1-甲基環丙烯結合氣調處理對‘帕拉英達’和‘吉祿’芒果保鮮效果的影響

杞廷美，李艷嬌，趙興東，彭 磊，林 奇，包媛媛,*

（1.云南農業大學食品科學技術學院，云南 昆明 650201；2.云南省元江縣農業技術推廣服務中心，云南 玉溪 653399；3.云南農業大學園林園藝學院，云南 昆明 650201）

芒果（Mangifera indicaL.）為漆樹科芒果屬植物，是一種風味獨特且營養價值極高的熱帶水果，深受人們的歡迎，有“熱帶水果之王”的美譽[1]。目前云南是全國鮮食芒果供應期最長的省份，產品暢銷省內外。云南省玉溪市元江縣為低緯高海拔地區，適宜芒果種植，全縣共引進和選育的芒果品種有138個，主栽品種有‘金鳳凰’‘臺農一號’‘帕拉英達’‘吉祿’等，均具有高產穩產的特點。元江晚熟芒果‘帕拉英達’和‘吉祿’7 月初開始上市，果實味甜、肉質細膩、口感好[2]。芒果屬于典型的呼吸躍變型果實，內源乙烯的大量釋放促使呼吸躍變的發生，之后果實迅速成熟衰老，貨架期短，嚴重制約其產業的發展[3]。因此，延長芒果的保鮮期，抑制內源乙烯的產生是關鍵。

1-甲基環丙烯（1-Methylcyclopropene,1-MCP）是一種安全、高效的乙烯受體抑制劑，可抑制果實內源乙烯的生成和呼吸強度的增加，進而抑制果實的各種生理生化反應，延緩果實采后的成熟衰老，從而延長貨架期[5]。大量研究表明，1-MCP能有效延緩蘋果、油梨、李、獼猴桃和番茄等呼吸躍變型果蔬的成熟衰老[6-10]；對枇杷、紫背天葵、蕨菜和金針菇等非呼吸躍變型果蔬也有顯著的保鮮效果[11-14]。有研究表明，呼吸躍變是對果實細胞代謝能力需求增加的反應，在農作物和果蔬中發現，糖酵解、三羧酸循環、電子傳遞鏈調節著淀粉、可溶性糖、有機酸和氨基酸代謝等重要的初級代謝，以及細胞色素氧化酶（COX）、交替氧化酶（AOX）、多酚氧化酶（PPO）、抗壞血酸氧化酶（ASO）和黃素氧化酶等多種分支途徑，它們在不同發育時期不同細胞區室對代謝物積累的時間和水平起著重要調節作用[15-17]。環境的變化會影響下游呼吸途徑的代謝反應，下游呼吸途徑產物濃度的變化更會影響上游的呼吸途徑，而限速酶的產物濃度則直接影響酶的活性[18]。

微孔膜在果蔬貯藏中可保持保鮮袋內外的氣體流通，從而抑制果蔬呼吸作用，延長果蔬保鮮期[19]。PBI 保鮮袋的專一性強，安全性高，可在降低袋內氧氣體積分數的同時提高二氧化碳體積分數，抑制乙烯的生成和延緩呼吸高峰的到來，延緩果蔬衰老[20]。本研究采用0.5 μL/L 1-MCP、微孔膜、PBI 氣調保鮮袋、1-MCP+微孔膜及1-MCP+PBI 處理芒果，探究芒果采后貯藏期的生理品質和呼吸代謝相關酶活性變化，以期為低緯度、高海拔地區晚熟芒果采后保鮮提供技術參考和科學依據。

1 材料與方法

1.1 材料與設備

1.1.1 材料與試劑

芒果：品種為‘帕拉英達’和‘吉祿’，2020 年8 月采自云南玉溪市元江縣農業技術推廣服務中心芒果種植基地。

PBI 保鮮袋（35 cm×24 cm，厚度0.15 mm），以色列PBI公司；微孔膜（85 cm×70 cm，厚度0.05～0.06 mm，孔徑15～20 μm），國家農產品保鮮工程技術研究中心（天津）；1-MCP（5 mg/袋，有效成分含量3.33%），佛山市嘉芝諾生物科技有限公司；氫氧化鈉、乙酸鈉、間苯二酚、三氯乙酸，天津市大茂化學試劑廠；腺苷二磷酸、牛血清蛋白、二磷酸腺苷二鈉鹽、細胞色素C、細胞色素氧化酶、二硫蘇糖醇、焦磷酸硫胺素、蔗糖、葡萄糖、蘋果酸、二甲基對苯二胺、曲拉通X-100、谷胱甘肽、還原型輔酶1、二異丙基氨基鋰、三羥甲基氨基甲烷，上海凜恩科技發展有限公司；D-葡萄糖-6-磷酸二鈉鹽、氯化鎂、碳酸氫鉀、乙二胺四乙酸二鈉鹽，天津市風船化學試劑科技有限公司；β-巰基乙醇、琥珀酸鈉，山東西亞化學工業有限公司；丙酮、2,6-二氯酚靛酚鈉、鹽酸，重慶川東化工有限公司。其他試劑均為國產分析純。

