劉夢培,田 敏,傅大立,傅建敏,王彩霞
(1.中國林科院經濟林研究開發中心,河南 鄭州 450003;2.中國林科院亞熱帶林業研究所,浙江 富陽 311400)
微衛星DNA又稱簡單序列重復(simple sequence repeats,SSR),是由1~6個堿基多次串聯重復組成的核苷酸序列,在基因組間廣泛分布,具有共顯性、重復性好、多態性高、擴增結果穩定、檢測手段簡便易行等優點[1],已成功應用在物種的遺傳多樣性(genetic diversity)[2-3]、遺傳圖譜構建(genetic mapping)[4-5]、系譜分析(Pedigree analysis)[6-7]、遺傳育種(Genetics and Breeding)[8-9]等方面。
微衛星DNA條帶的鑒別常采用聚丙烯酰胺凝 膠 電 泳(Polyacrylamide gel electrophoresis,PAGE)銀染法,PAGE由Raymends和Weintraub在1959年創建,具有不易擴散、靈敏度高、分辨率高等優點[10]。銀染技術是其常用的顯影方法,如Bassam銀染法[11]、Sanguinetti銀染法以及在其基礎上改良的一系列銀染法。銀染法的缺陷是步驟繁瑣、耗時長、背景模糊、條帶不清等,極易造成DNA條帶錯判,從而產生分析誤差。許多研究者針對這些問題做了大量研究,但不能從根本上解決問題。本研究提出了微衛星PAGE的熒光染料顯影法,試圖從一個新的思路解決PAGE顯帶的問題。
杏屬不同品種幼嫩葉片;SSR引物UDP98-405,正向引物序列:5′-ACGTGATGAACTGACACCCA-3′,反向引物序列:5′-CCTACCGTCTCGTTTCT GAG-3′;GelRed核酸熒光染料。
PCR反應體系總體積20μL,其中10×PCR Buffer 2.0μL、25 mmol/L MgCl21.2μL、10 mmol/L dNTPs MiX 0.4μL、5 U/μL Taq DNA聚合酶0.3 μL、10μmol/L的上下游引物各0.5μL、DNA模板0.5μL、ddH2O 14.6μL。PCR反 應 在Bio-Rad C1000T M Thermal Cycler型號的擴增儀上進行。ISSR擴增程序為94℃預變性5min,94℃變性45 s,60℃退火45 s,72℃延伸90 s,35個循環,72℃延伸10 min,4℃保存。試驗于中國林科院亞熱帶林業研究所植物細胞工程實驗室內完成。
PCR產物在濃度為1.2%的瓊脂糖凝膠上分離;核酸熒光染料為GelRed,采用前染的方法,將GelRed核酸熒光染料加到溴酚藍上樣緩沖液中。將4μL PCR產物與2μL含有gelred的溴酚藍上樣緩沖液在PCR管中混合均勻,取3μL上樣,80 V電壓下電泳1.5 h。
電泳結束后,將凝膠直接放入上海產FR-200A型全自動紫外與可見分析裝置中進行拍照和分析。
PCR產物在8%(29∶1)聚丙烯酰胺凝膠上分離,膠片大小為195 mm×120 mm×1 mm(長×寬×高),將8μLPCR產物與2μL溴酚藍上樣緩沖液在PCR管中混合均勻,取3μL上樣,120 V電壓下電泳3 h。
電泳結束后,用自來水沖洗玻璃板雙面,預冷;剝下凝膠,固定液(0.5%冰醋酸、10%無水乙醇)中固定20 min;用ddH2O洗滌2次,銀染液(0.15%硝酸銀)中滲透15 min;再用ddH2O洗滌2次,顯影液(1.5%氫氧化鈉、1%甲醛)中顯影10~15 min,直至出現清晰的DNA條帶為止;顯影后立刻用ddH2O洗滌1次,將凝膠放入全自動紫外與可見分析裝置中進行拍照和分析。
PCR產物在8%(29∶1)聚丙烯酰胺凝膠上分離,凝膠規格同1.4;核酸熒光染料為GelRed,采用前染方法,同1.3。將8μL PCR產物與2μL含有gelred的溴酚藍上樣緩沖液在PCR管中混合均勻,取3μL上樣,120 V電壓下電泳3 h。
電泳結束后,用自來水沖洗玻璃板雙面,預冷;剝下凝膠,清水沖洗后,直接放入全自動紫外與可見分析裝置中進行拍照和分析。
瓊脂糖凝膠電泳檢測杏屬植物品種DNA的效果見圖1,圖片中的1~66分別代表杏屬的66個品種。從圖1中可以看出,杏屬66個品種的瓊脂糖凝膠電泳目的條帶清晰明亮,大小在100 bp左右,無非特異性擴增條帶。但由于瓊脂糖凝膠電泳分辨率低,只能區分約相差100 bp的DNA片段,故杏屬瓊脂糖凝膠電泳的結果為一條清晰的目的條帶,無法判定品種間差異。

