日糧蛋白質和發酵碳水化合物水平對斷奶仔豬生長性能和腸道特性的影響

川北醫學院教務處 陳守云

昌邑市畜牧獸醫管理局 徐海濤

剛斷奶仔豬的日糧中過量的粗蛋白質（CP）可能會刺激蛋白質發酵和促進胃腸道中病原菌的增殖（Ball和Aherne，1987）。 通過降低日糧中 CP的含量（Nyachoti等，2006）或者通過增加日糧中可發酵碳水化合物（FC）的量（Awati，2005）可以達到減少蛋白質發酵的目的。本試驗旨在評定降低剛斷奶仔豬飼料中CP的水平或是增加剛斷奶仔豬飼料中FC的量是否對仔豬蛋白質發酵有負作用，并測定仔豬生長性能。

1 材料與方法

1.1 試驗動物與處理 本試驗選用272頭斷奶初生重為（8.7±0.17）kg、平均年齡為（26±0.8） d 約克夏和長白豬的二元雜交豬。所有斷奶仔豬被分到4個日糧處理中，每個處理日糧都包含低含量和高含量的CP和FC，并且每個處理按照2×2因子排列法分為10個重復。有4個重復中每欄中放8頭仔豬，有6個重復每欄中放6頭仔豬。所有仔豬均關在電池控制環境的欄（2.00 m×1.10 m）中。

1.2 試驗日糧 四組日糧的配制以低含量CP（15%）或高含量 CP（22%）與低含量 FC（7.5%）或高含量FC（13.5%）相結合的方式。日糧組成及營養水平見表1。

表1 日糧組成及營養水平

根據CVB(2003)將可發酵碳水化合物定義為可發酵非淀粉多糖和回腸中本身含有的不被吸收的小部分淀粉之和。可發酵碳水化合物通過減少小麥和玉米的用量而增加小麥麩、甜菜漿和本地的馬鈴薯含量。增加動物脂肪和豆油以補償凈能值得含量。通過增加木薯、馬鈴薯蛋白、麥蛋白粉、玉米蛋白粉和合成氨基酸來增加粗蛋白的水平。每千克日糧中均包含9.9 MJ的凈能和1.0 g的回腸可消化賴氨酸。在整個實驗過程中仔豬自由采食和飲水。

1.3 方法和分析 記錄每欄仔豬（斷奶）0、7、14 d和28 d的采食量和體重，并計算每欄豬的日增重、采食量和重料比。此外，每重復選2頭平均體重一樣的斷奶7 d的仔豬安樂死處理并解剖進行腸內性狀的檢測。在空腸中段獲得一段長約20 cm的腸內節段。在小腸黏膜內檢測麥芽糖酶、蔗糖酶和N-氨基肽酶的特殊活性 （Marion等，2005），測定絨毛長度和隱窩深度 （Goodlad等，1991）以及回腸和結腸的食糜樣本中的NH3的含量，采用培養計數法計算大腸桿菌和乳酸桿菌的數目，并測定乳酸和揮發性脂肪酸（VFA）的量（氣相色譜法）。

1.4 統計分析 試驗數據等使用GenStat統計軟件進行方差分析（GenStat，2000）。

2 結果與分析

2.1 生產性能 由表2可知，在4周的試驗期內，增加低CP日糧中的FC含量會降低采食量、日增重和重料比，而增加高CP日糧中的FC含量不影響仔豬的生長性能。此外，給仔豬喂低FC的日糧的同時，降低CP的含量會提高仔豬的采食量和日增重，但是對于喂高FC日糧的仔豬如果降低CP的含量則不會提高仔豬的日增重，相反，還會降低重料比。

表2 對斷奶4周仔豬生長性能的影響

2.2 腸道特性 由表3可知，CP和FC含量間的相互作用不顯著。低CP水平會降低空腸內氨水的量，而對腸內其他的特性作用不明顯。增加日糧中FC的水平會增加乳酸桿菌的數量，降低空腸中大腸桿菌的數量，但不會降低結腸中的大腸桿菌。日糧中FC的含量高會降低空腸中氨水的濃度，并會降低結腸中氨水的濃度。此外，FC的含量高也會增加空腸中乳酸的濃度和結腸中總VFA的濃度。不同日糧的處理組間對消化酶的活性和腸的形態沒有明顯的影響。

3 討論

在日糧中降低CP的含量并增加FC的含量會減少蛋白質發酵的風險，并會改進腸道的健康狀況和提高生長性能。事實上，同時降低日糧中CP的量和增加日糧中FC的量會降低空腸中氨的濃度。此外，FC含量高對細菌和發酵產物的作用表明，隨著日糧成分的改變，微生物群落的構成也會發生相應的變化，這個結果與Konstantinov等（2004）一致，同時表明FC含量高有利于保護仔豬免受致病性大腸桿菌的侵害。日糧中CP含量低也可以降低蛋白的發酵，但是它不對大腸菌和乳酸菌及VFA的產生起任何作用。Nyachoti等（2006）也發現，降低日糧CP的含量（從23%降到17%）并不會對VFA的總濃度和空腸中細菌群數量產生影響。盡管增加FC的量會對腸道的特性有影響，但是增加FC的水平并不會改善斷奶后仔豬前4周的生長性能。可能是因為剛斷奶仔豬消化能力發育還不成熟，FC含量高的日糧中纖維成分的營養供給不夠理想。

表3 對斷奶7 d仔豬的空腸和結腸中細菌數目的影響

4 結論

增加日糧中可發酵碳水化合物的量可能會改變斷奶仔豬腸道微生物群落結構，降低消化道中氨的濃度，增加消化道中乳酸和VFA的量，但對斷奶仔豬的生長性能無顯著影響。

[1]Awati A.Prebiotics in piglet nutrition.Fermentation kinetics along the GI tract，PhD Diss[D].The Netherlands：Wageningen University，2005，

[2]Ball R O，Aherne F X.Influence of dietary nutrient density，level of feed intake and weaning age on young pigs.II.Apparent nutrient digestibility and incidence and severity of diarrhea[J].Can J Anim Sci，1987，67：1105 ～ 1115.

[3] CVB.Veevoedertabel Feedstuff Table，Nutritional Value of Feed Ingredients[M].Central Veevoederbureau，Lelystad，The Netherlands.2003.

[4]GenStat.GenStat for Windows，Release 4.2.5th ed. [M].Oxford：VSNInternational Ltd.2000.

[5]Goodlad R A，Levi S，Lee C Y，et al.Morphometry and cell proliferation in endoscopic biopsies：evaluation of a technique[J].Gastroenterology，1991，101：1235 ～ 1241.

[6]Konstantinov S R，Awati A，Smidt H，et al.Specific response of a novel and abundant Lactobacillus amylovorus-like phylotype to dietary prebiotics in the ileum and colon of weaning piglets[J].Appl Environ Microbiol，2004，70：3821～3830.

[7]Marion J，Petersen Y M，Romé V，et al.Early weaning stimulates intestinal brush border enzyme activities in piglets，mainly at posttranscriptional level[J].J Pediatr Gastroenterol Nutr，2005，41：401 ～ 410.

[8]Nyachoti C M，Omogbenigun F O，Rademacher M，et al.Performance responses and indicators of gastrointestinal health in early-weaned pigs fed low-protein amino acid-supplemented diets[J].J Anim Sci，2006，84：125 ～134.