王靜,唐琳,宋雙榮,蘇小麗,任麗潔,王萍
滄州醫學高等專科學校口腔系,河北 滄州 061001
脂肪干細胞(adipose derived stem cell,ADSCs)來源于脂肪組織中非脂肪細胞的基質血管成分,具有自我更新及多項分化潛能[1],可分化為內胚層、中胚層和外胚層三個譜系的細胞[2],其釋放的生長因子、miRNA及外泌體可調節細胞的微環境,具有抗炎和促進血管生成的作用[3]。ADSCs易于自體取材、來源廣泛、免疫源性低,目前已被廣泛用于骨組織工程、創面治療和骨質疏松癥骨缺損修復[4-6]。目前臨床上主要通過脂肪抽吸術或脂肪切除術來獲取脂肪組織,采用酶消化法將脂肪組織分離、培養,獲得ADSCs。在手術獲取人脂肪組織時,需要對患者進行局部腫脹麻醉或局部浸潤麻醉。酰胺類局麻藥物羅哌卡因,具有藥效時間長、鎮痛作用好、不良反應小且不影響運動功能等特點,是整形外科常用的局部麻醉藥。目前羅哌卡因對ADSCs生物學特性的影響尚無深入報道。由于大鼠與人類脂肪組織的細胞生物學特性相似,且涉及的倫理問題少,2022年1月—2023年6月,我們觀察了羅哌卡因對大鼠ADSCs增殖、凋亡及成骨分化的影響,現將結果報告如下。
1.1 羅哌卡因、大鼠、試劑 羅哌卡因購自美國Sigma公司。雄性SD大鼠購于河北省實驗動物中心,L-DMEM、胎牛血清FBS、Ⅰ型膠原酶、胰蛋白酶購自美國GIBCO公司,CCK-8購自博士德公司,Annexin V APC凋亡檢測試劑盒購自美國BioGems公司,堿性磷酸酶(ALP)試劑盒購自碧云天公司,骨鈣素(OCN)單克隆抗體購自美國Thermo公司,抗壞血酸、地塞米松、β-磷酸甘油鈉購自美國Sigma公司。
1.2 大鼠ADSCs的提取、培養與分組 安樂死處死SD大鼠3只,迅速分離出腹股溝及附睪周圍的脂肪組織,剪成漿糊狀后加入Ⅰ型膠原酶,37 ℃消化60 min,篩網過濾后1000 r/min離心10 min,DMEM重懸細胞,置于37 ℃、5% CO2培養箱中培養,每3天換液一次,當細胞融合達80%時胰蛋白酶消化并傳代。取對數生長期ADSCs,胰酶消化、離心后棄上清,取100 μL濃度為2×1010/L的細胞懸液移入96孔板,分別加入含0 mg/mL、200 mg/mL、500 mg/mL羅哌卡因的培養基100 μL,使羅哌卡因的終濃度分別為0 mg/mL、200 mg/mL和500 mg/mL,分別記為對照組、200 mg/mL組、500 mg/mL組。
1.3 各組細胞增殖能力觀察 采用CCK-8實驗。取各組細胞,繼續培養24、48、72 h時,向每孔加入CCK-8試劑10 μL,37 ℃孵育1.5 h,使用酶標儀檢測450 nm波長的OD值,以OD值表示細胞增殖能力。
1.4 各組細胞凋亡情況觀察 取各組細胞,繼續培養24 h,胰酶消化細胞,染色緩沖液清洗,調整細胞濃度為1×106/mL,吸取100 μL細胞懸液,分別加入5 μL Annexin V和7-AAD溶液,混勻后避光孵育15 min,加入400 μL Annexin V結合緩沖液,使用流式細胞儀分析細胞凋亡情況。
1.5 各組細胞成骨分化能力觀察 取各組細胞,加入等量的成骨誘導培養基(含0.1 μmol/L地塞米松、0.05 g/L抗壞血酸、10 mmol/L β-磷酸甘油鈉),每3天換培養基一次,觀察各組細胞成骨分化能力,包括成骨潛能、礦化能力和成骨相關蛋白OCN表達水平。
1.5.1 各組細胞成骨潛能觀察 連續誘導7 d,棄原培養基,TritonX-100裂解細胞40 min,提取上清液,按照ALP檢測試劑盒說明書進行操作,用酶標儀測定405 nm下的OD值,繪出標準曲線,根據樣品的OD值在標準曲線上查出樣品的濃度,即為ALP活性,以ALP活性表示細胞成骨潛能。
1.5.2 各組細胞礦化能力觀察 連續誘導14 d,4%多聚甲醛4 ℃固定細胞25 min,PBS緩沖液沖洗三遍,40 mmol/L茜素紅(pH 4.1)室溫染色20 min,倒置顯微鏡下觀察拍照,之后用10%氯化十六烷基吡啶溶解,酶標儀測定562 nm波長處OD值,以OD值表示細胞礦化能力。
1.5.3 各組細胞成骨相關蛋白OCN檢測 采用免疫熒光法。連續誘導14 d,多聚甲醛固定細胞25 min,PBS緩沖液沖洗,0.5% Triton X-100透膜處理15 min,PBS緩沖液清洗,5%BSA封閉1 h,PBS緩沖液清洗,加入一抗OCN(1:100)孵育,4 ℃過夜,PBS緩沖液清洗,加入相應二抗(1:50),避光孵育1 h,DAPI染色15 min,共聚焦顯微鏡觀察拍照,用Image J軟件進行免疫熒光定量分析,以熒光強度表示細胞OCN蛋白表達水平。
1.6 統計學方法 采用SPSS23.0統計軟件。計量資料呈正態分布時以±s表示,多組間比較用單因素方差分析,兩兩比較用LSD-t檢驗。P<0.05為差異有統計學意義。
