999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

miRNA在腫瘤研究中的進展

2010-08-14 01:15:56陳軍瑩綜述姚德生審校
重慶醫學 2010年22期
關鍵詞:乳腺癌研究

陳軍瑩綜述,姚德生審校

(廣西醫科大學附屬腫瘤醫院婦瘤科,南寧 530021)

微小RNA(miRNA)最早在線蟲中被發現[1-2],結構上主要有3個特點:(1)本身不具有開放閱讀框架(ORF)及蛋白質編碼基因的特點;(2)通常的長度約為22個核苷酸;(3)有獨特的特征序列。很多學者認為miRNA對其靶基因主要為抑制作用,但是,2007年,美國哈佛醫學研究所在研究ARE的調控作用中發現,miRNA有活化翻譯的作用,即在細胞周期的調控中上調靶m RNA的翻譯[3]。在細胞周期停滯的情況下,識別TNF alpha m RNA中ARE的miRNA369-3能夠上調或活化m RNA的翻譯。通過構建其他3′UTR的報告基因,發現其他幾個miRNA同樣在細胞周期抑制的情況下活化基因的翻譯:let-7能夠活化含有H MGA23′UTR報告基因的翻譯;人工合成的miRcxcr4能夠活化3′UT R含有其識別位點的報告基因的翻譯。2008年,Orom等[4]發現與大多數miRNA總和m RNA 3′端結合的概念不同,miR-10a能與核糖蛋白的m RNA的5′TOP M otif功能性結合,并增強其翻譯。從這些研究結果看來,miRNA在功能發揮中可能只是起靶向識別的作用,而發揮何種功能則是由其結合位點和相應的結合蛋白決定。

1 miRNA與腫瘤的關系

miRNA在腫瘤中的作用主要在血管再生、細胞調亡、侵襲/轉移、細胞增殖、腫瘤發生幾個方面,近年來的一些報道見表1,由于miRNA與腫瘤的關系如此密切,以至于研究者們直接稱之為癌基因miRNA或抑癌基因miRNA。在大多數情況下,失調控的miRNA始終只上調或下調,但也存在一些不尋常的情況,例如,miR-181家族的成員在某些腫瘤中是上調的,如甲狀腺、胰腺癌和前列腺癌[5],但在另一些腫瘤中卻是下調的,如膠質母細胞瘤和垂體腺瘤[6-7]。

表1 部分miRNAs功能

2 癌基因miRNA

2.1 miR-17-92簇 miR-17-92簇是定位于人染色體13q31的多順反子miRNAs[20],共包括7個成熟 miRNAs分子:miR-17-5p、miR-17-3p、miR-18、miR-19a、miR-20、miR-19b-1、miR-92-1。miR-17-92簇的表達水平在腫瘤組織中顯著升高,與多個癌基因或抑癌基因密切相關:(1)癌基因c-Myc。Olive等[21]用小鼠B細胞淋巴瘤Emu-myc模型,功能解剖miR-17-92簇單個組件發現:miR-19能夠激活Akt-m TOR通路,對抗pten蛋白,同時協同癌基因C-Myc,誘導細胞增殖,這些都證明miR-19是miR-17-92簇群中最重要的癌基因分子。Mu等[22]通過特定敲除miR-17-92的等位基因片斷實驗證實,在c-Myc誘導B細胞淋巴瘤的機制中,持續表達內生型miR-17-92是必不可少的條件,同時也證實,miR-19a和 miR-19b是 miR-17-92簇中絕對、充分的具有決定意義的癌基因miRNA。(2)抑癌基因PTEN。Xiao等[23]在小鼠的動物實驗中植入 miR-17-92高表達的淋巴細胞后,這些小鼠患淋巴細胞增生性疾病和自身免疫性疾病并過早死亡,有作者認為可能為miR-17-92抑制pten基因和促凋亡蛋白Bim。(3)抑癌基因 RB2。Wang等[24]發現miR-17-92與脂肪細胞分化有關,將miR-17-92穩定轉染至小鼠脂肪前細胞3T3L 1中,使得細胞分化,同時發現Rb2/p130 m RNA和蛋白數量在隨后的增殖階段中減少,使用siRNA敲減3T3L 1克隆增殖階段的Rb2/p130后,3T3L1細胞重現高水平miR-17-92;表明miR-17-92通過靶基因Rb2/p130影響細胞分化。(4)抑癌基因 p53。Yan等[25]發現在大腸癌中,miR-17-92簇與p53呈負相關,在包含野生型p53的低氧處理細胞中,miR-17-92減少,但在不含p53的低氧處理細胞中,miR-17-92水平不變,檢測發現miR-17-92與p53存在綁定位點,同時,miR-17-92的高表達抑制缺氧情況下的細胞凋亡,這都表明miR-17-92是p53在缺氧情況下的靶分子。

