廉藝童 劉志敏 聶輔嬌 胡卓瑜 付美林 胡齊 江婕妤 陳向東



〔摘要〕 目的 觀察益肝明目湯對糖尿病視網膜水腫模型大鼠NOD樣受體熱蛋白結構域相關蛋白3(NOD-like receptor thermal protein domain associated protein 3, NLRP3)/半胱氨酸天冬氨酸特異性蛋白酶-1(cysteine aspartate-specific proteinase-1, Caspase-1)信號通路的影響,從細胞焦亡的角度探討其治療糖尿病視網膜水腫的作用機制。方法 將36只SD大鼠隨機分為空白組(6只)和造模組(30只)。采用一次性腹腔注射40 mg/kg鏈脲佐菌素(streptozocin, STZ)溶液聯合高糖高脂飼料喂養建立糖尿病視網膜水腫大鼠模型。將成模大鼠隨機分為模型組,安多明組,低、中、高劑量組,每組6只,分別予以蒸餾水、羥苯磺酸鈣膠囊(0.09 g/kg)、益肝明目湯(2.8、5.6、11.2 g/kg)進行灌胃,每日2次,連續4周。觀察大鼠一般生物學特征,監測不同時期血糖、體質量變化;采用眼底熒光血管造影(fundus fluorescence angiography, FFA)和光學相關斷層掃描技術(optical correlation tomography, OCT)觀測各階段視網膜血管滲漏及視網膜厚度的變化;HE染色檢測視網膜組織病理變化;免疫組化法檢測視網膜組織NLRP3與銜接蛋白(apoptosis-associated speck-like protein, ASC)表達水平;Western blot檢測視網膜組織Caspase-1與NLRP3表達水平;ELISA檢測血清炎癥因子白細胞介素-1β(interleukin-1β, IL-1β)和白細胞介素-18(interleukin-18, IL-18)含量。結果 與空白組比較,模型組大鼠一般生物學特征出現較明顯的改變;血糖顯著升高(P<0.01);體質量顯著降低(P<0.01);視網膜厚度增加(P<0.01);FFA可見視網膜血管走行迂曲,散在微血管瘤及少許點狀強熒光;病理形態見各層細胞排列紊亂、稀疏,內叢狀層、內外核層松散,結構紊亂,視網膜厚度增加;視網膜組織中NLRP3、ASC、Caspase-1蛋白表達及炎癥因子IL-1β、IL-18含量顯著升高(P<0.01)。與模型組比較,中劑量組、高劑量組大鼠血糖均降低(P<0.05);安多明組、低劑量組、中劑量組、高劑量組大鼠體質量均升高(P<0.01);各給藥組大鼠視網膜厚度呈不同程度減少(P<0.01);FFA見微血管瘤及點狀強熒光減少;病理形態見視網膜各層結構基本完整,排列規整,厚度減少;視網膜組織中NLRP3、ASC、Caspase-1蛋白表達及炎癥因子IL-1β、IL-18含量顯著降低(P<0.01,P<0.05)。結論 以疏肝健脾、活血利水為治法的益肝明目湯可能通過干預NLRP3/Caspase-1介導的細胞焦亡,進而減輕炎癥因子的釋放,減輕視網膜水腫,從而改善視網膜功能。
〔關鍵詞〕 益肝明目湯;糖尿病視網膜病變;視網膜水腫;細胞焦亡;NLRP3/Caspase-1信號通路
〔中圖分類號〕R285.5 ? ? ? 〔文獻標志碼〕A ? ? ? ?〔文章編號〕doi:10.3969/j.issn.1674-070X.2023.03.009
Effects of Yigan Mingmu Decoction on the NLRP3/Caspase-1 signaling
pathway in rats model with diabetic retinal edema
LIAN Yitong1,2, LIU Zhimin1, NIE Fujiao1, HU Zhuoyu1,2, FU Meilin1, HU Qi1,2, JIANG Jieyu1,2, CHEN Xiangdong1*
1. The First Hospital of Hunan University of Chinese Medicine, Changsha, Hunan 410007, China;
2. Hunan University of Chinese Medicine, Changsha, Hunan 410208, China
〔Abstract〕 Objective To investigate the effects of Yigan Mingmu Decoction on the NOD-like receptor thermal protein domain associated protein 3 (NLRP3)/cysteine aspartate-specific proteinase-1 (Caspase-1) signaling pathway in rats with diabetic retinal edema, and to explore the mechanism of action in the treatment of diabetic retinal edema from the perspective of pyroptosis. Methods A total of 36 SD rats were randomly divided into blank group (n=6) and model group (n=30). The one-time intraperitoneal injection of 40 mg/kg streptozocin (STZ) solution combined with high-sugar and high-fat feed was applied to