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木質(zhì)素高效降解復合菌群構(gòu)建及其降解效果

2024-02-14 00:00:00高付來田如意何尋陽李德軍劉秋梅夏世斌
江蘇農(nóng)業(yè)科學 2024年24期

摘要:為構(gòu)建一組高效降解木質(zhì)素的復合菌群,并提高堆肥過程中辣椒秸稈內(nèi)木質(zhì)素的降解率。利用苯胺藍褪色試驗并測定菌株木質(zhì)素降解酶(木質(zhì)素過氧化物酶、錳過氧化物酶、漆酶)活性,從豬糞桑枝堆肥材料中篩選木質(zhì)素降解菌株,以5株菌株為最小單位構(gòu)建符合菌群。進行室內(nèi)發(fā)酵試驗,以CK(自然發(fā)酵)為對照、設置7種接菌處理(接種量均為3%)即單一菌劑(CB12、CF53、CF30、CF18、CF5)、復合菌劑(CS1)、市售菌劑(EM),測定木質(zhì)素和纖維素降解率。結(jié)果表明,豬糞桑枝堆肥材料中的Achromobacter CB12、Bacillus altitudinis CB38、Bjerkandera CF5、Trichoderma harziana CF18、Myrothecium CF30、Cladsporium CF53對木質(zhì)素具有較高的降解效果。菌株CF5、CF18、CF30、CF53、CB12的組合(復合菌群CS1)對木質(zhì)素的降解能力優(yōu)于其他菌株組合。復合菌群CS1木質(zhì)素過氧化物酶活性和對辣椒秸稈中木質(zhì)素的降解率分別是7.99 U/L和40.33%,較單一菌株分別提高了1.71倍和1.51倍。可見,符合菌群CS1綜合表現(xiàn)良好,作為構(gòu)建出的較優(yōu)菌群,可有效提高堆肥時辣椒秸稈中木質(zhì)素的降解效果,推進辣椒秸稈的肥料化。

關鍵詞:木質(zhì)纖維素;堆肥;復合菌群;木質(zhì)素降解;水解酶

中圖分類號:S182;S141.4" 文獻標志碼:A

文章編號:1002-1302(2024)24-0233-08

收稿日期:2023-12-16

基金項目:廣西重點研發(fā)計劃(編號:桂科AB22080097);中國科學院鄉(xiāng)村振興項目(編號:KFJ-XCZX-202303)。

作者簡介:高付來(1999—),男,河南南陽人,碩士,主要從事甘蔗黑穗病的生物防治技術(shù)研究。E-mail:1079679996@qq.com。

通信作者:劉秋梅,博士,副研究員,主要從事微生物肥料研究,E-mail:liuqiumie@isa.ac.cn;夏世斌,博士,教授,主要從事生態(tài)修復及碳減排研究,E-mail:xiashibin@126.com。

我國作為農(nóng)業(yè)大國,每年產(chǎn)生的農(nóng)作物秸稈數(shù)量龐大。據(jù)統(tǒng)計,2021年我國秸稈產(chǎn)量約8億t,居世界首位且秸稈產(chǎn)量依然呈上升趨勢[1-2。秸稈中包含豐富的C、N、P等營養(yǎng)物質(zhì)和微量元素,將其肥料化還田能減少化肥施用,從而實現(xiàn)秸稈的資源化[3-5。然而,秸稈中的木質(zhì)纖維素降解效率較低,限制了其完全肥料化。木質(zhì)纖維素主要由纖維素、半纖維素和木質(zhì)素等組成,其中,木質(zhì)素擁有緊密的碳水化合物結(jié)構(gòu),并以共價鍵的形式嵌入纖維素和半纖維素之間,形成了天然的物理屏障6。這限制了纖維素和半纖維素的酶解,因此,提高木質(zhì)素的降解效率是突破辣椒秸稈肥料化技術(shù)瓶頸的關鍵。