2.2 miR-21 MiR-2l位于染色體17q23.2上的空泡膜蛋白基因的3′UTR區,該區域經常在神經細胞瘤、乳腺癌、結腸癌和肺癌中表達增強,miR-21也被認為是經典的癌基因 miRNA:(1)在神經系統腫瘤中的研究表明,miR-21在惡性膠質瘤中的表達水平明顯上調,下調miR-21的表達可以觸發caspases的激活,從而導致腫瘤細胞的凋亡。最近有研究證明星型膠質細胞瘤的各個階段miR-21均升高[26]。(2)miR-21在乳腺癌組織中表達上調。在乳腺癌標本MDAMB-231中PDCD4和maspin的蛋白含量與miR-21的表達呈負相關,抑制miR-21的表達或增加TPM1的表達水平能明顯減少癌細胞的侵襲和肺轉移[13]。Wickramasinghe等[27]報道,miR-21在雌激素受體陽性的乳腺腫瘤中的表達比陰性的乳腺腫瘤高,證明雌激素能夠誘導miR-21的減少,這種抑制是α-ER誘導的,在miR-21受抑制后,其靶基因 Pdcd4、PTEN和Bcl-2蛋白表達增高,使用siRNA敲除α-ER可以阻止這3種基因表達升高。這些結果第一次用實驗證明E2通過激活雌激素受體,抑制癌基因miR-21。此外,還有研究表明,在乳腺癌細胞系中,骨形態發生蛋白-6(BMP-6)可以通過降低 deltaEF1和 AP-1來抑制miR-21[28]。(3)在消化系腫瘤的研究中,有研究用原位雜交分析(ISH)發現,miR-21在結直腸癌組織中的表達遠遠高于正常的結直腸黏膜,同時miR-21的高表達同樣可以在與癌癥相關的基質成纖維細胞中發現,這些現象提示miR-21的表達可以被腫瘤細胞因子誘導。PDCD4的表達與 miR-21呈負相關,是miR-21的靶基因。在內鏡檢查中,miR-21在癌組織中的表達遠遠高于與非腫瘤相關的息肉組織。使用LNA-ISH分析發現,miR-21可以提示癌前病變,并且在結、直腸腫瘤從腺瘤到進展期癌癥的過程中持續高表達。Meng等[29]發現,miR-21在肝細胞癌組織中上調,抑制體外細胞中miR-21后,PTEN基因表達上調,同時細胞增殖、侵襲能力下降,中心黏附激酶(FAK)、MMP-9、MM P-2表達下降,表明 miR-21可以抑制PT EN基因。此外,miR-21還通過負調控腫瘤抑制基因——原肌球蛋白1(tropomodulin,TPM1)、程序性細胞死亡4(programmed celldeath 4,PDCD4)和maspin來促進細胞的侵襲轉移。(4)Liu等[30]發現,miR-21在喉癌組織中高表達,用特異反義核苷酸敲除喉癌HEp-2細胞中的miR-21后,因為缺失由G1到S期的轉換調控,細胞數量減少,凋亡增加。

2.3 miR-10b Ma等[31]證明,miR-10b特異性地增加腫瘤細胞的侵襲,但不影響細胞的生活力和增殖。將過表達miR-10b的乳腺癌細胞系SUM159注射到小鼠乳房脂肪細胞中可以觀察到腫瘤細胞簇的肺部微小轉移,并有部分細胞轉移到胸膜。在乳腺癌細胞系中,miR-10b通過轉錄因子Twist的作用大量表達,進而抑制其靶基因抑瘤蛋白HOXD10的表達,同時增加介導細胞轉移蛋白RHOC的翻譯。實驗證明,HOXD10的過表達抑制RhoC蛋白的表達水平,能夠阻止miR-10b誘導的腫瘤細胞侵襲轉移[32-33]。另外,有學者使用RT-PCR技術,對 43例膠質瘤樣本和6個膠質瘤細胞系進行檢測發現,相比無腫瘤的腦組織,miR-10b在這些標本中均升高,且升高的水平與膠質瘤的惡性程度呈正相關,Rho C蛋白和尿激酶型纖溶酶原激活受體也與 miR-10b水平密切相關(P值分別為 0.009、0.014)。這些數據均提示miR-10b可能在膠質瘤的浸潤過程中扮演重要角色。

