看| 四虎国产在线观看| 精品福利视频网| 国产一级裸网站| av在线5g无码天天| 人妻中文久热无码丝袜| 丰满人妻中出白浆| 国产网站免费| 欧美亚洲一区二区三区导航| 久久综合成人| 丁香亚洲综合五月天婷婷| 99热国产这里只有精品9九| 日韩欧美视频第一区在线观看| 在线观看亚洲精品福利片| 欧美一区二区三区香蕉视| 亚洲二三区| 免费在线不卡视频| 亚洲天堂视频在线观看免费| av一区二区无码在线| 国产成人免费视频精品一区二区| 日韩第一页在线| 亚洲性日韩精品一区二区| 国产精品免费久久久久影院无码| 欧美一级黄色影院| 国产一级片网址| 丁香六月激情婷婷| 日韩av电影一区二区三区四区| 中文无码精品a∨在线观看| 精品久久久久久中文字幕女| 精品视频第一页| 97超级碰碰碰碰精品| 欧美一区福利| 亚洲精品久综合蜜| 亚洲天堂视频网站| 久草视频一区| 精品国产网| 亚洲综合经典在线一区二区| 美女无遮挡拍拍拍免费视频| 亚洲V日韩V无码一区二区 | 精品国产免费观看一区| 日本黄色不卡视频| 国产成人综合网| 黄片一区二区三区| 国产一区二区精品福利| 欧美亚洲国产精品久久蜜芽| 日韩成人在线网站| 欧美一级高清免费a| 天天综合网色| 亚洲精品成人7777在线观看| 一级做a爰片久久毛片毛片| 国产男女免费视频| 免费国产小视频在线观看| 国产丝袜丝视频在线观看| 人人爱天天做夜夜爽|