1.1.2 儀器與設備

WGDW-100L恒溫恒濕試驗箱，溫州韋度電子有限公司；CR-400 色差計，柯尼卡美能達投資有限公司；TB90T 糖度計，廣州市速為電子科技有限公司；GY-3指針式水果硬度計，衢州艾普計量儀器有限公司；HH-8數顯恒溫水浴鍋，常州國華電器有限公司；UV-1800 紫外分光光度計，日本島津制作所；AR224CN 分析天平，奧豪斯儀器（上海）有限公司；8685A PH 計，衡欣科技股份有限公司；HC-3018R 高速冷凍離心機，科大創新股份有限公司。

1.2 方法

1.2.1 處理方法

通過前期芒果貯藏預試驗確定0.5 μL/L 1-MCP處理效果最佳，1-MCP 處理時間為24 h。將挑選好的新鮮芒果隨機分成6組，每組50個芒果。

CK：未經1-MCP 處理也未使用氣調袋，將芒果裝入塑料筐，置于（13±1）℃的環境下貯藏。

1-MCP 處理組：使用40 ℃溫水在燒杯中配制0.5 μL/L 1-MCP 溶液，與預冷后的芒果置于塑料帳內，迅速封閉塑料帳，將芒果置于（13±1）℃的環境下貯藏24 h后取出，裝入塑料筐繼續置于（13±1）℃的環境下貯藏。

微孔膜處理組：將預冷后的芒果用微孔膜包裝（每袋5個果實）后置于（13±1）℃的環境下貯藏。

PBI氣調包裝處理組：將預冷后的芒果用PBI氣調袋包裝（每袋5個果實）后置于（13±1）℃的環境下貯藏。

1-MCP+微孔膜處理組：預冷后的芒果經0.5 μL/L 1-MCP 處理后用微孔膜包裝（每袋5 個果實）后置于（13±1）℃的環境下貯藏。

1-MCP+PBI 氣調包裝處理組：預冷后的芒果經0.5 μL/L 1-MCP 處理后用PBI 氣調袋包裝（每袋5 個果實）后置于（13±1）℃的環境下貯藏。

將處理好的芒果于（13±1）℃貯藏30 d，每5 d取樣測定各指標，每個指標重復測定3次，結果取平均值。

通過對‘帕拉英達’和‘吉祿’芒果果實保鮮方式進行篩選，得出1-MCP+PBI 氣調包裝對兩種芒果均具有良好的保鮮效果，在此基礎上測定1-MCP+PBI氣調包裝對‘帕拉英達’和‘吉祿’芒果呼吸代謝酶的影響。‘帕拉英達’芒果果實的對照組和1-MCP+PBI處理組分別用P-ck、P 表示；‘吉祿’芒果果實的對照組和1-MCP+PBI 處理組分別用J-ck、J表示。

1.2.2 測定項目與方法

1.2.2.1 黃化指數和病情指數

黃化指數的測定方法參考文獻[21]，病情指數的測定方法參考文獻[22]，并略作修改。芒果的轉黃級別和病情級別詳見表1。

黃化指數和病情指數的計算公式分別為：

1.2.2.2 腐爛指數

根據果實表面腐爛程度分為0～4 級[23]。0 級：無腐爛；1級：1～3個腐爛點；2級：1/4≤腐爛面積＜1/2；3級：1/2≤腐爛面積＜3/4；4級：腐爛面積≥3/4。

1.2.2.3 商品率

注：式中的0級和1級果實表示果實表面腐爛程度分級中的0級和1級。

1.2.2.4 失重率

采用稱重法[24]測定。

式中：m0為果實初始質量；m1為測定時的果實質量。

1.2.2.5 硬度

使用硬度計測定。

1.2.2.6 可溶性固形物含量

使用手持糖度計測定。

1.2.2.7 VC含量

采用2,6-二氯酚靛酚滴定法[25]測定。

1.2.2.8 可滴定酸含量

參照袁芳等[26]的酸堿滴定法測定。

1.2.2.9 呼吸強度

采用堿靜置法[27]測定。

1.2.2.10 色差

參考文獻[28]，使用色差計測定。

1.2.2.11 呼吸代謝相關酶活性

（1）酶提取液的配制

提取液A：50 mmol/L Tris-HCl 緩沖液（pH 7.4）、0.5 mol/L蔗糖、2 mg/mL牛血清蛋白、5 mmol/L乙二胺四乙酸二鈉鹽、0.3%β-巰基乙醇，等比例混合，置于4 ℃備用。