2.4 miR-155 miR-155由BIC基因(B cellintegration cluster)編碼 ,最初是作為轉錄物從禽白血病病毒ALV的整合位點中分離出來的。人類BIC基因定位于人染色體21q21,含3個外顯子,其中第3個外顯子編碼miR-155。由于缺乏足夠長的開放閱讀框架,BIC基因不能編碼蛋白質,所以其主要功能可能是產生miR-155。BIC基因活化可促進淋巴瘤和非白血性白血病的發病過程,而這兩種疾病又與癌基因c-Myc上調有關。miR-155在血液系統疾病中研究較為深入:miRNA-155在霍奇金淋巴瘤和Burkitt淋巴瘤中表達水平明顯升高,尤其是在B細胞淋巴瘤中,可出現miR-155前體10~30倍的蓄積現象;而在非霍奇金淋巴瘤中幾乎不表達miR-155。miR-155很可能是細胞由炎癥進展到腫瘤的重要分子,Tili等[34]發現,許多血液系統疾病可以發現中等程度的miR-155過表達,轉入過表達的miR-155可以使小鼠細胞致癌,然而在炎癥應答中,有機體可以出現短時間的更高水平的miR-155表達,而為什么持續中等量的miR-155的過表達可以致癌原因不明。在實體瘤的研究中,miR-155是早期胰腺癌的可靠生物標記物[35],能抑制凋亡激活因子TP53INP 1的活性。乳腺癌中miR-155也存在過表達。有學者通過生物信息學分析,推測細胞因子、化學增活素和轉錄因子可能都是miR-155的靶點,而最近發現的靶點是SHIP和C/EBPbeta,兩個都是白細胞介素-6信號通路上的重要調節因子[36]。

2.5 miR-221及miR-222 人甲狀腺乳頭狀癌(PTC)組織中miR-221和miR-222高水平表達(增高11~19倍)與 KIT基因和蛋白的低表達同時存在,表明miR-221和miR-222對其靶基因KIT的負性調控可能與甲狀腺癌的發生有關。Garofalo等[37]通過實驗證實,miR-221和miR-222在非小細胞肺癌和肝癌中過表達,它們的靶基因是腫瘤抑制因子PT EN和TIMP 3,通過激活AKT途徑促進細胞轉移,同時此研究還證明,通過 c-Jun轉錄因子,癌基因M ET也參與miR-221和miR-222的活化作用。此外,還有研究表明,miR-221和miR-222在血管平滑肌細胞的異常增生中有重要作用,p27和p57是它們的兩個重要靶基因[38]。

2.6 miR-372及miR-373 miR-372和miR-373在人類睪丸生殖細胞腫瘤中高表達。Voorhoeve等[39]證實,miR-372和miR-373是通過阻斷RAS誘導的老化以及干擾 RAS介導的細胞轉化來使細胞對正常表達的p53等位基因所產生效應的敏感性降低,并認為具有正常p53功能的腫瘤組織中可能出現miR-372和miR-373的病理性表達水平升高。為了深入研究這兩種miRNA的致癌機制,他們進一步檢測了高表達miR-372和miR-373細胞的基因表達譜,發現這2個miRNA可能通過直接抑制腫瘤抑制基因LATS2的表達來阻斷p53介導的CDK抑制,從而促進細胞的增殖和腫瘤的生長。而在最近的關于人誘導多能干細胞的研究中,miR-371/372/373簇群表達了更好的組織特異性[40],有待于進一步的研究。

3 抑癌基因miRNA

3.1 miR-15a/16-1 miR-15a和 miR-16-1,定位于人染色體13q14的LEU 2區域內,在人類慢性淋巴細胞白血病(CLL)中充當著抑癌基因的角色,是最早得到證實的與腫瘤有相關性的miRNA。在CLL患者中,Calin等[41]研究發現68%的C LL病例會發生13q14的缺失,miR-15a和miR-16-1是這個缺失區域內僅有的2個基因,它們的表達水平均下調或缺失。后來有研究結果顯示,抗凋亡蛋白 Bcl-2是miR-15a和miR-16-1的靶基因之一,miR-15a和miR-16-1可以從轉錄后水平負性調控Bcl-2表達。此研究結果提示miR-15a和miR-16-1可以被用來治療過度表達Bcl-2的腫瘤。現在,已知的miR-15a/16-1的直接靶基因有Bcl-2、MC L1、CCND1、WNT 3A 及miR-15a/16-1[42],這些研究將為癌癥患者(特別是CLL)指引新的治療方向。