生物法降解木質(zhì)素具有能耗小、無污染、成本低的特點,是近年來國內(nèi)外研究的熱點[7。木質(zhì)素降解菌的來源多為腐爛的樹葉和木材,其中白腐真菌、褐腐真菌和鏈霉菌是目前廣泛研究的菌種。白腐菌可以分泌漆酶和木質(zhì)素過氧化物酶,選擇性破壞木質(zhì)素單體間的醚鍵(C—O—C)和碳碳(C—C)鍵,以提高木質(zhì)素的降解率[8-9,如Ceriporiopsis subvermispora、Dichomitus squalens和Phanerochaete chrysosporium。此外,Trametes versicolor和Fomes fomentarius等白腐菌對纖維素和半纖維素也有一定的降解作用10。褐腐菌通過產(chǎn)生羥基自由基(·OH)氧化木質(zhì)素和分泌胞外酶2種方式降解木質(zhì)素[11。鏈霉菌能通過分泌漆酶和過氧化物酶破壞木質(zhì)素中的羰基(CO)和甲氧基(—OCH3)[12。此外,部分類芽孢桿菌屬和木霉屬的微生物也具有一定的木質(zhì)素降解能力[13-14。已發(fā)掘的微生物中,真菌的木質(zhì)素降解能力通常強于細菌。但是,細菌具有繁殖快、環(huán)境耐受性強以及基因組小的優(yōu)勢。多項研究表明,復合菌群具有更加完備的協(xié)同酶系統(tǒng),對木質(zhì)素的降解效率高于單一菌株[15-18。如,將2株芽孢桿菌復合后對木質(zhì)素的降解效果有所提升;利用康寧木霉(Trichoderma koningiopsis)和黃孢原毛平革菌(Phanerochaete chrysosporium)構(gòu)建的復合菌劑對木質(zhì)素和纖維素的降解能力優(yōu)于單一菌株;將毛曲菌(Trametes hirsuta)S13和平菇菌(Pleurotus ostreatus)S18復合后,結(jié)木質(zhì)素降解酶活力得到了提升,并且煙桿中木質(zhì)素的降解率提高到了41.1%[16-18。因此,構(gòu)建高效復合菌群是提高木質(zhì)素生物降解率的有效途徑。在湖南省,辣椒作為重要的經(jīng)濟作物,每年產(chǎn)生大量辣椒秸稈。然而,當前對木質(zhì)素降解菌群的研究主要集中在玉米秸稈和小麥秸稈上,對辣椒秸稈的研究尚顯不足。此外,在現(xiàn)有的研究中,所使用的菌株大多并非來源于堆肥材料,這使得研究的實用性和針對性受到限制。

本研究以堿木質(zhì)素為唯一碳源,采用褪色試驗和木質(zhì)素降解酶活力檢測的方法,從豬糞堆肥樣品中分離篩選出具有木質(zhì)素降解能力的菌株。通過形態(tài)學和分子生物學方法對這些菌株進行鑒定,并以木質(zhì)素降解酶活力為篩選指標,構(gòu)建了高效復合菌群CS1。通過室內(nèi)發(fā)酵試驗,明確了該復合菌群對辣椒秸稈的降解效果,為辣椒秸稈的肥料化和資源化利用提供了理論支撐。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 菌株樣品來源

菌株來自腐熟期的堆肥試驗堆樣品(材料以豬糞桑枝為主),取各個部位均勻混合后采用四分法混合收集樣品。碳氮比為15.51、pH值為9.78、含水量為24.00%、總氮含量為22.09%、總碳含量為22.09%。辣椒秸稈和玉米秸稈來源于長沙附近農(nóng)戶,粉碎后過20目篩備用。所有試驗均在中國科學院亞熱帶農(nóng)業(yè)生態(tài)研究所(湖南省長沙市芙蓉區(qū)遠大二路644號)進行,試驗時間為2020年6月至2021年12月。

1.1.2 培養(yǎng)基

(1)馬鈴薯葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基(PDA)-苯胺藍培養(yǎng)基:馬鈴薯200.00 g/L、葡萄糖 20.00 g/L、瓊脂20.00 g/L、苯胺藍0.10 g/L,加入 1 L 蒸餾水,115 ℃滅菌30 min,用于真菌的初篩。

(2)LB-苯胺藍培養(yǎng)基:蛋白胨10.00 g/L、酵母膏5.00 g/L、NaCl 10.00 g/L、瓊脂20.00 g/L、苯胺藍0.10 g/L,加入1 L蒸餾水,115 ℃滅菌30 min,用于細菌的初篩。

