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李寶聚博士診病手記(四十三)大白菜霜霉病的發生規律及防治技術

2012-01-27 10:52:34王麗霞杜公福范曉溪李建明李寶聚
中國蔬菜 2012年1期

王麗霞 杜公福 范曉溪 李建明 李寶聚

十字花科蔬菜霜霉病是由寄生霜霉〔Peronospora parasitica(Pers.)Fr.〕引起的一類世界性真菌病害,遇低溫高濕的條件易于發生流行。該病害在我國各地均有發生,在東北、華北、西北地區主要為害大白菜,流行年份損失可達50%~60%,是大白菜生產上的重要病害之一。因此,掌握大白菜霜霉病的發生規律、防治技術,對控制該病的大規模發生具有重要的意義。

1 發病癥狀

1.1 苗期發病癥狀 發病初期葉片背面出現白色霜狀的霉層,葉片正面沒有明顯的癥狀,嚴重時苗葉及小莖變黃枯死。

1.2 成株期發病癥狀 發病初期,葉片正面出現褪綠色小黃點(彩色圖版1),葉背面呈水漬狀。發病中期,葉片病斑多角形至不規則形,黃褐色,周圍具有黃色暈圈(彩色圖版2),背面病斑淺褐色,有稀疏白色霉層(彩色圖版3)。發病后期,形成受葉脈限制的多角形病斑,黃色至黃褐色(彩色圖版4、5),直徑5~12 mm。濕度大時,在葉片背面密生白色霉層(彩色圖版6),即病菌的孢囊梗和孢子囊。病害嚴重發生時,多個病斑連接在一起,導致葉片變黃干枯(彩色圖版 7、8)。

1.3 包心期發病癥狀 土壤或病殘體中的病原菌隨水滴飛濺到貼近地面的葉背,形成局部侵染(彩色圖版9)。大白菜包心期多是從植株外層老葉開始發病,形成受葉脈限制的多角形或不規則形黃褐色病斑,葉背面病斑處產生白色霉狀物(彩色圖版10)。若環境條件適合,病斑迅速擴展,使葉片連片枯死(彩色圖版11、12),從外層老葉開始依次向內層層干枯,最后導致菜心裸露(彩色圖版13),造成大白菜大面積減產(彩色圖版14)。

2 病原菌

病原為寄生霜霉〔Peronospora parasitica(Pers.)Fr.〕,屬鞭毛菌亞門霜霉屬。無性生殖產生孢子囊。孢囊梗單生或叢生,無色,全長192.0~233.0μm,平均286μm,基部膨大,主軸(128.0~192.0)μm ×(6.4~16.0)μm,占全長的1/3~3/5,上部銳角二叉分枝(彩色圖版15),分枝1~7次,多為3~6次,末枝(6.4~25.6)μm ×(1.3~3.2)μm,彎曲,枝端尖細。孢子囊橢圓形或近球形(彩色圖版16),(13~29)μm×(13~26)μm,萌發時產生芽管。有性生殖產生卵孢子,卵孢子黃褐色,球形,表面光滑或略有皺紋,直徑34~42μm。

該菌最初是由Persoon(1736)在薺菜〔Capsella bursa-pastoris(L.)Medic.〕上發現并命名為 Botrytis parasitica Persoon,后來 Fries(1849)將此菌改名為寄生霜霉 Peronospora parasitica(Pers.) Fr.,被公認而沿用至今。該菌分布范圍比較廣,在中國、日本、巴西、加拿大、瑞典等都有該菌引發病害的報道,主要為害油菜、甘藍、花椰菜、大白菜、薺菜、蘿卜等十字花科植物,是霜霉屬最重要種之一。