establish the rat model of diabetic retinal edema. Then the above models were divided into model groups, andomine group, low-dose, medium-dose and high-dose Yigan Mingmu Decoction groups, with 6 rats in each group. All the rats were treated with distilled water, calcium hydroxybenzenesulfonate granules (0.09 g/kg), and Yigan Mingmu Decoction (2.8, 5.6, 11.2 g/kg) respectively, twice a day in 4 consecutive weeks. The general biological characteristics of rats were observed; the changes in blood sugar and body weight in different periods were monitored; the retinal vascular leakage and retinal thickness changes at various stages were found using fundus fluorescence angiography (FFA) and optical correlation tomography (OCT); the renal tissue pathological morphology was detected by HE staining; the expression of NLRP3 and apoptosis-associated speck-like protein (ASC) in retinal tissue was detected by immunohistochemistry; the expression of Caspase-1 and NLRP3 in retinal tissues was detected by Western blot; the content of serum inflammatory factors interleukin-1β (IL-1β) and interleukin-18 (IL-18) was detected by ELISA. Results Compared with blank group, the general biological characteristics of rats in model group were significantly changed, blood glucose increased significantly (P<0.01), body weight decreased significantly (P<0.01), and retinal thickness increased (P<0.01). FFA showed that the retinal blood vessels were tortuous, scattered with microangiomas and a few punctate strong fluorescence points. Pathological morphology showed disordered and sparse arrangement of cells in each layer, loose inner plexiform layer, inner and outer nuclear layers, disordered structure, and increased retinal thickness. The protein expression of NLRP3, ASC, Caspase-1 and the inflammatory factors of IL-1β, IL-18 significantly increased (P<0.01). Compared with model group, blood glucose in medium-dose group and high-dose group decreased (P<0.05). The body weight of andomine group, low-dose group, medium-dose group and high-dose group was higher than that of model group; the retinal thickness of the rats in each administration group was reduced to varying degrees, and FFA showed that the microvascular tumors and punctate strong fluorescence were reduced. Pathological morphology showed that the structure of each layer of retina was basically intact, regular arranged, and the thickness was reduced. The protein expression