提取液B：50 mmol/L 磷酸鹽緩沖液（PBS）（pH 為7.4）與2.0%曲拉通X-100等比例混合，置于4 ℃備用。

（2）酶液的制備

參考Matsumoto等[29]的方法，并略作修改。

磷酸己糖異構酶（GPI）、丙酮酸激酶（PK）、葡萄糖-6-磷酸脫氫酶（G-6-PDH）、蘋果酸脫氫酶（NADMDH）、NADP型蘋果酸酶（ME）：稱取芒果15.0 g研磨后，加150 mL 濃度為50 mmol/L 的磷酸鹽緩沖液（PBS），冰浴勻漿后，于7 000 r/min、4 ℃離心35 min，過濾上清液。再離心35 min，取上清液于4 ℃保存待測。

琥珀酸脫氫酶（Sdh）、丙酮酸脫氫酶（PDC）、細胞色素氧化酶（COX）：稱取30 g 果肉冰浴研磨至勻漿，加150 mL 預冷的提取液A，于5 000 r/min、4 ℃離心30 min，取上清7 000 r/min、4 ℃離心30 min，棄上清液、取沉淀，加預冷的丙酮15 mL，7 000 r/min、4 ℃離心30 min，棄上清液。所得沉淀為線粒體，每管加50 mL提取液B后，振蕩，冰浴待測或-80 ℃保存。

（3）呼吸代謝酶活性的測定

呼吸代謝相關酶活性的測定參考史娟等[30]的方法，并略作修改。

磷酸己糖異構酶：準確量取酶液0.5 mL，然后加入15 mmol/L 6-磷酸葡萄糖溶液5 mL，30 ℃水浴中反應10 min后，加2.5 mL 10%三氯乙酸終止反應，加入10 mL 30% HCl 和5.0 mL 0.1%間苯二酚，80 ℃水浴8 min，冷卻后在520 nm處測定吸光度值。

琥珀酸脫氫酶：于試管中準確加入5 mL 濃度為50 mmol/L的PBS（pH 7.4），0.2 mL濃度為1.2 mol/L的琥珀酸鈉（pH 7.4）以及0.2 mL 濃度為0.9 mmol/L的2,6-二氯酚靛酚鈉，混勻后于30 ℃水浴10 min，加酶液1 mL，在600 nm處測定吸光度值。

葡萄糖-6-磷酸脫氫酶：將8 mL濃度為0.025 mol/L的MgCl2溶液，2 mL 濃度為50 mmol/L 的6-磷酸葡萄糖與2 mL酶液混勻，在340 nm處測定吸光度值。

丙酮酸激酶：取50 mmol/L PBS（pH 7.4）500 μL加入10 μL的二異丙基氨基鋰和50 μL酶液，在340 nm處測定吸光度值。

丙酮酸脫氫酶：將2 mL濃度為50 mmol/L 的PBS（pH 7.4）溶液、2 mL濃度為1.0 mmol/L的MgCl2、2 mL 0.2 mmol/L 硫胺素焦磷酸、2 mL 濃度為0.1 mmol/L的2,6-二氯酚靛酚鈉、2 mL 濃度為2.0 mmol/L 的丙酮酸鈉溶液和2 mL 酶液混勻，于340 nm 處測定吸光度值。

細胞色素氧化酶：取酶液1 mL，加入純水10 mL，0.04%細胞色素C溶液2 mL，37 ℃預熱2 min，加入1 mL 0.4%二甲基對苯二胺溶液，37 ℃水浴1～3 min至反應液呈紅色為止。在510 nm處測定吸光度值。

蘋果酸脫氫酶：量取酶液1.5 mL、800 mmol/L Tris-HCl 1.5 mL、40 mmol/LMgCl20.75 mL、200 mmol/L KHCO30.75 mL 及10 mmol/L 谷胱甘肽0.75 mL，3.0 mmol/L 還原型輔酶10.75 mL、高純水1.5 mL 混勻后，迅速在340 nm波長下測定吸光度值。

NADP 型蘋果酸酶：將4.5 mL 酶液、7.5 mL 濃度為4.0 mmol/L的蘋果酸、1.5 mL濃度為800 mmol/L的Tris-HCl（pH 7.4）混勻后，立即在340 nm波長下測定吸光度值。

