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基于同位素稀釋液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜技術檢測血清25(OH)D3的候選參考測量程序的建立及性能評價

2024-01-30 01:31:28于洪遠李會強北京航天總醫(yī)院檢驗科北京00076天津醫(yī)科大學醫(yī)學檢驗學院天津30003
現(xiàn)代檢驗醫(yī)學雜志 2024年1期
關鍵詞:血清測量檢測

李 敏,于洪遠,李會強(.北京航天總醫(yī)院檢驗科,北京 00076;.天津醫(yī)科大學醫(yī)學檢驗學院,天津 30003)

維生素D(vitamin D,VD)屬于類固醇激素,在血液循環(huán)中的主要形式為25 羥維生素D[25 hydroxyvitamin D,25(OH)D]。目前檢測方法包括酶聯(lián)免疫法、放射免疫法、液相色譜法及液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法(liquid chromatography tandem mass spectrometry,LC-MS/MS)等[1]。LC-MS/MS 法檢測人血清25(OH)D 特異度高、抗干擾能力強,被公認為是檢測25(OH)D 的金標準[2]。國家衛(wèi)生健康委員會臨床檢驗中心開展的25(OH)D 室間質(zhì)評結(jié)果顯示,采用LC-MS/MS 法的實驗室間檢測結(jié)果仍存在較大差異。因此,想要實現(xiàn)血清25(OH)D 檢測的標準化就必須建立并完善參考方法。目前,檢驗醫(yī)學溯源聯(lián)合委員會(Joint Committee for Traceability in Laboratory Medicine,JCTLM)認可的25(OH)D 參考方法有3 種,分別為美國國家標準和技術研究院(National Institute of Standards and Technology,NIST)、美國疾病預防控制中心(Centers for Disease Control and Prevention,CDC)、比利時根特大學(Ghent University)建立的基于LC-MS/MS 的參考方法,但3 種參考方法存在樣本需求量大、色譜分離過程復雜、標準曲線需依據(jù)樣本預估濃度分別配制等問題,不便于臨床實驗室操作,故本研究擬在此基礎上建立25(OH)D3 的候選參考測量程序,為臨床檢測結(jié)果的可比性和準確性提供參考。

1 材料與方法

1.1 研究對象 收集北京航天總醫(yī)院2023年7月住院患者檢測剩余40 份血清作為比對標本。

納入標準:無慢性肝、腎、心等嚴重疾病,近期無感染性疾病史,近期無發(fā)熱史。所有標本均無溶血、乳糜和黃疸。所有研究對象的監(jiān)護人對檢測均知情同意,該研究已通過北京航天總醫(yī)院倫理委員會審查批準。

1.2 儀器與試劑 WatersTQD 串聯(lián)ACQUITYUPLC

液相色譜質(zhì)譜聯(lián)用儀(美國Waters 公司);Agela氮吹儀,XSE205DU 十萬分之一分析天平(德國梅特勒托利多公司);Eppendorf 移液器,高速冷凍離心機(德國Eppendorf 公司);MilliQ 超純水機。Ascentis Express F5 色譜柱(2.1mm×150 mm,2.7μm,美國Supelco 公司)。25(OH)D3 標準品(美國Sigma 公司),內(nèi)標品25(OH)D3-d3(Cambridge Isotope Laboratories 公司),甲醇、正己烷、無水乙醇(美國ThermoFisher 公司)。

1.3 方法

1.3.1 色譜和質(zhì)譜條件:流動相A 為0.1%甲酸水溶液,流動相B 為0.1%甲酸甲醇溶液,采用等度模式(73%的甲醇水)洗脫15min,流速為0.3ml/min,柱溫40℃,進樣體積10μl。采用電噴霧電離源正離子和多反應監(jiān)測模式分析。離子源溫度150℃,霧化氣溫度400℃,去簇電壓24V,碰撞能量10V。25(OH)D3 的定量離子對為401.3/365.3,25(OH)D3-d3 的定量離子對為404.3/368.2。