(3)液態(tài)產(chǎn)酶培養(yǎng)基:堿木質(zhì)素 2.00 g/L、K2HPO4 1.00 g/L、MgSO4·7H2O 0.10 g/L、CaCl2 0.08 g/L、FeSO4·7H2O 0.05 g/L、MnCl2 0.02 g/L、KH2PO4 1.00 g/L、蛋白胨2.00 g/L,用于檢測木質(zhì)素降解菌的產(chǎn)酶能力。

1.2 試驗方法

1.2.1 木質(zhì)素降解菌的篩選

(1)初篩:將單菌株接種于PDA-苯胺藍或LB-苯胺藍培養(yǎng)基,每種菌株設置3個平行樣本,在30 ℃恒溫、避光條件下進行培養(yǎng)。細菌樣本培養(yǎng)36 h后進行觀察,真菌樣本培養(yǎng)3 d后進行觀察,確認是否存在褪色圈[17。若存在褪色圈,以A值來判斷菌株降解木質(zhì)素的能力,A值越大表明菌株的降解能力越強。A=D/d,其中d代表菌株直徑,D代表變色圈直徑。

(2)復篩:選取Agt;1的真菌和Agt;3的細菌作為樣本,接種在液態(tài)產(chǎn)酶培養(yǎng)基上,30 ℃下在180 r/min搖床中分別培養(yǎng)3 d、36 h,然后測定木質(zhì)素降解酶活力。

1.2.2 酶活力測定

取發(fā)酵培養(yǎng)液在4 ℃、12 000 r/min 條件下離心10 min,取其上清液作為粗酶液。利用藜蘆醇(VA)氧化法分光光度法、2,2-聯(lián)氮-二(3-乙基-苯并噻唑-6-磺酸)二銨鹽(ABTS)氧化法分光光度法和2,6-甲氧基苯酚(2,6-DMP)氧化法分光光度法,分別測定漆酶(Laccase,Lac)、錳過氧化物酶(Mn-dependent peroxidase,Mnp)、木質(zhì)素過氧化物酶(Lignin Peroxidase,LiP)的活力。酶活性單位(U)分別為 1 min 氧化1 μmol VA、ABTS和2,6-DMP所需酶量[19

1.2.3 木質(zhì)素降解菌的鑒定

(1)形態(tài)學觀察:將菌株CB38、CB12、CF53、CF30、CF18、CF5分別接種在PDA培養(yǎng)基上,30 ℃恒溫避光條件下培養(yǎng)3 d,并觀察菌落形態(tài)特征。

(2)分子生物學鑒定:按照快速DNA提取試劑盒的說明提取菌株DNA。以提取的DNA為模板,利用真菌、細菌通用引物對菌株的18S rDNA或者16S rDNA序列進行PCR擴增。擴增后的產(chǎn)物送至生工生物工程(上海)股份有限公司進行測序,測序結(jié)果在NCBI網(wǎng)站上進行比對,并基于比對結(jié)果構(gòu)建Neighbor-joining系統(tǒng)發(fā)育樹。

(3)引物序列如下:真菌18S rDNA引物序列為ITS1(5′-TCCGTAGGTGAACCTGCGG-3′)和ITS4(5′-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3′);細菌16S rDNA引物序列為27F(5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′)和1492R(5′-TACGGYTACCTTGTTACGACTT-3′)。PCR反應程序:97 ℃預變性3 min;97 ℃ 變性30 s,56 ℃退火30 s,72 ℃延伸90 s,循環(huán)30次;72 ℃終末延伸10 min。

1.2.3 高效降解木質(zhì)素復合菌群的構(gòu)建

將互不拮抗的單菌株懸液以等體積隨機配對的方式混合,然后按3%接種量接入堿木質(zhì)素液體培養(yǎng)基。在 30 ℃ 恒溫、避光條件下培養(yǎng),每12 h取1次樣,連續(xù)收集7 d并測定木質(zhì)素降解酶活性。

采用單因素試驗對復合菌群的產(chǎn)酶條件進行優(yōu)化,初始pH值設置為7,接種量設置為3%,培養(yǎng)溫度設置為 30 ℃。采用控制變量法,在單一條件下分別考察初始pH值(4、5、6、7、8、9)、接菌量(1%、3%、5%、7%、9%)對于復合菌群木質(zhì)素降解酶(錳過氧化物酶、過氧化物酶、漆酶酶)活性的影響。根據(jù)復合菌群的動態(tài)變化曲線,在培養(yǎng)第6天時進行取樣測定。