呼吸代謝相關酶在酶的相應波長下測定10 min內的吸光度，以每分鐘吸光度值變化計算酶活性，參考文獻[31]中過氧化物酶活性的計算方式，如下所示：

式中：ΔOD為每分鐘反應吸光度變化值；ODF為反應混合液吸光度終止值；ODI為反應混合液吸光度初始值；tp為反應終止時間，min；tI為反應初始時間，min。

以每分鐘吸光度變化值增加1 時為該酶的一個酶活性單位（U）。酶活性計算公式如下：

式中：V為樣品提取液總體積，mL；VS為測定時所取樣品提取液體積，mL；m為樣品質量，g。

1.2.3 數據處理

用Excel 2016 和Origin 2021 軟件進行數據處理分析及繪圖，用SPSS 23.0 軟件對數據進行差異顯著性分析。

2 結果與分析

2.1 不同處理對芒果貯藏期間外觀指標的影響

由表2 可知，隨著貯藏時間的延長，‘帕拉英達’果實的外觀品質呈逐漸下降的趨勢。貯藏0～20 d時，1-MCP+PBI處理組芒果的黃化指數上升緩慢；貯藏至25 d 時，各處理組芒果的黃化指數快速上升。整個貯藏期間，芒果果實的病情指數呈逐漸上升的趨勢。貯藏前期（10～20 d），1-MCP 處理及氣調包裝均對芒果的病害有抑制作用，但貯藏至20 d后，各組的病情指數迅速上升，貯藏30 d 時，1-MCP+PBI 保鮮袋處理組果實病情指數比對照組低16.07 個百分點。果實腐爛指數隨貯藏時間的延長一直升高，對照組果實最早出現腐爛現象，PBI 保鮮袋處理組果實貯藏15 d 時開始出現腐爛現象，其他處理組果實在貯藏10 d 時開始腐爛。其中對照組、1-MCP 處理組及1-MCP+PBI 處理組果實的腐爛指數上升速率較快，1-MCP+微孔膜、微孔膜及PBI 保鮮袋處理組的果實腐爛指數上升緩慢。

表2 不同處理對‘帕拉英達’果實貯藏期間外觀指標的影響Table 2 Effects of different treatments on the appearance index of‘Palayingda’fruit during storage

色澤是評價果實品質和判斷其成熟度的重要外觀指標。使用色差儀測量芒果的色差，其中a*值代表紅綠色，a*值為正說明樣品偏紅，反之偏綠；b*值代表黃藍色，b*值為正說明樣品偏黃，反之偏藍。由表2可見，在整個貯藏過程中，‘帕拉英達’果實的a*值和b*值整體呈上升的趨勢，即表明芒果果實逐漸脫綠變紅黃。其中，對照組在貯藏10～15 d 時果實的a*值和b*值急劇上升，其他處理組在整個貯藏期間芒果的a*值和b*值逐漸上升，在20～25 d貯藏期間，各處理組間的a*值差異達顯著水平（P＜0.05）。貯藏至30 d 時，1-MCP+PBI 保鮮袋處理組‘帕拉英達’果實a*值和b*值分別比對照組低29.91%和6.10%。1-MCP+PBI保鮮袋處理能有效延緩L*值的上升。綜合考慮以上結果得出1-MCP+PBI 保鮮袋處理能有效抑制‘帕拉英達’果實的色澤變化，從而延長果實的貨架期。

上述結果發現：1-MCP+PBI 保鮮袋處理可有效抑制‘帕拉英達’果實外觀品質的下降，這與李英麗等[32]研究報道采前1-甲基環丙烯處理推遲‘Bartlett’梨虎皮病發生時間并降低了病情指數的結論相似。

由表3 可知，隨著貯藏時間的延長，‘吉祿’果實的外觀品質呈逐漸下降的趨勢。在整個貯藏期間，‘吉祿’果實黃化指數總體呈現逐漸上升的趨勢。貯藏15～25 d，對照組的黃化指數顯著高于其他處理組（P＜0.05）。貯藏20～25 d，各處理組的黃化指數快速上升，其中，1-MCP+PBI保鮮袋處理對果實黃化的抑制效果最好。隨著貯藏時間的延長，各處理組‘吉祿’果實病情指數呈現逐漸上升的趨勢。在整個貯藏期間，對照組的病情指數不斷升高；其他處理組在貯藏5～10 d期間果實的病情指數上升較快，貯藏10 d之后，果實病情指數緩慢上升。貯藏期間‘吉祿’果實的腐爛指數逐漸升高。對照組和1-MCP處理組貯藏5 d 之后，果實開始腐爛，其他處理組貯藏至第10天之后逐漸腐爛，對照組的腐爛指數顯著高于其他處理組（P＜0.05），貯藏至30 d時，對照組腐爛指數達到30.18%，其他處理組腐爛指數最低的僅為10.17%。表明1-MCP 結合氣調包裝能夠有效抑制芒果的腐爛。在貯藏過程中，‘吉祿’果皮顏色均偏綠色。對照組的a*值貯藏5 d 之后顯著高于其他處理組（P＜0.05）；b*值在貯藏期間逐漸上升，對照組和1-MCP處理組在10～15 d時b*值迅速升高，隨后緩慢增加，并顯著高于其他處理組（P＜0.05）。結合a*值和b*值的變化情況，可得出1-MCP+PBI 保鮮袋處理芒果可抑制果實的轉黃速率。貯藏至30 d時，與其他處理相比，1-MCP+PBI 保鮮袋處理顯著抑制了果實L*值的上升（P＜0.05）。綜上表明，1-MCP+PBI保鮮袋處理可有效抑制‘吉祿’果實外觀品質的下降。