1.3.2 標準品和內(nèi)標的配制:采用稱重法分別制備出10μg/ml 的25(OH)D3 儲備液和內(nèi)標儲備液,用無水乙醇將儲備液進行稀釋,得到250ng/ml 的25(OH)D3 工作液和30ng/ml 內(nèi)標工作液。采用五點包括法繪制標準曲線,25(OH)D3 與內(nèi)標的質(zhì)量比分別為0.5,0.8,1.0,1.2,1.5。

1.3.3 樣本前處理:采用臨床常規(guī)質(zhì)譜方法測得血清樣本中25(OH)D3 的大致濃度,精確稱取血清樣本0.25~1g,加入純水1ml。加入內(nèi)標工作液使血清中25(OH)D3 和內(nèi)標含量比值接近1,渦旋混勻10min 后室溫下平衡1h。加入0.1g/ml 的Na2CO3溶液0.1ml,通過極端pH 值變化使結(jié)合蛋白釋放25(OH)D 代謝物。加入2.5ml 正己烷溶液進行萃取,離心后取上清液,氮氣吹干。為增加提取效率,重復液液萃取過程。加入200μl 73ml/dl 甲醇復溶,渦旋混勻后再次離心取150μl 上清液上機檢測。

1.3.4 方法學評價

1.3.4.1 正確度:采用測定國際臨床化學和檢驗醫(yī)學聯(lián)合會參考實驗室室外質(zhì)量評價計劃樣本(the International Federation of Clinical Chemistry and Laboratory Medicine External Quality Assessment Scheme for Reference Laboratories in Laboratory Medicine,RELA)對方法的正確度進行評價。采用本研究建立的方法測定2022 RELA 比對樣本,每個樣本測定3 個批次,每個批次每個濃度預處理3 次,重復測定5 次。

1.3.4.2 精密度:依據(jù)美國臨床實驗室標準化協(xié)會(the Clinical and Laboratory Standards Institute,CLSI)EP15-A3 文件[3],對低、中、高三個不同濃度的混合血清樣本進行檢測,每個批次每個濃度樣本分5 次進行處理,連續(xù)測定3 個批次,分別評估每個濃度樣本的批內(nèi)精密度及總精密度。

1.3.4.3 基質(zhì)效應:采用混合實驗的方法評估相對基質(zhì)效應。選擇血清基質(zhì)樣本、血清和溶液80∶20混合物、血清和溶液1∶1 混合物、血清和溶液20∶80 混合物、溶液基質(zhì)樣本這5 種基質(zhì)樣本中待測物與內(nèi)標的峰面積比值來計算相對基質(zhì)效應。若混合物中待測物與內(nèi)標峰面積比值與理論比值的偏差≤±20%,則視為無相對基質(zhì)效應。

1.3.4.4 檢測限及定量限:以平均信噪比(signalto-noise ratio,S/N)=3 時的濃度作為檢測限。用生理鹽水對已知濃度的血清樣本(18.42ng/ml)進行稀釋,制備出包括預期定量限濃度在內(nèi)的3 個濃度梯度的稀釋樣本,每個濃度的樣本分為5 份進行處理,每份樣本重復測定3 次,分別評估每個濃度樣本的變異系數(shù)(coefficient of variation,CV)及其濃度測定均值與理論值的偏差。將CV<10%且偏移<10%的濃度值作為定量下限。

1.3.4.5 攜帶污染:重復進樣定量下限濃度附近的樣本,交替進樣高濃度和低濃度樣本,比較第一次進樣的低濃度樣本的結(jié)果和后續(xù)進樣的低濃度樣本結(jié)果的差異。若差異低于20%,可認為該方法不存在明顯的攜帶污染。

1.3.4.6 線性范圍:參考美國臨床實驗室標準化研究所的EP-6A 文件,制備一份低濃度樣本(L,濃度為2.5ng/ml)和一份高濃度樣本(H,濃度為220ng/ml),其中高濃度樣本通過添加儲備液獲得。按L,0.8L+0.2H,0.6L+0.4H,0.4L+0.6H,0.2L+0.8H,H 的比例配制6 個濃度標本,將稀釋后樣本進行前處理后重復測定2 次,所有數(shù)據(jù)進行擬合多項式回歸分析。若r≥0.995 且各濃度點理論值和實測值之間的偏差<15%,則認為本方法在2.5~220ng/ml 范圍內(nèi)線性良好。