圖1 瓊脂糖凝膠電泳檢測結果
改良的微衛星PAGE銀染法檢測杏屬植物品種DNA的效果見圖2。從圖2可以看出,杏屬PAGE銀染圖片的背景、分辨率、目的條帶相對清晰,從指紋圖譜可以有效進行品種間差異鑒定。但由于銀染步驟繁瑣,固定、銀染、顯影時間難以掌握,部分物種出現了染色深、背景模糊的現象,如品種1、5、42、53、54的指紋圖譜。此外,部分品種還容易出現主帶跟非特異性條帶區分不明顯的現象,如品種29、33、46、51、56、57的指紋圖譜。

圖2 改良銀染方法顯影結果
PAGE凝膠熒光染料對杏屬植物品種DNA顯色,效果非常理想,見圖3。從圖3可以看出,杏屬66個品種PAGE凝膠熒光染料顯影顯色的條帶與PAGE銀染結果完全一致,甚至那些微弱的非特異性條帶同銀染結果也完全一致。與PAGE銀染相比,PAGE熒光染料顯影的效果更好,表現為圖片背景更清晰、分辨率更高、目的條帶更清晰、主帶與非特異性條帶區分更加明顯等。由于PAGE凝膠熒光染料顯色法簡單易行,不會出現因時間控制不好導致染色過深或染色失敗的現象,因此,該方法具有更多優越性。

圖3 凝膠熒光染料法顯影結果
常用的DNA顯帶技術有Southern雜交、瓊脂糖凝膠電泳和PAGE凝膠電泳[13]。Southern雜交因使用放射性同位素而具有放射性污染,故很少被人使用。瓊脂糖凝膠電泳可快速分別、純化和判定DNA,但其分辨率低,無法區分微衛星DNA條帶,這一點在杏屬實驗結果中也得到了證實。聚丙烯酰胺凝膠電泳的分辨率高(理論上可以分開長度相差0.1%的DNA分子),在顯色上以銀染技術代替同位素放射技術而獨占優勢,故在微衛星分子標記分析方面應用廣泛。但PAGE銀染技術有步驟繁瑣、耗時長、顯色時間不易控制、背景模糊等缺陷,一般而言,普通的銀染技術需要2~3 h,本實驗采用改良的銀染技術也需要30~60 min。作者提出的PAGE熒光染料顯帶法既具有瓊脂糖凝膠電泳的快速分別、純化和判定DNA等優點,又具有PAGE銀染分辨率高的優點,而且還簡單易行,快速高效,是一種值得推廣的顯帶技術。
近些年,關于銀染技術的改良,人們進行了大量的研究,關海濤等[14]比較了Bassam和銀染法Sanguinett銀染法的顯影效果;梁宏偉等[15]對縮短銀染時間進行了研究;杜爽等[15]對聚丙烯酰胺凝膠的種類、濃度及其銀染方法進行了優化;許麗等[16]對銀染溫度和顯色溫度進行了研究。PAGE銀染的原理是利用銀離子和核苷酸結合,在堿性環境下甲醛能使陰離子還原從而使凝膠中的DNA得以顯現,故PAGE銀染的步驟繁瑣、背景不清晰、甲醛危害等問題無法從根本上得到解決。在銀染操作過程中,銀染后漂洗過度可能造成DNA帶不清晰或無帶的現象;AgNO3濃度高、銀染時間長、銀染后漂洗時間短、顯色時間長都有可能造成凝膠背景發黃、顏色過深等現象;另外,搖晃不均勻還可能造成顯影不均勻等現象。這些都是銀染技術很難避免的缺陷。
瓊脂糖電泳能快速分離、純化和判定DNA,優勢在于核酸熒光染料的利用,如EB、SYBR系列染料、UltraPower核酸染料、GelRed和GelGreen等,原理是熒光染料以非共價鍵的方式與DNA/RNA結合,在紫外線的照射下發出明亮的橙色熒光,實現DNA條帶顯示。利用相同的原理,在PAGE凝膠中使用核酸熒光染料,同樣可達到高分辨率、快速判定DNA的目的,而這一方法至今沒人采用。張玉魁等[17]認為EB毒性大,PAGE會淬滅EB的熒光,使EB檢測的靈敏度降低。本實驗使用的是無毒的熒光染料GelRed,研究發現聚丙烯酰胺對GelRed熒光并沒有產生淬滅作用,沒有降低GelRed的靈敏性。實驗結果表明,由于PAGE核酸熒光染料顯影法省去了銀染法瑣碎的步驟,因而簡單易行。
PAGE銀染、顯影的膠片質量對統計分析至關重要,若膠片背景色濃、分辨率低、條帶模糊,則在統計時很容易誤判,導致分析結果不準確,甚至完全錯誤[18]。微衛星PAGE熒光染料顯影法,顯影圖片的背景、分辨率、目的條帶都更加清晰可靠,可以在微衛星PAGE凝膠電泳上的顯帶分析上應用。
PAGE銀染容易伴隨出現一些顯色較淺的非特異性條帶,Murray等[19]認為這是由于DNA復制過程中的滑動錯配造成的。有時非特異性帶不能完全消除,但是它不會影響等位基因的判定,因為在某特定的位點上,非特異性帶的帶型通常是固定的,并且顯影后主帶比非特異性帶清晰、易讀[20]。微衛星PAGE熒光染料顯影法下,主帶跟非特異性條帶的區分比銀染法更加明顯。總之,微衛星PAGE熒光染料顯影法是一種成功的微衛星PAGE顯影方法。
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