寄生霜霉是一種專性寄生菌,只能在活體上存活。具有生理分化現象,其專性寄生性在屬、種間均存有差異。寄生霜霉菌可分為寄生霜霉蕓薹屬變種(Peronospora parasitica f.sp.brassicae)、寄生霜霉蘿卜屬變種(Peronospora parasitica f.sp.raphani)、寄生霜霉薺菜屬變種(Peronospora parasitica f.sp.capsellae)三個變種。其中,寄生霜霉蕓薹屬變種(Peronospora parasitica f.sp.brassicae)又可細分為甘藍型和白菜型兩個生理小種。研究表明,侵染蕓薹屬、蘿卜屬、薺菜屬植物的霜霉菌,通常只為害本屬植物,不為害其他屬植物。

3 發病規律

3.1 初侵染源 一般認為菜田土壤中病枯葉內的卵孢子和種子內潛伏菌絲是初次侵染的主要來源。

3.1.1 種子帶菌 卵孢子附著在種子表面越冬或越夏,成為下茬或翌年初侵染來源,侵染幼苗。春菜發病的中后期,病組織上形成大量卵孢子,這些卵孢子只需經1~2個月的休眠,環境條件適宜時即可萌發,侵染當年的秋大白菜。

3.1.2 病殘體帶菌 卵孢子隨病殘體在土壤中越冬,在土壤中可存活3年,條件適宜時僅2個月就可萌發,卵孢子萌發時產生芽管,從幼苗莖部侵入,進造成局部的侵染,菌絲體向上延伸到達子葉及第一對真葉,在其葉背面產生白色霜狀霉層。

3.1.3 越冬大白菜種株根頭帶菌 大白菜種株經貯存以后,種株根頭部可以帶菌,病菌可隨氣流傳播,遇到適宜的條件便可侵染蔓延。

3.2 傳播途徑

3.2.1 氣體傳播 菌絲體在種株及田間殘余病株上越冬,翌年菌絲萌發產生孢囊梗,孢囊梗從氣孔伸出產生孢子囊,孢子囊隨氣流傳播。在新寄主上,從表皮、氣孔或傷口處進行侵染。

3.2.2 雨水和灌溉水傳播 雨季來臨或進行灌溉時,土壤或病殘體中的病原菌隨水滴飛濺或徑流傳播到附近健康植株,或在田塊內傳播。

3.2.3 種子傳播 研究發現一般感病品種種子帶菌率都比較高,種子內潛伏菌絲可以造成幼苗局部的侵染(姚健民和傅淑云,1985;Smith&Price,1997)。已有寄生霜霉在十字花科蔬菜蘿卜、蕓薹上通過種子傳播的報道(Vishunavat&Kolte,1993)。

3.3 影響發病的因子

3.3.1 溫度 大白菜蓮座期至包心期的溫度是影響霜霉病流行的重要因素,它決定病害出現的早晚和發展的速度。孢子萌發適溫為7~13℃,侵入適溫為16℃,而菌絲的發育需要較高的溫度,適溫為20~24℃。因此,15~25℃有利于病害的發生,在24~25℃條件下病斑發展最快,高于25℃或低于14℃不利于病害的發生。

3.3.2 濕度 濕度決定病害發展的嚴重程度,在日照不足、田間高濕條件下,病害發生嚴重。尤其在大白菜蓮座期至包心期,若多雨、多霧,日夜溫差大,病害極易流行。相對濕度在95%以上時病害嚴重發生。

4 大白菜霜霉病的防治技術

針對大白菜霜霉病的初侵染來源及傳播途徑,可以從以下幾個方面制定相應的綜合防治策略,防止大白菜霜霉病的傳播和蔓延。

4.1 抗性品種的選育 國內外學者對霜霉病的遺傳規律進行了大量的研究,為抗霜霉病遺傳育種提供了理論基礎。研究表明,甘藍子葉期霜霉病抗性由單個顯性基因控制(Natti et al.,1967);花椰菜上霜霉病的抗性由 2~3 個基因控制(Moss et al.,1988);青花菜在成熟期霜霉病的抗性是由單個顯性基因控制的(Coelho&Monteiro,2003);大白菜對霜霉病的抗性是由顯性單基因控制的(Yu et al.,2009)。目前我國常見的大白菜霜霉病的抗性品種有中白76、北京新5號、天正秋白2號、天正秋白5號等。