1.2.4 室內(nèi)發(fā)酵試驗

設置不接菌(C)、單一菌劑(CB12、CF53、CF30、CF18、CF5)、復合菌劑(CS1)、市售菌劑(EM)共8個處理,進行為期28 d的室內(nèi)發(fā)酵試驗。辣椒秸稈和玉米秸稈按照2 ∶1的比例作為發(fā)酵材料,調(diào)節(jié)含水量至55%~65%。每個處理組稱取30 g混勻后的材料置于500 mL錐形瓶中,115 ℃滅菌30 min,烘干后按照處理組分別接種3%的菌液。接種后,用紗布包裹瓶口,在 30 ℃ 下避光培養(yǎng)28 d。

試驗前和結(jié)束時,利用范氏(Van Soest)洗滌分析法測定辣椒秸稈的木質(zhì)素、纖維素含量,并計算降解率。同時,利用掃描電子顯微鏡觀察試驗結(jié)束時秸稈的結(jié)構(gòu)。

1.3 統(tǒng)計分析

使用IBM SPSS Statistics 26軟件進行統(tǒng)計分析,采用Duncans新復極差法進行多重比較。運用Origin 2018軟件進行繪圖。

2 結(jié)果與分析

2.1 木質(zhì)素降解菌的產(chǎn)酶能力

經(jīng)過苯胺藍培養(yǎng)基培養(yǎng),篩選了具有木質(zhì)素降解能力的11株真菌和7株細菌(表1)。酶活性測定結(jié)果表明,18株菌株的木質(zhì)素降解酶活性存在顯著差異。其中,菌株CB38、CB12、CF30的Lip活性顯著高于其他菌株,分別為8.41、6.59、6.32 U/L。菌株CF18、CB12、CF30的Mnp活性均顯著高于其他菌株,分別為1.08、0.97、0.95 U/L。另外,菌株CF18和CF5的Lac活力顯著高于其他菌株,分別為10.20、10.04 U/L(圖1)。經(jīng)過比較,篩選出6株具有較高木質(zhì)素降解酶活性的菌株,分別為CB38、CB12、CF53、CF30、CF18、CF5。

2.2 木質(zhì)素降解菌的鑒定

這6株菌株具有各自獨特的形態(tài)特征(圖2-a)和分子水平(圖2-b)。菌株CB38在培養(yǎng)基上呈現(xiàn)米黃色不透明鋸齒狀的圓形菌落,其序列與Bacillus altitudinis(高地芽孢桿菌)具有高達99%的同源性。菌株CB12與Achromobacter(無色桿菌屬)的同源性超過99%,在培養(yǎng)基上呈現(xiàn)米黃色透明整齊的圓形菌落。菌株CF53生長緩慢,表面無菌絲,孢子為綠色,其序列與Cladsporium sp.(枝孢霉屬)具有99%的同源性。菌株CF30具有白色棉絮狀菌絲,邊緣呈現(xiàn)波紋狀,其序列與Myrothecium(漆斑菌屬)的同源性超過97%。菌株CF18的菌落呈圓形,菌絲生長較為稀疏、顏色為米色,產(chǎn)綠色孢子,其序列與Trichoderma harzianum(哈茨木霉菌)的同源性為97%以上。而菌株CF5的菌落為毛茸茸的白色網(wǎng)狀圓形狀態(tài),不產(chǎn)孢子,其序列與Bjerkandera(煙管菌屬)具有98%以上的同源性。

2.3 最優(yōu)木質(zhì)素降解菌群的確定

2.3.1 復合菌群的組成 表2中數(shù)據(jù)顯示,篩選出的木質(zhì)素降解菌株之間不存在拮抗關系。因此,根據(jù)最小復合菌群體系的構(gòu)建方法 將這6種菌株進行隨機組合[20。共組成6組復合菌群,編號分別為CS1、CS2、CS3、CS4、CS5、CS6(表3)。

2.3.2 復合菌群的產(chǎn)酶能力

不同菌群木質(zhì)素降解酶活性變化趨勢相同,所有菌群Lip和Mnp活性都呈現(xiàn)先降低后升高再降低的趨勢,而Lac活性整體呈現(xiàn)先升高后降低的趨勢。此外,所有菌群木質(zhì)素降解酶活性均在第6天達到峰值(圖3)。