3.2 miR-34 miR-34家族定位在人類染色體1p36,一個在人類腫瘤(如神經母細胞瘤)中常發生缺失的區帶[43]。miR-34家族成員(miR-34a和miR-34b/c)是抑癌基因p53的直接靶分子;而p53是人類最常見癌癥的突變基因之一,可以激活一系列的轉錄產物,誘導細胞周期阻滯、凋亡及衰老。在多種癌細胞培養體系的體外研究中(如乳腺癌、非小細胞肺癌等),無論是外源性還是生理性的應激均可通過p53途徑引起miR-34的高表達。許多腫瘤中經常可以發現miR-34a和miR-34b/c基因受到CpG甲基化的影響而失活。miR-34是p53基因信號通路的參與者,過度表達 miR-34至少可以通過CDK 4、CDK 6、cyclinE2、E2F 3、Bcl-2等誘發細胞周期停滯在G1期和抑制細胞增殖及集落形成,誘導凋亡。最近發現,MiR-34、SIRT 1和p53能夠形成一個環狀反饋機制,SIRT 1是一個調節細胞周期限制細胞壽命的基因,通過脫乙酰作用調控p53,進一步調節miR-34的活性,而miR-34又可以抑制 SIRT 1,形成一個正反饋環,使p53活性提高[44]。

3.3 let-7/miR-98 let-7/miR-98家族無所不在,是最早得到識別確認的哺乳動物miRNA之一,包含12個成員(let-7-a1、a2、a3、b、c、d、e、f1、f2、g、i和 miR-98),定位于 8 個不同的同源染色體,12個成員有9個不同的let-7序列,但同為一個種子序列,其靶基因存在重疊。已經確認的let-7家族的靶基因包含有細胞周期調節子CDC25A、CDK6、caspase-3,癌基因 RAS、c-Myc,胚胎基因 HMGA2、Mlin-41、IMP-1等等[45]。Let-7發生突變的細胞不能進入正常的細胞周期,不能在正確的時間進行分化。肺癌組織中let-7的表達水平下調,且低表達let-7的患者生存期縮短,這提示let-7可能是一個腫瘤抑制基因。Chin等[46]發現,在非小細胞肺癌患者(74例)中,KRAS基因 3′端Let-7綁定位點的SNP等位基因變異頻率為18.1%~20.3%,而健康人群僅占5.8%。Motoyama等[47]使用real-time PCR技術分析了110個胃癌患者高遷移率組A蛋白(HMGA 2)的表達,發現HMGA2在胃癌組織中的表達遠遠高于正常組織,并且HMGA2的表達與漿膜侵犯、不良預后呈正相關,證明HMGA 2是胃癌的獨立預后因子,而let-7-a、let-7-b、let-7-c表達水平與HMGA 2的表達呈負相關,是HMGA2的負調節子。

3.4 miR-143及miR-145 miR-143和miR-145定位于染色5q33.1,被認為,是腫瘤抑制基因,與細胞分化關系密切。最初的研究認為miR-143與脂肪細胞分化有關,當脂肪細胞分化時,miR-143水平升高,當miR-143受抑制時,脂肪細胞的分化受抑,而遺傳物質和三酰甘油堆積,其機制可能與ERK5蛋白水平有關。在誘導細胞分化方面,Cordes等[48]證明,miR-143及miR-145在誘導多能干細胞向平滑肌細胞轉化中有重要促進作用。Northern免疫印跡分析表明,miR-143和miR-145在結腸癌、乳腺癌、前列腺癌、子宮內膜癌、淋巴瘤等細胞系中表達量明顯下調 。2009年,Suzuki等[49]發現,野生型 p53基因可以提高miR-143及miR-145轉錄后活性,而突變型p53基因則減少這些成熟miRNA的表達,進一步的實驗發現突變型的p53因為影響了Drosha復合體和p68,導致miRNA合成受抑。

[1]Lee RC ,Feinbaum RL ,Ambros V.The C.elegans heterochronic gene lin-4 encodes small RNAs with antisense com plementarity to lin-14[J].Cell,1993,75(5):843.