4.2 農業防治

4.2.1 選無病種子 選擇無病田或無病植株留種。

4.2.2 田園清潔 清除、焚燒或深埋感病植株和雜草,以減少初侵染源。在蓮座中期,要及時清除田間病株老葉,減少再侵染源。

4.2.3 田間管理 播前精細整地,深翻土壤,與非十字花科作物實行2年以上輪作。播種前必須施腐熟的農家肥,施足底肥,增施磷鉀肥,化肥分期使用。采用高窄畦深溝栽培,及時排水,以減小田間濕度。

4.2.4 覆蓋地膜 采用地膜覆蓋栽培,一方面可防止地下病殘體帶菌傳播,另一方面可降低近地面空氣濕度,從而使大白菜霜霉病的發病率明顯降低。

4.3 生物防治 發病初期,選用活孢子1.5億·g-1木霉菌(快殺菌)可濕性粉劑400~800倍液噴霧防治,每隔7~10 d(天)噴1次,連噴3~5次,可有效防治大白菜霜霉病。此外還有報道稱,綠色木霉誘變菌株對大白菜霜霉病防治效果良好(馬華升等,2010)。

4.4 化學防治

4.4.1 藥劑拌種 播種前,可以用65%代森鋅可濕性粉劑或75%百菌清可濕性粉劑拌種,藥量為種子質量的0.3%~0.4%,以減少種子表面的病菌。

4.4.2 藥劑防治 發病初期及時用藥可以有效控制病害的發生和發展。選用50%烯酰嗎啉可濕性粉劑1 000倍液,或25%烯肟菌酯乳油2 000倍液,或25%嘧菌酯懸浮劑1 000倍液,或69%烯酰嗎啉·代森錳鋅可濕性粉劑1 000倍液,整株噴施,5~7天噴霧防治1次,連續施用3~4次。此外,常用的藥劑還有50%霜脲氰可濕性粉劑1 500倍液,或72.2%霜霉威水劑800倍液,5~7天噴霧防治1次,連續施用2~3次。噴藥必須細致周到,特別是葉片背面更應噴到。注意不同類型藥劑間應交替輪換使用,避免單一用藥使病菌產生抗藥性。

馬華升,張富仙,阮松林,王淑珍,汪芳.2010.綠色木霉誘變菌株HZ0501對大白菜霜霉病的防治效果. 浙江農業科學,(3):587-589.

姚健民,傅淑云.1985.白菜霜霉病侵染規律的研究.沈陽農學院學報,16(1):17-24.

Coelho P S,Monteiro A A.2003.Inheritance of downy mildew resistance in mature broccoliplants.Euphytica,131:65-69.

Moss N A,Crute I R,Lucas JA,Gordon P L.1988.Requirements for analysisof host-species specificity in Peronospora parasitica(downy mildew).Cruciferae Newsl,13:114-116.

Natti J J,Dickson M H,Atkin J D.1967.Resistance of Brassica oleracea varieties to downy mildew.Phytopathology,57:144-147.

Smith PA,Price T V.1997.Preliminary study of seed transmission of downy mildew in some vegetable brassica cultivars in Australia.Australasian Plant Pathology,26:54-59.

Vishunavat K,Kolte S J.1993.Brassica seed infection with Peronospora parasitica (pers.ex Fr.)Fr.and its transmission through seed.Indian J.Mycol.Plant Pathol,23:247-249.

Yu SC,Zhang F L,Yu R B,Zou Y M,Qi JN,Zhao X Y,Yu Y J,Zhang D S,Li L.2009.Genetic mapping and localization of a major QTL for seedling resistance to downy mildew in Chinese cabbage(Brassica rapa ssp.pekinensis).Molecular Breeding,23:573-590.

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