取菌群最佳酶活性值點,與單一菌株最高酶活性值作為對照進行比較。結(jié)果表明,6組復合菌群的Mnp最佳活性值均低于Lip和Lac。其中,菌群CS1的Lip和Lac最佳酶活性值顯著高于其他復合菌群,分別為7.99、8.74 U/L,較單一菌株分別提高了56.52%、35.15%,其中CS1的Lip活性是單一菌株的1.71倍。然而,復合菌群CS2、CS3、CS4、CS5的木質(zhì)素降解酶活性值反而低于單一菌株(圖4)。以上結(jié)果表明,菌群CS1具有較高的木質(zhì)素降解酶活性,而其他復合菌群的酶活性并不理想。因此,后續(xù)研究將僅針對構(gòu)成菌群CS1的單一菌株以及菌群CS1進行辣椒秸稈降解效果探究。

2.3.3 產(chǎn)酶條件優(yōu)化

菌群CS1的木質(zhì)素降解酶活性受培養(yǎng)條件影響(圖5)。隨著pH值的升高,菌群CS1的木質(zhì)素降解酶活性先升高后下降,在初始pH值為7時木質(zhì)素降解酶活性達到最高,其Mnp、Lip、Lac的活性分別為0.95、6.42、8.27 U/L。這表明偏酸或偏堿的條件對于菌群CS1的酶活性影響較大(圖5-b)。

另外,在接種量大于3%后,菌群CS1的木質(zhì)素降解酶活性出現(xiàn)了顯著降低的情況。在接種量為3%時,菌群CS1的Mnp、Lip、Lac活性分別達到了1.24、8.82、9.09 U/L(圖5-a)。

2.4 最優(yōu)菌群CS1的辣椒秸稈降解效果

在對照組、單一菌劑處理和復合菌劑處理間,辣椒秸稈中木質(zhì)素的降解效果存在顯著差異(圖6)。對照組辣椒秸稈中木質(zhì)素的降解率僅為4.4%。在單一菌劑處理組中,木質(zhì)素降解率由大到小依次是CF5、CF30、CF18、CF53、CB12,分別為26.8%、24.6%、23.2%、18.9%、13.9%,顯著高于對照組(Plt;0.05)。這一結(jié)果表明,單一菌株對辣椒秸稈中木質(zhì)素的降解具有促進作用。菌群CS1處理后辣椒秸稈中木質(zhì)素的降解率為40.33%,是菌株CF5的1.51倍,顯著高于其他處理(Plt;0.05)。與單菌株相比,菌群CS1對木質(zhì)素的降解率提高了13.57%,同時對纖維素的降解率也有所提高。與市售菌劑相比,菌群CS1的木質(zhì)素降解率提高了15.97%,纖維素降解率降低了7.5%。這一結(jié)果表明菌群CS1在促進辣椒秸稈中木質(zhì)素降解方面的效果顯著,且優(yōu)于市售菌劑。

在電子顯微鏡觀察下,對照組、菌群CS1處理組、EM菌劑處理組的辣椒秸稈表面結(jié)構(gòu)存在顯著差異(圖7)。在對照組中,辣椒秸稈表面平坦光滑,木質(zhì)素以平行的方式緊密排列。而在菌群EM處理組中,辣椒秸稈表面呈現(xiàn)疏松狀態(tài),內(nèi)部存在碎片化跡象,部分木質(zhì)素已發(fā)生降解。而在菌群CS1處理組中,辣椒秸稈表面存在微生物定殖的情況,木質(zhì)素被大量破壞,產(chǎn)生了大范圍的空腔。經(jīng)過EM菌劑和復合菌群CS1處理后,均能破壞木質(zhì)素形成的天然屏障,使易降解的物質(zhì)暴露出來,進而促進辣椒秸稈的發(fā)酵。