表3 不同處理對‘吉祿’果實貯藏期間外觀指標的影響Table 3 Effects of different treatments on appearance index of fruits of‘Jilu’during storage

2.2 不同處理對芒果貯藏期間失重率的影響

失重率是果蔬在貯藏期間重要的品質指標。由圖1 可知，隨著貯藏時間的延長，采后‘帕拉英達’和‘吉祿’芒果果實的失重率逐漸升高。各處理組均在貯藏0～15 d 上升較為緩慢，20～30 d 快速上升。貯藏30 d 時，對照組的失重率達15%以上，對照組與其他處理組之間的失重率存在顯著性差異（P＜0.05），其中1-MCP+PBI保鮮袋處理組芒果失重率控制在3%～5%。表明1-MCP+PBI 保鮮袋處理可以有效保持這兩個品種芒果采后水分和營養成分，減少貯藏期間質量損失。

2.3 不同處理對芒果貯藏期間果實硬度的影響

硬度是果蔬的質地指標，可反映果蔬成熟度和腐爛度。由圖2可知，芒果在貯藏過程中硬度總體呈下降的趨勢，‘帕拉英達’果實硬度下降速度大于‘吉祿’。整個貯藏期間，1-MCP+PBI保鮮袋處理組果實硬度始終最高。其中貯藏0～15 d，‘帕拉英達’果實硬度下降幅度較大，貯藏15 d之后，‘吉祿’果實硬度快速下降。兩種芒果的1-MCP+PBI保鮮袋處理組果實硬度顯著高于對照組（P＜0.05），貯藏期間‘吉祿’的果實硬度整體高于‘帕拉英達’。表明1-MCP+PBI保鮮袋處理能更好地抑制采后芒果硬度的下降。

圖2 不同處理對‘帕拉英達’（A）和‘吉祿’（B）芒果貯藏期間硬度的影響Fig.2 Effects of different treatments on the hardness of‘Palayingda’(A)and‘Jilu’(B)mangoes during storage

2.4 不同處理對芒果貯藏期間TSS含量的影響

可溶性固形物含量可用來評價果蔬的口感品質，與消費者喜愛程度相關，也能間接反映果蔬成熟衰老狀況。由圖3 可以看出，在貯藏過程中，采后芒果的可溶性固形物含量整體呈上升趨勢。‘帕拉英達’對照組在0～15 d 上升較快，并在15 d 時到達峰值，之后快速下降。在整個貯藏期間，‘帕拉英達’果實的TSS 含量上升幅度大于‘吉祿’。貯藏至30 d 時，1-MCP+PBI 保鮮袋處理組‘帕拉英達’和‘吉祿’芒果TSS 含量分別比對照組低1.90 和6.87 個百分點，其中，‘吉祿’1-MCP+PBI 保鮮袋處理組TSS 含量顯著低于對照組（P＜0.05），表明1-MCP+PBI 保鮮袋處理可有效控制芒果TSS 含量的上升。

圖3 不同處理對‘帕拉英達’（A）和‘吉祿’（B）芒果貯藏期間TSS含量的影響Fig.3 Effects of different treatments on TSS content of‘Palayingda’(A)and‘Jilu’(B)mangoes during storage

2.5 不同處理對芒果貯藏期間VC含量的影響

由圖4 可知，采后芒果貯藏期間VC 含量整體呈先上升后下降的趨勢。‘帕拉英達’芒果在貯藏0～10 d期間，各組的VC 含量快速上升，貯藏至10 d 時果實的VC 含量達到峰值，之后不斷下降。‘吉祿’芒果在貯藏0～5 d期間，各組果實的VC含量緩慢上升，貯藏至5 d時果實的VC含量達到峰值，之后呈逐漸下降的趨勢。貯藏初期，芒果VC含量在30 mg/100 g左右，貯藏至30 d時，1-MCP+PBI保鮮袋處理組果實的VC含量最高，顯著高于對照組（P＜0.05），表明1-MCP+PBI保鮮袋處理能有效降低芒果果實VC的損失。

圖4 不同處理對‘帕拉英達’（A）和‘吉祿’（B）芒果貯藏期間VC含量的影響Fig.4 Effects of different treatments on VC content of‘Palayingda’(A)and‘Jilu’(B)mangoes during storage