[2]Pasquinelli AE,Reinhart BJ,Slack F ,et al.Conservation of the sequence and temporal expression of let-7 heterochronic regulatory RNA[J].Nature,2000,408(6808):86.

[3]Vasudevan S,Tong Y ,Steitz JA.Switching from repression to activation:miRNAs can up-regulate translation[J].Science,2007 ,318(5858):1931.

[4]Orom UA ,Nielsen FC ,Lund AH.miRNA-10a binds the 5′UTR of ribosomal protein m RNAs and enhances their translation[J].M ol Cell,2008,30(4):460.

[5]Volinia S,Calin GA ,Liu CG,et al.A miRNA expression signature of human solid tumors defines cancer gene targets[J].Proc Natl Acad Sci U S A ,2006,103(7):2257.

[6]Bottoni A,Zatelli MC,Ferracin M ,et al.Identification of differentially expressed miRNAs by microarray:a possible role for miRNA genes in pituitary adenomas[J].J Cell Physiol,2007 ,210(2):370.

[7]Ciafre SA ,Galardi S ,M angiola A,etal.Extensive modulation of a set of miRNAs in primary glioblastoma[J].Biochem Biophys Res Commun,2005 ,334(4):1351.

[8]Bonauer A,Carmona G,Iwasaki M,et al.miRNA-92a controls angiogenesis and functional recovery of ischemic tissues in mice[J].Science,2009,324(5935):1710.

[9]van Solingen C,Seghers L,Bijkerk R,et al.Antagomirmediated silencing of endothelial cell specific miRNA-126 impairs ischemia-induced angiogenesis[J].J Cell Mol Med,2009 ,13(8A):1577.

[10]Chan LS ,Yue PY ,Mak NK,et al.Role of miRNA-214 in ginsenoside-Rg1-induced angiogenesis[J].Eur J Pharm Sci,2009,38(4):370.

[11]Wang Y,Lee CG.miRNA and cancer--focus on apoptosis[J].J Cell Mol Med,2009 ,13(1):12.

[12]Lynam-Lennon N ,Maher SG,Reynolds JV.The roles of miRNA in cancer and apoptosis[J].Biol Rev Camb Philos Soc,2009 ,84(1):55.

[13]Zhu S ,Wu H ,Wu F ,et al.miRNA-21 targets tumor suppressor genes in invasion and metastasis[J].Cell Res,2008,18(3):350.

[14]Olson P ,Lu J,Zhang H ,et al.miRNA dynamics in the stages of tumorigenesis correlate with hallmark capabilities of cancer[J].Genes Dev,2009 ,23(18):2152.

[15]Sachdeva M,Mo YY.miRNA-145 Suppresses Cell Invasion and Metastasis by Directly Targeting Mucin 1[J].Cancer Res,2010 ,70(1):378.

[16]Lee KH ,Goan YG ,Hsiao M ,et al.miRNA-373(miR-373)post-transcriptionally regulates large tumor suppressor,homolog 2(LATS2)and stimulates proliferation in human esophageal cancer[J].Exp Cell Res,2009,315(15):2529.

[17]Yan D,Zhou X,Chen X ,et al.miRNA-34a inhibits uveal melanoma cellproliferation and migration through dow nregulation of c-Met[J].Invest Ophthalmol Vis Sci,2009,50(4):1559.

[18]Pineau P ,Volinia S,McJunkin K,et al.miR-221 overexpression contributes to liver tumorigenesis[J].Proc Natl Acad Sci USA ,2010,007(1):264.

[19]Lambertz I,Nittner D ,Mestdagh P ,et al.Monoallelic but not biallelic loss of Dicer1 promotes tumorigenesis in vivo[J].Cell Death Differ,2010 ,17(4):633.

[20]Zhang ZW ,An Y,Teng CB.The roles of miR-17-92 cluster in mammal development and tumorigenesis[J].Yi Chuan ,2009,31(11):1094.

[21]Olive V ,Bennett MJ,Walker JC ,et al.miR-19 is a key oncogenic component of mir-17-92[J].Genes Dev ,2009,23(24):2839.

[22]Mu P,Han YC ,Betel D,et al.Genetic dissection of the miR-17 approximately 92 clusster of miRNAs in Mycinduced B-cell lym phomas[J].Genes Dev,2009,23(24):2806.