3 討論與結(jié)論

在好氧堆肥過程中,存在大量能夠降解木質(zhì)素的微生物,且與白腐菌、褐腐菌等常見木質(zhì)素降解菌相比,能更好地適應辣椒秸稈肥料化過程中多變的環(huán)境條件。微生物主要通過胞外酶來降解木質(zhì)素,其降解能力與酶活性呈正相關關系[21-23。因此,通過測量酶活性,可以反映出微生物的分解能力。本研究發(fā)現(xiàn),Trichoderma harzianum(哈茨木霉)CF18和Bjerkandera(煙管菌)CF5是堆肥過程中降解木質(zhì)素能力最強的菌株,主要通過分泌Lac來降解木質(zhì)素。同時,土壤中的哈茨木霉菌也具有產(chǎn)Lac能力和較強的木質(zhì)素降解能力[14。而在汪文強等的試驗中煙管菌主要通過分泌Mnp降解木質(zhì)素,這可能與菌株產(chǎn)酶時的生存環(huán)境有關[24。此外,本研究發(fā)現(xiàn)Bacillus altitudinis CB38(高地芽孢桿菌)具有較高的Lip酶活性。但是,Bacillus altitudinis CB38參與構(gòu)成的復合菌群木質(zhì)素降解酶活性降低,與前人的結(jié)果存在一定差異[25。這可能是因為部分菌株的代謝產(chǎn)物抑制了木質(zhì)素降解酶活性,后續(xù)可以通過代謝組學的手段,研究菌株代謝產(chǎn)物對木質(zhì)素降解酶生成過程的影響26。16S rDNA測序結(jié)果表明,無色桿菌是腐爛木材木質(zhì)素降解菌群的主要優(yōu)勢菌屬之一[27,本研究的結(jié)果與之相符。最后,本研究還在堆肥中發(fā)現(xiàn)了Myrothecium(漆斑菌)CF30和Cladsporium(枝孢霉菌)CF53這2種具備較強木質(zhì)素降解能力的菌種。特別是Cladsporium CF53,它還具備降解纖維素的能力,這與前人的研究結(jié)果[28-29一致。

本研究構(gòu)建了6種復合菌群,其中復合菌群CS1是本研究構(gòu)建的最優(yōu)菌群,包含1種細菌(Achromobacter CB12)和4種真菌(Bjerkandera CF5、Trichoderma harzianum CF18、Myrothecium CF30、Cladsporium CF53)。所有菌群的木質(zhì)素降解酶活性都在第6天左右達到峰值,與前人的研究展現(xiàn)了相似的趨勢[29。pH值和溶氧量是菌株酶活性出現(xiàn)峰值的重要因素,木質(zhì)素降解前期產(chǎn)生了NH3導致pH值升高并逐漸達到菌株最佳生長條件,這一過程中菌株產(chǎn)酶能力隨之上升,而隨后菌株數(shù)量的增長引起了培養(yǎng)液中溶氧量和營養(yǎng)物質(zhì)的減少從而導致酶活性降低[30。在單因素試驗中 也發(fā)現(xiàn)pH值會對復合菌群的木質(zhì)素降解酶活性造成較大影響,這可能與菌群自身的最佳生長條件有關。同時,所有菌群Mnp活性較低,可能是因為以堿木質(zhì)素為碳源的液態(tài)產(chǎn)酶培養(yǎng)基和生長條件使得菌株更偏向于產(chǎn)Lip和Lac[30。本研究中菌群CS1的木質(zhì)素降解酶活性是單一菌株的1.2倍,但其他菌群的木質(zhì)素降解酶活性反而低于單菌株。可能是因為組合菌群的次生代謝產(chǎn)物存在差異,部分次生代謝會抑制酶活性,從而導致了這一結(jié)果的產(chǎn)生[25

本研究結(jié)果表明,無論是單菌株還是復合菌群,均具有降解辣椒秸稈的能力。其中,復合菌群CS1的降解效果比單一菌株高出1.51倍,這進一步驗證了不同菌種之間酶系互補、相互促進的重要性[31。這種優(yōu)勢使得復合菌群在辣椒秸稈發(fā)酵和肥料化過程中更具效率。然而,本研究中菌株的木質(zhì)素降解酶活性較低,初步的單因素試驗表明,初始培養(yǎng)條件可能是導致這一結(jié)果的關鍵因素。此外,本研究還觀察到菌群CS1能在辣椒秸稈表面形成生物膜,這有助于破壞辣椒秸稈的細胞壁,增加其表面空隙,從而增大菌株與木質(zhì)素、纖維素等物質(zhì)的接觸面積。復合菌群CS1主要通過產(chǎn)生Lip和Lac來氧化木質(zhì)素中的酚類物質(zhì)和非酚類物質(zhì)間的化學鍵,破壞木質(zhì)素組成的天然屏障,進一步促進纖維素的降解,進而提高辣椒秸稈的發(fā)酵過程和肥料化效果。

