南美白對蝦兩種養殖模式水體微生物群落特征研究

DOI：0.3969/j.issn.004-6755.2025.07.06

Characterization of microbial communities in water from two Litopenaeus vannamei aquaculture systems

TIAN Tao ^1，2 ，DOU Shilong1，2 ，JIANG Shuai1，2 ，LI Hongye12 ，XU Houguo3 ，GUO Ran ^1，2 （204 （1.OceanCollege，Hebei Agricultural University，Qinhuangdao O66ooo，China； 2.KeyLaboratoryofNutritionalRegulationandDiseaseControlinAquacultureof Hebei Province，QinhuangdaoO66oo，China; 3.Yellw Sea Fisheries Research Institute，Chinese Academy of Fishery Sciences，Qingdao 266ooo，China）

Abstract：The experiment was designed with two aquaculture systems for Litopenaeus uannamei ： the flow-through aquaculture system as the control group （Group C），and the zero一water exchange aquaculture system as the experimental groups （Groups F and S），each group consisted of 5 concrete tanks with a stocking density of 3OO individuals per square meter and a 6O一day culture period. High -throughput sequencing analysis revealed significant differences in microbial communities between the two systems.Proteobacteria and Bacteroidota were the dominant phyla in both systems，but Bacteroidota exhibited a higher relative abundance system. Functional prediction demonstrated that microbial communities in the zero一water exchange system were more active in pathways such as amino acid metabolism，carbohydrate metabolism，and energy metabolism，providing enhanced nutritional support for the shrimp.

Key words：zero-water exchange aquaculture； flow-water aquaculture;Litopenaeus uannamei ； mi-crobial communities in water

南美白對蝦（Litopenaeusvannamei）主要有土池養殖、高位池養殖、工廠化養殖3種養殖模式[1。其中，工廠化循環水養殖綜合運用物理、化學、生物等技術手段，把水體中的懸浮物、氨氮、亞硝酸鹽、糞便、殘餌等進行去除，實現動物的疾病管控和水體的循環利用，避免污染[2]，是近年來被廣為研究的養殖模式。譚建等[3]發現循環水養殖能提高南美白對蝦養殖密度；鮑鷹等4發現在標粗階段運用生物絮團技術能顯著提高蝦的總體成活率。

微生物是生態系統中有機物最重要的分解者和初始利用者，在整個生態系統物質循環和能量流動過程中發揮重要作用[5]。傳統工廠化流水養殖模式（暗棚）中一般需要定期補充特定菌群以維持高密度養殖環境的穩定，補充的菌種以芽孢桿菌、硝化細菌、EM菌為主，具體補充量與換水量呈負相關。因此，微生態制劑的使用成本約占養殖成本的 5%～20% ，主要取決于技術路徑和管理精細化程度。

因此，探究更節能、節水、節藥的養殖模式，對南美白對蝦養殖的可持續發展具有重要意義。建立穩定的養殖水自穩態系統并明確該系統的穩定因素，是對蝦零排水養殖技術能夠真正確立并獲得廣泛認可的關鍵。研究人員嘗試構建一種少換水甚至零換水的南美白對蝦養殖體系，并探究其穩定環境中的菌群結構，明確優勢菌群種類，并進一步發掘優勢菌群特性，為構建節約型對蝦養殖模式提供數據支撐。

1材料與方法

1.1 試驗設計

試驗以北方普遍存在的傳統工廠化暗棚流水式養殖模式作為對照（C組），全程不排水只補水養殖模式（零排水模式）為試驗組（F、S組）。每個處理5個水泥池 （6m×6m×1m） ，共用10個水泥池，每池養殖密度300尾/ 。試驗初始對蝦為P20蝦苗。試驗用飼料為工廠化養殖用商業飼料，飼料蛋白 42% 。對照組每天采用 24h 緩慢補水，日換水率 20%～30% ，投喂次數5次/d，總投喂量為對蝦體質量的 10%～15% 。試驗組提前1個月建立養殖用水自穩態體系。再與對照組一起分別放入300尾/ in² 對蝦開始養殖，投喂過程與對照組保持一致。每天檢測 pH 值 （7.8～8.5） 、溶解氧 （?5mg/L） 、氨氮（ lt;0.5mg/L ）、亞硝酸鹽 （lt;0.2mg/L） 等。若任何一個水池水質指標超出常規，停飼一天以穩定水體。

1.2 試驗地點

唐山禾豐科技有限公司樂亭縣養殖場。

1.3水體微生物樣品采集與處理

采樣點設置為池塘四角。在每個采樣點分別采集1L表層水樣，在 內用微孔濾膜（上海新亞孔徑， 0.45μm） 對水樣進行過濾，過濾后的濾膜放入 10mL 無菌離心管中妥善保存。全部樣品均放置在 -80^°C 的冰箱內保存，待后續檢測分析。選取養殖池塘第30天（F）的樣品代表養殖中期、第60天（S）的樣品代表養殖末期的水體微生物樣品，委托派森諾公司進行高通量測序。

2 結果與分析

2.1 水體測序結果

對養殖周期內的水環境微生物群落變化展開分析，最終獲取 1025690-1986302 條原始序列，過濾低質量、短長度后的序列 915866-1034172 條，獲得有效序列 46573-932477 條。根據養殖水體微生物樣本的OTUs（Operational TaxonomicUnits，操作分類單元）繪制成韋恩圖（見圖1），用于分析9個樣品共有和特有OTUs以及之間的關系。由圖1可見，9個水體樣品匯聚了9469個OTUs，它們共有的206個OTU，S組特有的OTUs有4081個，顯著高于C（1912個）和F（2867個）。

