郭紅艷 徐亞茹 李耕慧 孫曉杰 趙正林 吳琦 劉波
(齊齊哈爾醫學院 1生化教研室,黑龍江 齊齊哈爾 161006;2附屬第一醫院檢驗科;3齊齊哈爾市第一醫院老年科;齊齊哈爾醫學院 4臨床生化教研室;5附屬第二醫院辦公室)
目前,胃癌占我國消化道腫瘤的第一位,對身體健康危害嚴重,且在我國的發病率呈逐年遞增的趨勢。近年來多項研究結果顯示,長鏈非編碼RNA(LncRNA)與胃癌的發生、發展密切相關〔1~3〕。Linc00673是2015年被鑒定的胰腺癌易感基因,參與非小細胞肺癌、肝癌、直腸癌和乳腺癌等多種腫瘤的侵襲轉移,在胃癌組織中的表達與該病的淋巴轉移、遠處轉移和TNM分期相關〔4〕,但其在胃癌中的生物學作用尚不完全清楚,對其作用機制也鮮有報道。本研究構建靶向敲降Linc00673重組慢病毒載體,并將其轉染至胃癌MGC-803細胞系,觀察Linc00673敲降后胃癌細胞增殖和凋亡等生物學行為的變化,并探討其作用的分子機制。
1.1主要材料與試劑 腎上皮細胞293T、胃癌細胞系MGC-803由本課題組凍存,慢病毒重組質粒Linc00673-sh1~3由上海捷瑞生物工程有限公司構建并測序鑒定,對照空載體質粒PSIH1和慢病毒包裝質粒pMD2.G、psPAX2由中國醫學科學院腫瘤醫院黃常志教授惠贈;DMEM、胎牛血清(FBS)和胰酶購自Gibco公司;嘌呤霉素、噻唑藍(MTT)和碘化丙啶(PI)購自Sigma-Aldrich公司;qPCR試劑盒購自Yeasen生物公司;細胞凋亡檢測試劑盒為北京四正柏公司產品;蛋白提取和含量測定試劑盒購自Beyotime生物公司,所用抗體均為Cst公司產品。
1.2方法
1.2.1qPCR檢測Linc00673敲降效率 分別用Linc00673-sh1~3慢病毒和對照空載體PSIH1慢病毒感染常規培養的MGC-803細胞,繼續培養48 h后用2 μg/ml嘌呤霉素篩選,獲得對照空載體和靶向敲降Linc00673的胃癌細胞系,0.25%的胰酶消化收集各組細胞,提取總RNA,逆轉錄后進行實時熒光定量PCR反應,檢測上述細胞系中Linc00673的表達(設GAPDH為內參)。引物由Invitrogen公司合成,Linc00673上游引物CTGCTCTTTGGCCTTGGATG,下游:ACGGATGGAGAAGAGGTCG-T;GAPDH上游引物:CCTGGTATGACA-ACGAATTTG,下游:CAGTGAGGGTCTCTCTCTTCC。反應條件:95 ℃預變性30 s;95 ℃變性10 s,60 ℃退火及延伸30 s,40次循環,3個復孔/樣品,2-ΔΔCt計算基因的相對表達量。
1.2.2MTT法檢測細胞增殖 將轉染Linc00673-sh1和PSIH1的MGC-803細胞分別接種于96孔板,每組6個復孔,每孔103個細胞,37 ℃、5%CO2、含10%FBS 的DMEM培養基常規培養,連續5 d,每24 h取一塊96孔板,棄培養液并用磷酸鹽緩沖液(PBS)清洗,加入110 μl MTT染液培養4 h,吸去上清液,每孔中加150 μl二甲基亞砜(DMSO),測定492 nm吸光度值,繪制細胞生長曲線。
1.2.3克隆形成實驗 分別將Linc00673-sh1和PSIH1組細胞制成單細胞懸液后進行細胞計數,以200個細胞/孔和500個細胞/孔將細胞分別分散均勻接種于6孔板中,常規培養3 w,經PBS清洗3次→甲醇固定→結晶紫染色,顯微鏡下進拍照并對細胞集落計數。