2.6 不同處理對芒果貯藏期間TA含量的影響

果實含酸量影響其風味品質，是評價芒果品質的重要指標。由圖5可知，在果實貯藏過程中，TA含量整體呈下降的趨勢。貯藏10～30 d，‘帕拉英達’各處理組之間以1-MCP+PBI 保鮮袋處理組的TA 含量最高，且顯著高于對照組（P＜0.05）。‘吉祿’芒果貯藏5～15 d，果實的TA含量快速下降，之后緩慢下降。貯藏至30 d時，1-MCP+PBI 保鮮袋處理組芒果果實TA含量顯著高于對照組（P＜0.05）。表明1-MCP+PBI保鮮袋處理可延緩芒果TA 含量的下降，延緩風味的變化，且對‘帕拉英達’芒果的效果最好。

圖5 不同處理對‘帕拉英達’（A）和‘吉祿’（B）芒果貯藏期間TA含量的影響Fig.5 Effects of different treatments on TA content of‘Palayingda’(A)and‘Jilu’(B)mangoes during storage

2.7 不同處理對芒果貯藏期間呼吸強度的影響

由圖6可以看出，‘帕拉英達’對照組果實呼吸強度在貯藏初期持續升高，貯藏10 d時達到峰值，之后呈下降的趨勢。1-MCP、微孔膜和PBI保鮮袋處理組果實的呼吸峰值推遲至貯藏20 d出現，1-MCP+微孔膜和1-MCP+PBI保鮮袋處理組果實的呼吸峰值推遲至25 d 出現，對照組與其他處理組的呼吸峰值存在顯著性差異（P＜0.05）。其中1-MCP+PBI 保鮮袋處理組對‘帕拉英達’代謝能力的保持效果最佳，表明1-MCP+PBI保鮮袋處理可以有效推遲‘帕拉英達’果實的呼吸躍變。‘吉祿’對照組貯藏至5 d后呼吸強度快速上升，在貯藏15 d 時達到峰值，之后呈下降趨勢。1-MCP 處理組果實貯藏至20 d 時達到呼吸峰值，而1-MCP+PBI 保鮮袋處理組果實的呼吸高峰推遲至30 d 出現，表明1-MCP+PBI 保鮮袋處理組可有效推遲‘吉祿’果實的呼吸躍變。綜上表明，1-MCP+PBI保鮮袋處理可有效推遲‘帕拉英達’和‘吉祿’果實的呼吸躍變，這與林靜穎等[33]的研究得出1-甲基環丙烯處理可降低采后‘油?’果實呼吸速率的結論相似。

圖6 不同處理對‘帕拉英達’（A）和‘吉祿’（B）芒果貯藏期間呼吸強度的影響Fig.6 Effects of different treatments on the respiratory intensity of‘Palayingda’(A)and‘Jilu’(B)mangoes during storage

2.8 不同處理對芒果貯藏期間商品率的影響

商品率可評估果實品質變化及病理指標等多個方面。由圖7可以看出，兩種芒果的商品率隨貯藏時間的延長而降低。‘帕拉英達’芒果貯藏至15 d時，CK組果實已無商品價值。貯藏至30 d時，只有1-MCP+微孔膜和1-MCP+PBI保鮮袋處理組的果實具有商品價值，表明1-MCP 結合PBI 氣調包裝可有效延長‘帕拉英達’果實的貨架期。‘吉祿’芒果采后貯藏0～5 d，各處理組間商品率無顯著差異，隨著貯藏時間的延長，各組芒果商品率迅速下降。貯藏至20 d時，CK組果實已不具有商品價值，1-MCP和PBI保鮮袋處理組果實分別在貯藏至25 d和30 d時基本不具有商品價值，而1-MCP+PBI保鮮袋處理組果實貯藏至30 d時，其商品率仍為33.19%。結果表明1-MCP+PBI保鮮袋處理組可有效延長‘帕拉英達’和‘吉祿’果實的貨架期。

圖7 不同處理對‘帕拉英達’（A）和‘吉祿’（B）芒果貯藏期間商品率的影響Fig.7 Effects of different treatments on the commodity rate of‘Palayingda’(A)and‘Jilu’(B)mangoes during storage

2.9 1-MCP+PBI保鮮袋處理對采后芒果果實呼吸代謝相關酶活性的影響

2.9.1 1-MCP+PBI 保鮮袋處理對采后芒果果實GPI和Sdh活性的影響

由圖8A可知，貯藏前10 d，‘帕拉英達’芒果的磷酸己糖異構酶活性高于‘吉祿’，貯藏后期（15～30 d），‘吉祿’芒果的GPI活性高于‘帕拉英達’。‘帕拉英達’芒果GPI活性整體呈緩慢降低的趨勢，經1-MCP+PBI保鮮袋處理的果實在整個貯藏過程中GPI 活性均高于對照組，說明1-MCP+PBI 保鮮袋處理能有效抑制GPI 活性的降低。‘吉祿’對照組（J-ck）貯藏至15 d時，GPI 活性達到峰值，而1-MCP+PBI 保鮮袋處理組貯藏至20 d 時，GPI 活性達到峰值。表明，1-MCP+PBI保鮮袋處理可延緩‘吉祿’果實呼吸代謝GPI活性峰值的到達，延長其貨架期。