2.2 群落結構分析

由圖2可知，門水平下的物種豐度三個樣品組的優勢菌門均為變形菌門（Proteobacteria）、擬桿菌門（Bacteroidota），其次是放線菌門（Acti-nobacteriota）。其中F組的擬桿菌門占比（ 53.42% ）高于其他兩組，變形菌門占比（28.44% ）顯著低于其他兩組，放線菌門占比（10.00% 高于其他兩組。由圖3可知，在屬水平下，C組的優勢物種為海洋NS3a群（NS3ama-rinegroup），占比為 10.56% ；硫微球菌屬（Thio-microhabdus），占比為 8.81% ；浮游菌屬（Plank-tomarina），占比為 8.27% 。F組的優勢物種為海洋NS3a群，占比為 15.10% ；浮游菌屬（Plank-tomarina），占比 13.73% 。S組的優勢物種為海生菌屬（Marivita），占比為 15.77% 。

2.4水體微生物差異

運用LEfSe（LDAEffectSize）分析對水體微生物群落差異進行分析，篩選出對水體微生物群落具有顯著指示作用的物種，見圖4。S組中顯著富集的分類群最多，且LDA得分普遍較高，與其他組有較大差異，例如：嗜麥芽假單胞菌屬（Mo-tilimonas）、納諾西斯菌屬（Nannocystis）、納諾西斯菌目（Nannocystales）、微桿菌屬（Microbacte-rium）。C組和F組中顯著富集的分類群相對較少，且LDA得分相對較低。

2.5水體微生物功能分析

如圖5所示，根據功能分類的條形圖可以看出，細胞過程運輸和分解代謝的數值為155.70，運輸和分解代謝功能在樣本中有一定存在，環境信息處理中膜運輸的數值為697.25，在樣本中有一定存在；氨基酸代謝的數值為5838.43，在樣本中非常顯著；其他次生代謝物的生物合成的數值為895.61；碳水化合物代謝的數值為5442.31，能量代謝的數值為2260.45，在樣本中非常顯著；輔因子和維生素的代謝數值為4982.05，在樣本中較為顯著。氨基酸代謝、碳水化合物代謝、能量代謝等相關功能在樣本中占據主導地位，樣本中的微生物群落在這些代謝過程中非常活躍。

3討論

通過對兩種南美白對蝦養殖模式水體微生物群落的研究，分析了其豐富的物種多樣性和復雜的群落結構。在門水平上，變形菌門和擬桿菌門是對照組和試驗組的共同優勢菌門，這與以往研究中關于水產養殖環境中微生物群落的組成一致[。變形菌門通常具有豐富的代謝功能，能夠參與多種有機物的降解和轉化，對維持水體環境的穩定具有重要作用[。擬桿菌門則在有機物分解和營養物質循環方面發揮關鍵作用。中期養殖水體中擬桿菌門的占比顯著高于其他兩組，而變形菌門的占比則顯著低于其他兩組，這與中期養殖水體中特定的養殖條件或環境因素有關，如有機物含量、溫度、pH值等，這些因素可能影響了微生物群落的組成和結構[8。在屬水平上，不同組的優勢物種也存在差異。對照組養殖水體的優勢物種為海洋NS3a群、硫微球菌屬和浮游菌屬，這些微生物可能與C組養殖水體特定的環境條件相適應，參與特定的代謝過程。試驗組中期養殖水體的優勢物種為海洋NS3a群和浮游菌屬，而末期養殖水體的優勢物種為海生菌屬。海生菌屬通常具有適應高鹽環境的能力9，這可能與S組水體的鹽度等環境參數有關。

試驗組末期養殖水體中顯著富集的分類群最多，且LDA得分普遍較高，這表明末期養殖水體的微生物群落具有較高的特異性和多樣性。例如，末期養殖水體中嗜麥芽假單胞菌屬、納諾西斯菌屬、納諾西斯菌目和微桿菌屬等分類群的顯著富集，可能與末期養殖水體中特定的環境壓力或養殖實踐有關。這些指示物種在末期養殖水體中發揮著獨特的作用，如參與特定有機物的降解、抗逆性增強等。這也說明長期不換水條件下，水體各項指標壓力增加。相比之下，對照組養殖水體和中期養殖水體中顯著富集的分類群相對較少，且LDA得分較低，這意味著這些組的微生物群落結構相對較為穩定或受到的環境干擾較小[10]也與對照組養殖水體每天穩定換水有一定關聯。

功能分析結果表明，水體微生物群落在多種代謝過程中非常活躍，尤其是氨基酸代謝、碳水化合物代謝和能量代謝等功能在樣本中占據主導地位。這些功能的活躍程度與微生物群落的組成和環境條件密切相關[11]。氨基酸代謝的高活性可能與微生物對水體中有機氮源的利用和轉化有關[12]，這對于南美白對蝦的營養獲取和生長具有重要意義。碳水化合物代謝的活躍則可能反映了微生物對水體中碳源的分解和利用能力，有助于維持水體的碳平衡[13]。能量代謝的顯著性表明微生物在水體中通過各種途徑獲取能量，以支持其生長和代謝活動[14]。此外，其他次生代謝物的生物合成、輔因子和維生素的代謝等功能的存在，也表明微生物群落在水體生態系統中發揮著多方面的調節作用[14]。在零排水養殖環境中，配合飼料殘渣、對蝦糞便、對蝦蛻的皮等均沉積在水底或懸浮于水體中，成為微生物群落的營養物質和天然溫床，較之傳統換水養殖方式，有較多的碳源、氮源和磷源供給微生物，也因此提升了微生物的種類和豐度。

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（收稿日期：2025-05-06）