2.1 各組細胞OD值比較 各組細胞OD值比較見表1。由表可知,與對照組相比,200 mg/mL組、500 mg/mL組細胞培養24、48、72 h時的OD值均顯著下降,且500 mg/mL組低于200 mg/mL組。
表1 各組細胞OD值比較(±s)

表1 各組細胞OD值比較(±s)
注:與對照組比較,*P<0.05;與200 mg/mL組比較,#P<0.05。
組別對照組200 mg/mL組500 mg/mL組OD值72 h 1.616 ± 0.0211.299 ± 0.001*1.026 ± 0.004*#24 h 1.093 ± 0.0600.734 ± 0.030*0.519 ± 0.010*#48 h 1.357 ± 0.0050.936 ± 0.025*0.773 ± 0.009*#
2.2 各組細胞凋亡率比較 對照組、200 mg/mL組、500 mg/mL組細胞凋亡率分別為2.78% ±0.23%、4.15% ± 0.62%、5.88% ± 0.78%,組間相比,P均<0.05。
2.3 各組細胞成骨分化能力比較
2.3.1 各組細胞成骨潛能比較 對照組、200 mg/mL組、500 mg/mL組細胞ALP活性分別為(0.385 ± 0.005)、(0.233 ± 0.005)、(0.195 ± 0.005)mmol/(g·min),組間相比,P均<0.05。
2.3.2 各組細胞礦化能力比較 對照組、200 mg/mL組、500 mg/mL組細胞OD值分別為0.457 ± 0.040、0.388 ± 0.003、0.226 ± 0.001,組間相比,P均<0.05。
2.3.3 各組細胞OCN蛋白表達水平比較 對照組、200 mg/mL組、500 mg/mL組細胞OCN蛋白表達水平分別為96.354 ± 0.367、84.926 ± 0.138、74.095 ± 0.046,組間相比,P均<0.05。
隨著組織工程與再生醫學、干細胞理論與技術的發展,ADSCs已被廣泛用于各種組織缺損與疾病治療。CAETANO、陳立峰等將ADSCs與新型支架組合,發現“支架—干細胞復合體”修復骨組織缺損效果更好,骨再生更為明顯[7-8]。此外,間充質干細胞在治療肝硬化、肝衰竭以及對肝移植后排斥反應中也已經獲得了臨床有效性的結果[9-10]。
羅哌卡因是一種長效酰胺類局部麻醉藥,可通過與特定受體結合,阻滯鈉離子通道,抑制鈉內流,可逆地抑制神經興奮的產生和傳導,發揮有效的麻醉鎮痛作用。但是當羅哌卡因給藥劑量過大時,會出現一定的不良反應,且局麻藥的不良反應呈濃度依賴性。與布比卡因相比,等量的羅哌卡因被認為不太可能引起肌肉毒性和全身毒性,包括神經毒性和心臟毒性[11]。由于個體差異,患者對麻藥的耐受程度不同,羅哌卡因的安全濃度為200~750 mg/mL,被廣泛應用于各種麻醉處理[12-13]。洪婷婷等[14]研究顯示,300 mg/mL羅哌卡因效果確切,能有效緩解疼痛,不良反應發生率低。鑒于此,本課題選用200 mg/mL、500 mg/mL兩個濃度,研究其對細胞生物學特性的影響。
羅哌卡因可抑制腫瘤細胞增殖,促進細胞凋亡[15-17]。羅哌卡因可影響細胞的生物學特性,包括抑制細胞增殖、遷移,誘導細胞凋亡、阻滯細胞周期等。在本研究中,CCK-8結果顯示羅哌卡因呈濃度依賴性降低ADSCs的增殖能力。cyclinD1蛋白在細胞周期的調控中起關鍵作用,羅哌卡因可通過下調cyclinD1的蛋白水平,阻止細胞從G1期向S期轉移,從而抑制細胞生長[18-19]。
細胞凋亡是細胞程序性死亡的過程,貫穿整個生命過程,可受細胞內外部多種因素調控。當細胞受到外界刺激時,在細胞的內質網腔中,錯誤折疊的蛋白會增多,引起內質網應激,通過激活下游細胞凋亡相關信號分子,導致細胞凋亡[20-21]。在本研究中,隨著羅哌卡因濃度的增高,細胞的凋亡率顯著增高。其具體作用機制可能與以下幾種因素有關[22-27]:①酰胺類麻醉藥物羅哌卡因屬于高度親脂性分子,可破壞細胞膜的通透性,且濃度越高,破壞程度越大,因此羅哌卡因對細胞凋亡的影響呈濃度依懶性。②羅哌卡因可通過影響鈉離子電流,改變跨膜電位,影響細胞的能量代謝。③羅哌卡因還可能通過抑制IkB-NF-κBICAM-1信號轉導通路,干擾細胞線粒體中的能量代謝,抑制細胞間的有效通訊,實現對抑制細胞增殖,促進細胞凋亡的作用的。OCN是成骨細胞轉向礦化期分化的重要標志性蛋白,在骨形成過程中可調節晶體生長,被用于評價細胞后期的成骨分化水平。本研究結果顯示,羅哌卡因呈濃度依賴性降低了ADSCs的成骨分化能力。關于其具體作用機制,還需進一步的深入研究。
綜上所述,羅哌卡因可降低ADSCs的增殖能力、成骨分化能力,促進其凋亡,且濃度越高,抑制能力越強。因此,在臨床進行脂肪抽吸術操作時,要在保證麻醉的前提下,盡量的降低羅哌卡因的濃度,以減少對ADSCs的毒性作用,維持細胞正常的生物學特性。