1.2.4細胞周期與凋亡檢測 Linc00673-sh1和PSIH1組細胞培養48 h,胰酶消化收集細胞,PBS洗3次,按試劑盒說明書操作,膜聯蛋白Ⅴ-異硫氰酸熒光素(Annexin V-FITC)/PI雙染檢測細胞凋亡,PI單染檢測細胞周期(BD FACSCalibur流式細胞儀,USA),細胞凋亡結果用CellQuest軟件分析,ModFit軟件分析細胞周期。
1.2.5qPCR檢測相關調控因子及microRNA表達 將細胞用胰酶消化收集后提取總RNA,熒光定量PCR試劑盒檢測細胞E-鈣黏蛋白(E-cadherin)、基質金屬蛋白酶(MMP)7、p19基因及miR-1254、miR-4491的表達水平,mRNA檢測以GAPDH為內參,microRNA檢測以U6為內參(試劑盒自帶),反應條件同前,各基因引物序列如下:E-cadherin上游引物:5′-CGAGAGCTACACGTTCACGG-3′、下游:5′-GGGTGTCGAGGGAAAAATAGG-3′,p19上游引物:5′-AACCGCTTCGGCAAGAC-3′、下游:5′-ACTGGA-CTGGTACCGGAGGT-3′,MMP7上游引物:5′-AGTGGTCACCTACAGGATCG-3′、下游:5′-GGGATCTCTT-TGCCCCACAT-3′,GAPDH上游引物:5′-CCTGGTATGACAACGAATTTG-3′、下游:5′-CAGTGAGGGTC-TCTCTCTTCC-3′,miR-1254上游引物:5′-AGCCTGGAAGCTGGAGCCTG-3′,miR-4491上游引物:5′-AATGTGGACTGGTGTGACCAAA-3′。
1.2.6Western印跡實驗 提取Linc00673-sh1和PSIH1組細胞總蛋白,測定蛋白濃度,蛋白樣品進行十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)并轉膜,5%脫脂奶粉常溫封閉2 h,TBST洗聚偏氟乙烯(PVDF)膜后用1∶1 000稀釋的一抗〔B細胞淋巴瘤基因(Bcl)-2、磷酸化-蛋白激酶B(p-Akt)、核因子(NF)-κB、Zeste增強子同源物(EZH)2、β-catenin和GAPDH〕4 ℃孵育過夜,加二抗(1∶5 000)37 ℃孵育1 h,電化學發光(ECL)顯色,凝膠成像處理系統成像。
1.3統計學處理 采用SPSS21.0軟件進行Dunnett-t檢驗和Studentt檢驗。
2.1實時熒光定量PCR方法鑒定MGC-803細胞中Linc00673的表達 將重組慢病毒轉染MGC-803細胞后,Linc00673-sh1、Linc00673-sh2、Linc00673-sh3組細胞Linc00673相對表達量(0.297±0.021、0.306±0.008、0.403±0.010)均明顯低于PSIH1組(1.008±0.153,均P<0.01),其中Linc00673-sh1敲降效果最為顯著。
2.2Linc00673敲降抑制MGC-803細胞生長 與PSIH1組相比,Linc00673-sh1組細胞增殖速度減慢,細胞生長的第2~5天,Linc00673-sh1組A492均明顯低于PSIH1組(P<0.01)。見表1。