[23]Xiao C,S rinivasan L,Calado DP,et al.Lymphoproliferative disease and autoimmunity in mice with increased miR-17-92 expression in lymphocytes[J].Nat Immunol,2008,9(4):405.

[24]Wang Q,Li YC,Wang J,et al.miR-17-92 cluster accelerates adipocyte differentiation by negatively regulating tumor-suppressor Rb2/p130[J].Proc Natl Acad Sci U S A ,2008,105(8):2889.

[25]Yan HL ,Xue G ,Mei Q,et al.Repression of the miR-17-92 cluster by p53 has an important function in hypoxiainduced apoptosis[J].EM BO J,2009 ,28(18):2719.

[26]Conti A ,Aguennouz M ,La Torre D,et al.miR-21 and 221 upregulation and miR-181b dow nregulation in human grade Ⅱ-Ⅳ astrocytic tumors[J].J Neurooncol,2009,93(3):325.

[27]Wickramasinghe NS,M anavalan T T ,Dougherty SM ,et al.Estradiol dow nregulates miR-21 expression and increases miR-21 target gene expression in MCF-7 breast cancer cells[J].Nucleic Acids Res,2009,37(8):2584.

[28]Du J,Yang S ,An D,et al.BMP-6 inhibits miRNA-21 expression in breastcancer through repressing deltaEF1 and AP-1[J].Cell Res,2009 ,19(4):487.

[29]Meng F,Henson R,Wehbe-Janek H ,et al.miRNA-21 regulates expression of the PTEN tumor suppressor gene in human hepatocellular cancer[J].Gastroenterology,2007,133(2):647.

[30]Liu M ,Wu H,Liu T ,et al.Regulation of the cell cycle gene,BTG 2,by miR-21 in human laryngeal carcinoma[J].Cell Res,2009 ,19(7):828.

[31]Ma L,Teruya-Feldstein J,Weinberg RA.Tumour invasion and metastasis initiated by miRNA-10b in breast cancer[J].Nature,2007 ,449(7163):682.

[32]Schuldt A.Micromanaging metastasis[J].Nat Cell Biol,2007,9(10):1121.

[33]Steeg PS.Cancer:micromanagement of metastasis[J].Nature,2007 ,449(7163):671.

[34]Tili E,Croce CM ,Michaille JJ.miR-155:on the crosstalk between inflammation and cancer[J].Int Rev Immunol,2009,28(5):264.

[35]Habbe N ,Koorstra JB ,Mendell JT ,et al.miRNA miR-155 is a biomarker of early pancreatic neoplasia[J].Cancer Biol Ther,2009,8(4):340.

[36]Costinean S ,Sandhu SK ,Pedersen IM ,etal.Src homology 2 domain-containing inositol-5-phosphatase and CCAAT enhancer-binding protein beta are targeted by miR-155 in B cells of Emicro-MiR-155 transgenic mice[J].Blood,2009,114(7):1374.

[37]Garofalo M ,Di Leva G ,Romano G,et al.miR-221&222 regulate T RAIL resistance and enhance tumorigenicity through PT EN and TIMP3 dow nregulation[J].Cancer Cell,2009,16(6):498.

[38]Liu X,Cheng Y ,Zhang S ,et al.A necessary role of miR-221 and miR-222 in vascular smooth muscle cellproliferation and neointimal hyperplasia[J].Circ Res,2009,104(4):476.

[39]Voorhoeve PM ,le Sage C,Schrier M ,et al.A genetic screen implicates miRNA-372 and miRNA-373 as oncogenes in testiculargerm celltumors[J].Adv Exp M ed Biol,2007 ,604:17.

[40]Wilson KD,Venkatasubrahmanyam S ,Jia F ,et al.miRNA profiling of human-induced pluripotent stem cells[J].Stem Cells Dev,2009,18(5):749.

[41]Calin GA ,Dumitru CD ,Shimizu M ,et al.Frequent deletions and down-regulation of micro-RNA genes miR15 and miR16 at13q14 in chronic lymphocytic leukemia[J].Proc Natl Acad Sci U S A ,2002,99(24):15524.

[42]Aqeilan RI,Calin GA ,Croce CM.miR-15a and miR-16-1 in cancer:discovery,function and future perspectives[J].Cell Death Differ,2010,17(2):215.

[43]Hermeking H.The miR-34 family in cancer and apoptosis[J].Cell Death Differ,2010,17(2):193.