1.3.4.7 不確定度:依據(jù)不確定度評估指南,不確定度包括A 類和B 類不確定度。其中A 類主要為重復測量引入的分量,B 類包括標準物質(zhì)的純度、標準物質(zhì)稱量等引入的分量。將各分量計算合成不確定度,擴展因子為2,計算擴展不確定度。

1.3.4.8 方法學比對:采用候選參考測量程序和常規(guī)質(zhì)譜方法測定40 份新鮮冰凍人血清標本中的25(OH)D3,濃度范圍為2.6~71.6ng/ml,選取最佳擬合模型,計算回歸方程及各項參數(shù)并進行偏差分析。

1.4 統(tǒng)計學分析 采用MedCalc 統(tǒng)計學軟件和Microsoft Excel2003 進行統(tǒng)計分析,采用Passing-Bablok 線性回歸分析、Bland-Altman 一致性分析對方法比對結(jié)果進行分析。

2 結(jié)果

2.1 正確度 見表1。2022年RELA 樣本的測量偏倚均小于1.5%。

表1 2022年RELA 樣本的測量結(jié)果

2.2 精密度 見表2。采用該方法檢測混合血清中25(OH)D3 濃度,批內(nèi)和批間CV均小于2.5%。

表2 25(OH)D3 的批內(nèi)和批間精密度評價結(jié)果

2.3 基質(zhì)效應 血清和溶液80∶20 混合物、血清和溶液1∶1 混合物、血清和溶液20∶80 混合物這三種樣本的平均峰面積比分別為3.39,2.75,2.09,計算得到相對基質(zhì)效應分別為3.53%,3.48%,2.02%。

2.4 檢測限和定量下限 見表3。該方法的檢測限和定量下限分別為0.85ng/ml 和1.84ng/ml。

表3 25(OH)D3 定量下限結(jié)果(n=15)

2.5 攜帶污染 通過多次高值和低值樣本重復進樣,計算出攜帶污染率為-2.85%,可認為不存在明顯的攜帶污染。

2.6 線性范圍 采用最小二乘法進行線性擬合,擬合曲線的方程為Y=0.994X+0.471(r=0.999),各濃度點實測值與理論值的偏倚均小于10%,可認為本方法在2.5~220ng/ml 范圍內(nèi)線性良好。

2.7 不確定度 見表4。從樣本重復測量、標準品純度、標準品配制等方面評估2022RELA 樣本的測量不確定度。

表4 25(OH)D3 測量不確定度評定

2.8 方法學比對 以候選參考測量程序的測定結(jié)果為X軸,質(zhì)譜常規(guī)程序的測定結(jié)果為Y軸,對兩種方法進行Passing-Bablok 回歸分析,線性回歸方程為Y=1.025X-0.349,斜率的95% 可信區(qū)間為0.955~1.081,截距的95% 可信區(qū)間為-1.198~0.373,相關系數(shù)r=0.982。兩種方法檢測結(jié)果的平均偏差為1.3%。低濃度區(qū)偏差較大,有3 例樣本偏差超出衛(wèi)生健康委員會臨檢中心室間質(zhì)評規(guī)定的允許總誤差±25%,隨著樣本濃度上升,偏差降低,具體見圖1。

圖1 質(zhì)譜常規(guī)方法和候選參考方法血清25(OH)D3 檢測結(jié)果的Bland-Altman 圖

3 討論

目前,VD 不僅在骨骼方面,在糖尿病、心血管、腫瘤等方面都受到重視[4],因此VD 檢測需求也呈不斷增長趨勢。隨著技術的發(fā)展,LC-MS/MS 法被廣泛應用于生物樣本中VD 的檢測。盡管其有靈敏度高、特異度好等優(yōu)勢,但LC-MS/MS 法大多為實驗室自建方法,由于儀器、色譜柱、試劑、校準物等因素的影響,不同實驗室間檢測結(jié)果可比性差。標準化是確保在不同實驗室、不同儀器及時間內(nèi),獲得一致性結(jié)果的必要條件[5]。