of NrLRP3, ASC, and Caspase-1 and the inflammatory factors of IL-1β, IL-18 in retinal tissue were significantly lower (P<0.01, P<0.05). Conclusion Yigan Mingmu Decoction soothes the liver and fortifies the spleen, activate blood and drain water retention. It may intervene the NLRP3/Caspase-1 mediated pyroptosis, release less inflammatory factors, and relieve the retinal edema and thus improve retinal function.
〔Keywords〕 Yigan Mingmu Decoction; diabetic retinopathy; retinal edema; pyrolysis; NLRP3/Caspase-1 signaling pathway
糖尿病黃斑水腫(diabetic macular edema, DME)是糖尿病視網膜病變(diabetic retinopathy, DR)最為常見的并發癥,可發生在DR的任一時期,是糖尿病患者視力損害的重要原因之一,其主要病理特點是黃斑區積液、彌漫性毛細血管滲漏、毛細血管擴張、黃斑區滲漏等[1],嚴重影響患者的生活質量。DME發病機制復雜,炎癥反應貫穿疾病全程,研究表明,高血糖可通過細胞焦亡或自噬等生物過程引起炎性反應,從而導致血管和視網膜組織損傷[2],最終導致DME發生。細胞焦亡典型通路以NOD樣受體熱蛋白結構域相關蛋白3(NOD-like receptor thermal protein domain associated protein 3, NLRP3)炎癥小體活化、半胱氨酸天冬氨酸特異性蛋白酶-1(cysteine aspartate-specific proteinase-1, Caspase-1)激活、白細胞介素-1β(interleukin-1β, IL-1β)和白細胞介素-18(interleukin-18, IL-18)的釋放為特征[3],其過度活化會加重炎癥反應,炎癥因子浸潤會導致DR進一步加劇,進而加重視網膜水腫,影響視網膜功能[4-6]。目前,玻璃體內注射抗血管內皮生長因子(vascular endothelial growth factor, VEGF)為臨床一線治療方法,在抑制視網膜新生血管生長,減輕黃斑水腫等方面取得較好臨床效果[7],但因藥效時間短,注射費用昂貴,需反復多次注射,會引起白內障、頑固性眼壓高、葡萄膜炎、視網膜脫離等局部并發癥,也可能因全身吸收引起不良反應,尚有許多無效病例[8]。因此,探究安全有效的DME中醫藥治療方法具有重要的意義。本團隊前期研究發現,益肝明目湯在改善DME患者視力、增加水腫吸收、提高遠期療效等方面具有明顯優勢[9-10]。為進一步驗證其療效機制,本實驗以細胞焦亡經典通路NLRP3/Caspase-1為切入點,探討益肝明目湯對糖尿病視網膜水腫模型大鼠的作用機制,以期為臨床應用提供依據。
1 材料與方法
1.1 ?動物
SPF級雄性SD大鼠36只,鼠齡8周,體質量200~220 g,由湖南斯萊克景達實驗動物有限公司提供,動物生產許可證號:SCXK(湘)2019-0004,動物使用許可證號:SYXK(湘)2020-0008。飼養于湖南省中醫藥研究院中藥研究所,溫度24~26 ℃,濕度50%~70%,通風良好,晝夜交替。依照實驗動物中心管理辦法,分籠、標準飼料喂養,適應性飼養1周后進入實驗階段。實驗經湖南省中醫藥研究院實驗倫理委員會批準(2020-0062)。
1.2 ?藥物
益肝明目湯中藥超微顆粒劑組方:柴胡10 g(批號:2015020C),當歸10 g(批號:2106029C),白芍10 g(批號:2105009S),川芎10 g(批號:2102028C),丹參15 g(批號:2017003C),茯苓15 g(批號:2102007C),車前子10 g(批號:2102110C),密蒙花10 g(批號:2102005C),蒺藜10 g(批號:2107005C),澤瀉10 g(批號:2104010C),茺蔚子10 g(批號:2103009C),決明子15 g(批號:2105020C),中藥超微配方顆粒均購自湖南春光九匯現代中藥有限公司,將中藥超微顆粒劑溶于蒸餾水。羥苯磺酸鈣膠囊(安多明)(貴州天安藥業股份有限公司,規格0.25 g/粒,批號:14201658642)。
1.3 ?主要試劑
鏈脲佐菌素(streptozocin,STZ)(美國Sigma公司,批號:08E221108);蘇木素、PBS、伊紅(長沙維世爾生物科技有限公司,批號:02A221224、01A221001、05F221211);檸檬酸、檸檬酸鈉(上海展云化工有限公司,批號:01B221210、03A221023);復方托吡卡胺滴眼液(沈陽興齊眼藥股份有限公司,批號:14200221221);熒光素鈉(廣州白云山明興制藥有限公司,批號:XY19118);NLRP3抗體、ASC抗體、β-actin抗體、HRP goat anti-mouse IgG、HRP goat anti-rabbit IgG(中國武漢三鷹生物技術有限公司,批號:00091876、20000132、10004156、20000242、20000243);Caspase-1抗體[艾博抗(上海)貿易有限公司,批號:GR2126147-6];IL-18試劑盒、IL-1β試劑盒(上海酶聯生物科技有限公司,批號:200116、200503)。