[44]Zhang Y ,Gao JS ,Tang X ,et al.miRNA 125a and its regulation of the p53 tumor suppressor gene[J].FEBS Lett,2009,583(22):3725.

[45]Peter ME.Let-7 and miR-200 miRNAs:guardians against pluripotency and cancer progression[J].Cell Cycle,2009,8(6):843.

[46]Chin LJ,Ratner E ,Leng S ,etal.A SNP in a let-7 miRNA complementary site in the KRAS 3′untranslated region increases non-smallcelllung cancer risk[J].Cancer Res,2008,68(20):8535.

[47]Motoyama K,Inoue H ,Nakamura Y ,et al.Clinical significance of high mobility group A2 in human gastric cancer and its relationship to let-7 miRNA family[J].Clin Cancer Res,2008,14(8):2334.

[48]Cordes KR,Sheehy NT ,White MP ,et al.miR-145 and miR-143 regulate smooth muscle cell fate and plasticity[J].Nature,2009 ,460(7256):705.

[49]Suzuki HI,Yamagata K ,Sugimoto K ,et al.Modulation of miRNA processing by p53[J].Nature,2009,460(7254):529.

猜你喜歡
乳腺癌研究
絕經了,是否就離乳腺癌越來越遠呢?
中老年保健(2022年6期)2022-08-19 01:41:48
FMS與YBT相關性的實證研究
2020年國內翻譯研究述評
遼代千人邑研究述論
視錯覺在平面設計中的應用與研究
科技傳播(2019年22期)2020-01-14 03:06:54
乳腺癌是吃出來的嗎
EMA伺服控制系統研究
胸大更容易得乳腺癌嗎
男人也得乳腺癌
別逗了,乳腺癌可不分男女老少!
祝您健康(2018年5期)2018-05-16 17:10:16
主站蜘蛛池模板: jizz国产视频| 亚洲精品高清视频| 精品综合久久久久久97| 国产精品所毛片视频| 大香网伊人久久综合网2020| 天堂亚洲网| 中文字幕在线永久在线视频2020| 四虎成人在线视频| 5388国产亚洲欧美在线观看| 毛片视频网| 国模私拍一区二区| 毛片基地视频| 国产毛片高清一级国语| 欧美日韩第二页| 国产自在自线午夜精品视频| a欧美在线| 亚洲男人天堂网址| 国内精品视频在线| 国产性猛交XXXX免费看| 中国精品久久| 成人午夜亚洲影视在线观看| 97久久超碰极品视觉盛宴| 国产人成在线观看| 国产黄网永久免费| 欧美成人精品一区二区| 国产91无毒不卡在线观看| 99er这里只有精品| 色偷偷男人的天堂亚洲av| 亚洲综合色婷婷中文字幕| 国产成人福利在线| jizz在线免费播放| 日韩 欧美 小说 综合网 另类| 青青草综合网| 国产va免费精品观看| 青草91视频免费观看| 久久夜色精品| 久久精品国产电影| 毛片在线看网站| 国产迷奸在线看| 韩日午夜在线资源一区二区| 日本黄色不卡视频| 欧美高清日韩| 亚洲成a人片77777在线播放| 91丝袜乱伦| 中文字幕永久在线看| аⅴ资源中文在线天堂| 日本高清在线看免费观看| 97亚洲色综久久精品| 国产精品刺激对白在线| 久久亚洲精少妇毛片午夜无码 | www.精品国产| 中字无码精油按摩中出视频| 国产精品福利在线观看无码卡| 无码专区国产精品一区| 国产成人艳妇AA视频在线| 国产成人免费视频精品一区二区 | 亚洲天堂成人在线观看| 激情爆乳一区二区| 亚洲国产第一区二区香蕉| 久青草国产高清在线视频| 国产三级成人| 亚洲一区二区在线无码| 美女亚洲一区| 久爱午夜精品免费视频| 色哟哟精品无码网站在线播放视频| www欧美在线观看| 欧美全免费aaaaaa特黄在线| 凹凸国产分类在线观看| 伊人激情综合网| 免费观看成人久久网免费观看| 精品国产网| 亚洲区欧美区| 久久综合激情网| 国产精选小视频在线观看| 久久国产精品娇妻素人| 97精品国产高清久久久久蜜芽| 99热这里只有精品免费国产| 亚洲免费黄色网| 91视频免费观看网站| 手机在线国产精品| 欧美成人精品高清在线下载| 国产欧美精品一区aⅴ影院|