由于不同秸稈中木質(zhì)素的結(jié)構(gòu)和致密性存在差異,導致秸稈的降解效果存在一定的差異。因此,本研究中菌群對辣椒秸稈的降解效果與梅新蘭等的結(jié)果[32存在一定差異。在木質(zhì)素降解過程中,細菌和真菌具有專化性。與市面在售的菌劑EM相比,復合菌群CS1對木質(zhì)素的降解率提高了16%,但纖維素的降解效果不如市售菌劑。這表明復合菌群CS1對木質(zhì)素具有一定的選擇性。

本研究結(jié)果表明,從腐熟期堆肥材料中篩選了木質(zhì)素降解菌株:無色桿菌CB12、芽孢桿菌CB38、煙管菌CF5、哈茨木霉CF18、漆斑菌CF30以及枝孢霉菌CF53。基于這些菌株,構(gòu)建了復合菌群CS1。復合菌群CS1的構(gòu)建能顯著提升木質(zhì)素降解酶的活性,并進一步提高辣椒秸稈的降解效率。

參考文獻:

[1]羅 洋,張桂玲,王 芳,等. 辣椒秸稈生物炭對黃壤化學特性及小白菜生長的影響[J]. 四川農(nóng)業(yè)大學學報,2022,40(6):847-852.

[2]于 帥,王思明. 盆幾賞玩、舉箸如藥:中國辣椒利用方式的歷史變遷[J]. 自然辯證法研究,2023,39(4):97-102.

[3]申煜麗,牛欣璐,賈若蘊,等. 辣椒秸稈高效利用的研究現(xiàn)狀[J]. 現(xiàn)代園藝,2021(23):20-24.

[4]李雪菲,靳 拓,邵明娜,等. 外源菌劑對茄子秸稈原位堆肥微生物群落結(jié)構(gòu)影響及其相關性分析[J]. 農(nóng)業(yè)資源與環(huán)境學報,2023,40(4):883-892.

[5]李雪菲,靳 拓,張 凱,等. 微生物菌劑對設施辣椒秸稈原位堆肥土壤理化性質(zhì)及細菌群落的影響[J]. 中國農(nóng)業(yè)大學學報,2022,27(10):33-43.

[6]Buranov A U,Mazza G. Lignin in straw of herbaceous crops[J]. Industrial Crops and Products,2008,28(3):237-259.

[7]Zhao L,Sun Z F,Zhang C C,et al. Advances in pretreatment of lignocellulosic biomass for bioenergy production:challenges and perspectives[J]. Bioresource Technology,2022,343:126123.

[8]Bilal M,Ahmad Qamar S,Yadav V,et al. Exploring the potential of ligninolytic armory for lignin valorization:a way forward for sustainable and cleaner production[J]. Journal of Cleaner Production,2021,326:129420.

[9]Suryadi H,Judono J J,Putri M R,et al. Biodelignification of lignocellulose using ligninolytic enzymes from white-rot fungi[J]. Heliyon,2022,8(2):e08865.

[10]Masran R,Zanirun Z,Bahrin E K,et al. Harnessing the potential of ligninolytic enzymes for lignocellulosic biomass pretreatment[J]. Applied Microbiology and Biotechnology,2016,100(12):5231-5246.

[11]Atiwesh G,Parrish C C,Banoub J,et al. Lignin degradation by microorganisms:a review[J]. Biotechnology Progress,2022,38(2):3226.

[12]薛正蓮,王 珊,孫俊峰,等. 鏈霉菌形態(tài)分化與次級代謝產(chǎn)物合成的研究進展[J]. 微生物學報,2021,61(12):3870-3886.

[13]Wang C M,Shyu C L,Ho S P,et al. Characterization of a novel thermophilic,cellulose-degrading bacterium Paenibacillus sp. strain B39[J]. Letters in Applied Microbiology,2008,47(1):46-53.

[14]Sijinamanoj V,Muthukumar T,Muthuraja R,et al. Ligninolytic valorization of agricultural residues by Aspergillus nomius and Trichoderma harzianum isolated from gut and comb of Odontotermes obesus (Termitidae)[J]. Chemosphere,2021,284:131384.