圖8 1-MCP+PBI保鮮袋處理對采后芒果果實GPI（A）和Sdh（B）活性的影響Fig.8 Effect of 1-MCP combined with PBI treatment on GPI(A)and Sdh(B)activity in postharvest mango fruits

由圖8B可知，在整個貯藏期間，‘吉祿’果實的琥珀酸脫氫酶活性高于‘帕拉英達’。貯藏至5 d時，各組Sdh活性達到峰值，5 d之后Sdh活性受到抑制呈緩慢下降的趨勢。其中，貯藏5 d 時，1-MCP+PBI 保鮮袋處理組‘帕拉英達’和‘吉祿’Sdh 活性分別比其對照組高5.92%和4.62%，與相應的對照組差異顯著（P＜0.05）。貯藏30 d時，1-MCP+PBI保鮮袋處理組‘帕拉英達和‘吉祿’Sdh 活性分別比其對照組高10.26%和9.18%，與相應的對照組差異顯著（P＜0.05）。表明1-MCP+PBI 處理對芒果貯藏期間Sdh 活性有促進作用，保持果實的貯藏品質。

2.9.2 1-MCP+PBI 保鮮袋處理對采后芒果果實G-6-PDH和PK活性的影響

由圖9A 可以看出，各處理組葡萄糖-6-磷酸脫氫酶活性整體呈現先升后降的趨勢，與對照組相比，1-MCP+PBI 保鮮袋處理組均對芒果果實G-6-PDH活性有明顯的促進作用，且對‘吉祿’果實的促進作用更明顯。貯藏至20 d 時，各組G-6-PDH 活性達到高峰，1-MCP+PBI 處理組‘帕拉英達’和‘吉祿’果實G-6-PDH 活性分別比相應的對照組高13.95%和12.33%。直至貯藏結束，1-MCP+PBI 保鮮袋處理組‘帕拉英達’和‘吉祿’果實G-6-PDH活性始終高于對照組，且1-MCP+PBI 保鮮袋處理組與對照組之間差異顯著（P＜0.05）。表明1-MCP+PBI 保鮮袋處理對這兩個品種的芒果貯藏期間G-6-PDH活性有促進作用，可延緩果實的成熟衰老。

圖9 1-MCP+PBI保鮮袋處理對采后芒果果實G-6-PDH（A）和PK（B）活性的影響Fig.9 Effect of 1-MCP combined with PBI treatment on G-6-PDH(A)and PK(B)activity in postharvest mango fruits

如圖9B可知，在貯藏期間，‘帕拉英達’和‘吉祿’果實丙酮酸激酶活性整體呈先上升后下降的趨勢。其中，貯藏15 d 時，1-MCP+PBI 保鮮袋處理組‘帕拉英達’和‘吉祿’PK 活性分別比對照組高12.05%和28.90%，1-MCP+PBI 保鮮袋處理組與相應的對照組差異顯著（P＜0.05）。貯藏期間，‘帕拉英達’各處理組果實PK 活性均小于‘吉祿’。貯藏15、25 d 時，兩個品種的芒果PK 活性存在顯著性差異（P＜0.05）。

2.9.3 1-MCP+PBI 保鮮袋處理對采后芒果果實PDC和COX活性的影響

由圖10A可知，丙酮酸脫氫酶活性整體呈先上升后下降的趨勢。貯藏期間‘帕拉英達’PDC 活性整體高于‘吉祿’。貯藏至20 d 時，‘帕拉英達’果實PDC活性達到高峰，1-MCP+PBI 保鮮袋處理組PDC活性比對照組高17.03%；而‘吉祿’貯藏至15 d 時，PDC 活性達到高峰，1-MCP+PBI 保鮮袋處理組PDC 活性比對照組高9.15%，且存在顯著性差異（P＜0.05）。‘帕拉英達’和‘吉祿’果實PDC 活性達到峰值后快速下降。貯藏至30 d 時，‘帕拉英達’1-MCP+PBI 保鮮袋處理組PDC 活性比‘吉祿’1-MCP+PBI 保鮮袋處理組高42.62%，‘帕拉英達’和‘吉祿’1-MCP+PBI 保鮮袋處理組PDC 活性分別比相應的對照組高1.64%和42.86%。

圖10 1-MCP+PBI保鮮袋處理對采后芒果果實PDC（A）和COX（B）活性的影響Fig.10 Effect of 1-MCP combined with PBI treatment on PDC(A)and COX(B)activity in postharvest mango fruits