表1 各組細胞生長A492比較
2.3Linc00673敲降抑制MGC-803細胞克隆增殖 在孔板中分別接種200和500個細胞/孔,培養21 d后可見,轉染Linc00673-sh1組的胃癌細胞集落數量明顯少于PSIH1組(P<0.05,P<0.01)。見表2、圖1。

圖1 靶向敲降Linc00673抑制細胞增殖(結晶紫染色)

表2 各組細胞集落形成數比較
2.4靶向敲降Linc00673對MGC-803細胞周期的影響 靶向敲降Linc00673后的MGC-803細胞較PSIH1組細胞G0/G1期、S期比例無明顯變化,而G2/M期細胞占比明顯高于PSIH1組(P<0.01)。見表3。

表3 Linc00673敲降對MGC-803細胞周期的影響
2.5Linc00673敲降對相關調控因子及microRNA表達的影響 Linc00673敲降后較PSIH1組細胞E-cadherin和p19表達量均明顯增加、MMP7表達明顯降低,而miR-1254和miR-4491表達量明顯增加(P<0.05,P<0.01)。見表4。

表4 Linc00673敲降對MGC-803細胞相關調節因子、microRNA表達、細胞增殖相關蛋白及PI3K/Akt信號通路關鍵因子的影響
2.6Linc00673敲降影響細胞增殖與凋亡的機制 Linc00673敲降后的胃癌細胞中PI3K/Akt信號通路相關因子p-Akt、NF-κB和Bcl-2及增殖相關蛋白β-catenin和EZH2表達較PSIH1組明顯降低(P<0.01,P<0.001)。見表4、圖2。

圖2 Western印跡檢測各組細胞增殖相關蛋白及PI3K/Akt信號通路關鍵因子
2.7Linc00673敲降對MGC-803細胞凋亡的影響 PSIH1組細胞晚期凋亡(UR)率和總凋亡(LR+UR)率分別為(7.34±0.76)%和(9.93±0.70)%,而Linc00673-sh1組明顯增加〔(14.39±1.83)%和(15.74±2.06)%,P<0.01〕。見圖3。

圖3 流式細胞術檢測胃癌MGC-803細胞凋亡
胃癌是發病率和死亡率均較高的一種惡性腫瘤,早發現、早治療對降低該病死亡率十分重要〔5〕,盡管近年來胃癌的診斷和治療方面有了顯著的改善,但目前仍缺乏有效的診斷生物標志物。因此,闡明胃癌的分子機制、提高該病診斷水平并有針對性的分子治療十分必要。
Linc00673定位于人染色體17q24.3,其序列包含一個與類固醇受體RNA激活劑(SRA)1非常相似的保守區域,因此也被稱為“SRA樣非編碼RNA”(SLNCR)Linc00673被鑒定在包括GC在內的多種惡性腫瘤的發生中起作用〔6~8〕,其表達與癌癥患者臨床預后的關系表明,其表達水平可作為一個潛在的預后指標。本研究結果可見,Linc00673敲降對GC的發展起到一定的抑制作用。
越來越多的研究表明,LncRNA 是細胞內信號通路的重要介質,也是調控基因表達的重要分子,參與調節mRNA的穩定和轉運及microRNA的海綿作用〔9,10〕。LncRNA 與microRNA相互作用調控基因表達是其發揮作用的主要途徑。
本研究結果顯示,靶向敲降Linc00673后胃癌細胞中PI3K下游分子p-Akt及分別具有促進增殖和抑制凋亡作用的NF-κB、Bcl-2表達均降低,這些基因表達的改變影響PI3K/Akt信號通路活性,從而促進細胞凋亡抑制細胞增殖。因此,Linc00673敲降后通過調節PI3K/Akt信號通路對MGC-803細胞生物學行為產生的一系列影響有可能是其發揮作用的機制之一。
此外,靶向敲降Linc00673后,細胞增殖相關蛋白β-catenin和EZH2的表達量也有所降低,而前者參與Wnt信號通路,眾所周知,細胞信號傳導網絡交錯復雜,有研究者提出〔11〕,Linc00673還參與SRC-EPK、Wnt、p53和EMT相關信號通路觀點,Linc00673作為一種新發現的非編碼RNA,其上游調控和下游信號轉導的確切機制有待系統研究和深入研究,以促進其臨床應用。
盡管目前已經明確Linc00673參與了腫瘤進程的調控,但其是否參與其他疾病的發病,其發揮作用是否與外泌體相關?目前還沒有研究者對這些問題進行研究探討,其是否可以作為胃癌的診斷、治療、預后甚至是治療的分子靶標仍有待進一步研究。