[15]Kamimura N,Sakamoto S,Mitsuda N,et al. Advances in microbial lignin degradation and its applications[J]. Current Opinion in Biotechnology,2019,56:179-186.

[16]付冰妍,孫向陽,余克非,等. 降解園林廢棄物專用固體復合菌的構(gòu)建及其堆肥效應研究[J]. 環(huán)境科學研究,2021,34(5):1231-1237.

[17]張仲卿,張愛忠,姜 寧. 混合真菌發(fā)酵對玉米秸稈纖維素與木質(zhì)素降解率的影響[J]. 動物營養(yǎng)學報,2019,31(3):1385-1395.

[18]Yang L,Yuan H L,Yang Y,et al. Enhanced lignin degradation in tobacco stalk composting with inoculation of white-rot fungi Trametes hirsuta and Pleurotus ostreatus[J]. Waste and Biomass Valorization,2020,11(7):3525-3535.

[19]崔堂武,袁 波,凌 晨,等. 木質(zhì)素降解酶的酶活測試方法的評價與分析[J]. 化工進展,2020,39(12):5189-5202.

[20]Puentes-Téllez P E,F(xiàn)alcao Salles J.Construction of effective minimal active microbial consortia for lignocellulose degradation[J]. Microbial Ecology,2018,76(2):419-429.

[21]李佩琪,孫慶培,王志慧,等. 棉稈固體發(fā)酵中木質(zhì)素降解與酶活性變化的關聯(lián)分析[J]. 新疆農(nóng)業(yè)科學,2023,60(6):1423-1432.

[22]韓月穎,張喜慶,曲云鵬,等. 一株低溫木質(zhì)素降解菌的篩選、產(chǎn)酶優(yōu)化及酶學性質(zhì)[J]. 微生物學通報,2021,48(10):3700-3713.

[23]王進軍,韋慧仙,鮑 飛,等. 土壤中木質(zhì)素降解菌株的篩選及產(chǎn)酶條件優(yōu)化[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學,2023,51(16):210-222.

[24]汪文強,李 勇,張旭輝,等. 煙管菌M-1對柑橘炭疽病菌的抑制作用及發(fā)酵條件優(yōu)化[J]. 中國生物防治學報,2018,34(3):423-430.

[25]Mathews S L,Grunden A M,Pawlak J. Degradation of lignocellulose and lignin by Paenibacillus glucanolyticus[J]. International Biodeterioration amp; Biodegradation,2016,110:79-86.

[26]Fang X X,Li Q M,Lin Y Q,et al. Screening of a microbial consortium for selective degradation of lignin from tree trimmings[J]. Bioresource Technology,2018,254:247-255.

[27]李 強,吳曉青,張新建. 微生物降解秸稈木質(zhì)素的研究進展[J]. 微生物學報,2023,63(11):4118-4132.

[28]Struszczyk-S'wita K,Droz·dz·yński P,Murawska K,et al. PUF-Immobilized Bjerkandera adusta DSM 3375 as a tool for bioremediation of creosote oil contaminated soil[J]. International Journal of Molecular Sciences,2022,23(20):12441.

[29]Wilhelm R C,Singh R,Eltis L D,et al. Bacterial contributions to delignification and lignocellulose degradation in forest soils with metagenomic and quantitative stable isotope probing[J]. The ISME Journal,2019,13(2):413-429.

[30]郭曉威,王秀然,解長睿,等. 木質(zhì)素降解菌株的分離及其降解玉米秸稈過程中產(chǎn)酶特點[J]. 微生物學報,2017,57(12):1806-1816.

[31]張 鑫,青格爾,高聚林,等. 玉米秸稈低溫降解復合菌的篩選及其菌種組成[J]. 農(nóng)業(yè)環(huán)境科學學報,2021,40(7):1565-1574.

[32]王新光,田 磊,王恩澤,等. 玉米秸稈高效降解微生物復合菌系的構(gòu)建及降解效果評價[J]. 生物技術(shù)通報,2022,38(4):217-229.

[33]梅新蘭,鄭海平,李水仙,等. 降解水稻秸稈細菌-真菌復合菌系的構(gòu)建與評價[J]. 農(nóng)業(yè)環(huán)境科學學報,2021,40(10):2217-2225.

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