同位素稀釋質(zhì)譜法是國際公認的一級測量原理[6],有靈敏度高,測量值能溯源至國際單位制物質(zhì)量的基本單位摩爾等優(yōu)點,在參考體系的建設中有著廣泛的應用。JCTLM 數(shù)據(jù)庫中已有3 種25(OH)D3 的參考測量程序,其中美國國家標準與技術研究院(National Institute of Standanrds and Techology,NIST)的方法[7]所需樣本量較大,每次需稱取樣本量2g 左右,萃取過程中正己烷-乙酸乙酯的體積約8ml。比利時根特大學[8]的方法采用二維色譜的模式,待測物提取后先經(jīng)Sephadex LH-20 分離,隨后依次經(jīng)過C4 和Zorbax SB-CN 色譜柱,整體分離過程較復雜。美國CDC 方法[9]所需樣本量適中,其校準曲線的配制取決于待測物中25(OH)D3 的濃度,若25(OH)D3 濃度≤75nmol/L,則校準曲線質(zhì)量比范圍在0.25~1.25 之間。若25(OH)D3 濃度>75nmol/L,質(zhì)量比范圍在0.5~2.5 之間。

本研究在滿足正確度及精密度等要求的前提下,對樣本前處理及校準曲線配制等各方面進行了優(yōu)化。首先樣本的加樣量控制在0.25~1g 之間,其次校準采用經(jīng)典的五點包括法,通過在測量體系中加入不同體積的樣本,使待測物和內(nèi)標的質(zhì)量比控制在0.5~ 1.5 之間[10],以標準與內(nèi)標的峰面積比值為縱坐標,標準與內(nèi)標的質(zhì)量比為橫坐標,用最小二乘法進行擬合。本文前處理采用重復液液萃取的方式。美國CDC 的研究顯示,支持性液體萃取雖然可以縮短前處理時間,但需要較高的試劑成本和更大體積的有機溶劑。張麗等[11]研究采用蛋白質(zhì)沉淀結(jié)合液液萃取制備樣品,用于替代重復使用液液萃取,即一次性加入1ml 0.1mol/L 的硫酸鋅甲醇水溶液和8ml 的正己烷,充分振蕩混勻30 min 后離心取上清液。盡管該方法在操作步驟上有所精簡,但后續(xù)振蕩混勻的時間延長,總體的樣本處理時間并沒有減少。25(OH)D3 的定量易受到同分異構體3-epi-25(OH)D3 的干擾,兩者結(jié)構上僅有一個羥基空間方向上的差異。雖然3-epi-25(OH)D3 主要存在于兒童體內(nèi),成人含量較低,但若無法區(qū)分,假性增高的結(jié)果會誤導臨床對維生素D 缺乏的患者進行正確的診斷[12]。液相條件采用等度洗脫15min 的模式,可有效分離25(OH)D3 的同分異構體3-epi-25(OH)D3。有研究表明[13-14],五氟苯基丙基色譜柱以五氟苯基丙基為鍵合基團,苯環(huán)上的氟原子可增強鍵合相與分析物之間的相互作用,在流動相甲醇的梯度作用下,8min 內(nèi)實現(xiàn)25(OH)D3 與3-epi-25(OH)D3 的分離。本文未對此進行驗證,將在后續(xù)實驗中進行補充研究。

采用候選參考測量程序和質(zhì)譜常規(guī)程序檢測40份血清標本,兩者結(jié)果的相關性較好(r=0.982),但低濃度樣本檢測結(jié)果的偏差較大。可能是由于常規(guī)方法采用經(jīng)典的校準曲線,檢測所有樣本的內(nèi)標濃度均不變,高濃度樣本區(qū)分析物和內(nèi)標的峰面積為低濃度區(qū)的幾十倍,影響結(jié)果的準確性。參考程序采用五點包括法進行校準,可有效避免該問題。不同實驗室間LC-MS/MS 檢測結(jié)果存在較大偏差。若要實現(xiàn)標準化,需從試劑、校準品等多方面進行規(guī)范,才能獲得高質(zhì)量并具有臨床價值的檢驗結(jié)果。

綜上所述,本研究建立的血清25(OH)D3 候選參考測量程序,滿足參考測量程序的性能要求,可用于25(OH)D3 的量值溯源和標準化,在后續(xù)臨床25(OH)D3 檢測質(zhì)量改善中發(fā)揮重要作用。

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