由圖10B可知，‘帕拉英達’與‘吉祿’果實細胞色素氧化酶活性在貯藏期間呈先上升后下降的趨勢，且在15 d 時達到峰值。整個貯藏過程中，‘吉祿’果實COX活性始終低于‘帕拉英達’，且貯藏至30 d時，1-MCP+PBI保鮮袋處理組‘帕拉英達’和‘吉祿’果實COX 活性分別比相應的對照組高28.23%和63.16%，表明1-MCP+PBI 保鮮袋處理對芒果COX 活性有促進作用。

2.9.4 1-MCP+PBI 保鮮袋處理對采后芒果果實NAD-MDH和ME活性的影響

由圖11A 可知，隨著貯藏時間的延長，‘帕拉英達’和‘吉祿’果實各組蘋果酸脫氫酶活性整體呈上升的趨勢，貯藏0～25 d，‘吉祿’果實NAD-MDH 活性較高。貯藏至30 d時，1-MCP+PBI保鮮袋處理組‘帕拉英達’和‘吉祿’果實NAD-MDH活性分別比相應的對照組高31.96%和21.72%。

圖11 1-MCP+PBI保鮮袋處理對采后芒果果實NAD-MDH（A）和ME（B）活性的影響Fig.11 Effect of 1-MCP combined with PBI treatment on NADMDH(A)and ME(B)activity in postharvest mango fruits

如圖11B 所示，NADP 型蘋果酸酶活性隨貯藏時間的延長而逐漸上升，貯藏前期ME 活性較低，貯藏至10 d后ME活性開始快速上升，并且各組之間差異顯著（P＜0.05），整個貯藏期間‘吉祿’果實ME 活性均高于‘帕拉英達’。貯藏第30 天時，1-MCP+PBI保鮮袋處理組‘帕拉英達’和‘吉祿’果實ME 活性分別比相應的對照組高23.90%和16.13%。結果表明，1-MCP+PBI 保鮮袋處理對芒果NAD-MDH 及ME 活性有促進作用，可延緩果實成熟衰老。

3 討論與結論

云南元江晚熟芒果品種‘帕拉英達’和‘吉祿’營養價值、產銷量高，但收獲時間集中，芒果采后極易成熟和軟化，導致其貨架期相對較短，并使產品供應鏈及物流受到嚴重限制[34]。因此，尋找抑制芒果成熟軟化的調控技術成為生產中亟待解決的重要問題[35-36]。

本課題采用1-MCP、微孔膜、PBI 氣調保鮮袋、1-MCP+微孔膜、1-MCP+PBI 氣調保鮮袋5種保鮮方式處理‘帕拉英達’與‘吉祿’兩種芒果，研究采后各處理對兩種芒果果實在（13±1）℃溫度下貯藏品質及呼吸代謝相關酶活性的影響。結果表明：0.05 μL/L 1-MCP+PBI氣調保鮮袋處理芒果可有效維持果實外觀品質，抑制硬度、可滴定酸含量、VC 含量及商品率的下降，抑制果實呼吸強度延緩呼吸高峰出現。在相同采收成熟度下，1-MCP+PBI 氣調保鮮袋處理兩種芒果的反應不同，在同樣的貯藏期，1-MCP+PBI氣調保鮮袋處理對‘吉祿’的保鮮效果優于‘帕拉英達’，能維持較高的硬度、VC含量和可滴定酸含量，抑制病情指數、黃化指數、腐爛指數及呼吸強度的上升。此外，與對照相比，1-MCP+PBI保鮮袋處理可抑制‘帕拉英達’和‘吉祿’果實GPI、Sdh、PK、PDC、G-6-PDH、NAD-MDH、ME和COX等呼吸代謝相關酶活性變化，有效維持兩個品種芒果較高的呼吸代謝相關酶的活性。‘帕拉英達’對照組貯藏至第10 天時達到呼吸高峰，‘吉祿’對照組在貯藏至第15 天達到呼吸高峰。兩個品種芒果的酶活性對比，發現‘吉祿’在貯藏期內PK、G-6-PDH、Sdh、NAD-MDH 和ME 5種酶活性高于‘帕拉英達’，而‘吉祿’在貯藏期內GPI、PDC和COX 3種酶活性高于‘帕拉英達’。雖然元江主栽兩種芒果均為中晚熟品種，但‘吉祿’營養豐富且呼吸代謝相關酶顯著高于‘帕拉英達’，耐貯藏性優于‘帕拉英達’。因此，‘吉祿’芒果更適宜銷售半徑較長區域的推廣應用。

1-MCP處理晚熟芒果貯藏效果優于單一氣調貯藏，而1-MCP 結合PBI 自發氣調處理能達到更好的貯藏效果。這些研究結果對于云南芒果貯藏條件的優化，貯藏過程中的代謝研究與控制具有一定的參考價值，為低維度高海拔高原特色果蔬的貯藏保鮮提供一條新途徑。