1.4 ?主要儀器
眼底血管熒光造影儀、光學相干斷層掃描儀(德國海德堡公司,型號:Spec-CAM-07973-S1600、Spec-CAM-05529-S2000);臺式高速冷凍離心機(湖南湘儀實驗室儀器開發有限公司,型號:H1650R);全自動酶標洗板機、多功能酶標分析儀(深圳市匯松科技發展有限公司,型號:PW-812、MB-530);電熱恒溫培養箱(北京市永光明醫療儀器有限公司,型號:DHP-500);電泳儀、電泳槽、轉膜儀(中國北京六一生物科技有限公司,型號:DYY-6C、DYCZ-24DN、DYCZ-40D)。
1.5 ?造模、分組及給藥
36只SD大鼠適應性喂養1周,空腹12~14 h后稱重編號,隨機分為空白組(6只)、造模組(30只)??瞻捉M大鼠給予普通飼料喂養。造模組大鼠給予高糖高脂飼料喂養,2周后禁食12~15 h,自由飲水,配制0.1 mmol/L新鮮檸檬酸緩沖液(pH 4.2),制備1% STZ溶液,按照40 mg/kg一次性腹腔注射[11],在30 min內完成注射,防止STZ溶液失效,注射完成后恢復飲食。72 h后隨機血糖水平達到16.7 mmol/L及以上的大鼠,認為糖尿病大鼠模型建立成功,不達標或短期內血糖降低的大鼠,可同法腹腔注射小劑量(30 mg/kg)造模,至血糖達標[12]。將造模成功的30只大鼠隨機分為模型組、安多明組、低劑量組、中劑量組、高劑量組,按“人-動物體表面積等效劑量比值表”折算[13],以臨床等效劑量為中劑量,即低劑量組、中劑量組、高劑量組每日分別以濃度為2.8、5.6、11.2 g/kg的益肝明目湯灌胃,安多明組按說明書配制等效劑量0.09 g/kg灌胃,空白組和模型組均予蒸餾水16 mL/(kg·d)灌胃。各組每日灌胃2次,干預4周。實驗過程中出現死亡的大鼠予以剔除并根據要求進行補充。
1.6 ?一般生物學特征
觀察SD大鼠在不同時期的體格、毛發、進食、飲水、大小便等行為學特征及空白組與造模組大鼠的生物學差異,觀察并評價其晶狀體混濁程度是否隨病情進展發生代謝性白內障。
1.7 ?血糖、體質量水平
分別在造模前,造模后第1、4、8周(灌胃前),灌胃4周后測量記錄所有大鼠的血糖及體質量。
1.8 ?OCT視網膜厚度
分別在造模前,造模后第4、8周(灌胃前),灌胃4周后使用OCT測量大鼠視網膜厚度,腹腔注射10%水合氯醛30 mg/kg進行麻醉,雙眼滴用復方托吡卡胺滴眼液擴瞳,固定鼠眼,雙眼行OCT檢查并手動測量距離視盤上方、下方、顳側、鼻側2個視盤直徑的視網膜厚度,即視網膜內界膜至視網膜色素上皮高反射層[14]。
1.9 ?眼底熒光造影檢查
分別在造模后第4、8周及灌胃4周后行眼底熒光血管造影(fundus fluorescence angiography, FFA)檢查,檢查時大鼠腹腔內注射質量分數20%的熒光素鈉(0.012 mL/g),并快速觀察及拍攝視網膜血管情況,觀察血管充盈狀態及有無熒光滲漏、灌注區等。
1.10 ?HE染色
麻醉成功后離斷視神經,摘除大鼠眼球,置入眼球固定液中,進行石蠟包埋、切片、脫蠟、HE染色、中性樹膠封片、顯微鏡觀察。
1.11 ?ELISA檢測
腹主動脈取血,室溫自然凝固15 min,3000 r/min離心20 min(離心半徑15 cm),取上清液,按照ELISA試劑盒步驟檢測大鼠視網膜組織IL-1β、IL-18含量。
1.12 ?免疫組化檢測
視網膜組織石蠟包埋,切片常規脫蠟脫水,熱修復抗原、漂洗、封閉;孵育一抗:滴加適當稀釋的一抗(NLRP3、ASC),4 ℃過夜。PBS漂洗;孵育二抗:滴加50~100 μL HRP goat anti-rabbit IgG于37 ℃孵育30 min,PBS沖洗5 min×3次;DAB顯色,蘇木素復染,PBS返藍;各級乙醇(60%~100%)脫水,每級5 min。二甲苯透明,中性樹膠封片、顯微鏡拍片采像,并使用圖片分析軟件IPP(Image-Pro-Plus)進行數據分析,分別計算NLRP3、ASC陽性表達的平均光密度值(IOD)。
1.13 ?Western blot檢測
取視網膜組織用冰預冷,PBS洗滌組織,加入100 μL RIPA裂解液于生物樣品均質儀中反復研磨組織,直至組織塊溶解;離心,取上清液,BCA法測定蛋白濃度,各組取80 μL蛋白上清,凝膠電泳,轉膜,5%脫脂牛奶室溫封閉1.5 h;加入NLRP3(1∶300)、Caspase-1(1∶1000)、β-actin(1∶5000)一抗,4 ℃孵育過夜;PBST洗3次,每次10 min;加入HRP goat anti-mouse IgG(1∶5000)、HRP goat anti-rabbit IgG(1∶6000)二抗,室溫孵育1.5 h,PBST洗3次,每次10 min,ECL顯色曝光,采用Image J軟件對蛋白條帶進行灰度分析,以目的蛋白與β-actin灰度值的比值表示蛋白相對表達量。
1.14 ?統計學方法
采用SPSS 25.0系統軟件處理。實驗數據以“x±s”表示,多組間比較采用方差分析(LSD法及Dunnet 法),不滿足正態性時,則用非參數檢驗。P<0.05為差異有統計學意義。
2 結果
2.1 ?益肝明目湯對模型大鼠一般情況的影響
空白組精神狀態及活動度良好,反應靈敏,毛發光澤,晶狀體無渾濁,飲水量及攝食量適中,二便正常,體質量進行性增加,籠內墊料干燥;模型組大鼠精神狀態不佳,體形消瘦,反應遲鈍,情緒暴躁,毛發萎黃易脫,部分晶狀體渾濁,飲水、攝食量、尿量明顯增加,多尿,籠內墊料潮濕,部分伴有爛蘋果味,給藥組精神不佳、毛發枯黃、多飲、多尿、多食等情況均有所改善。
2.2 ?益肝明目湯對模型大鼠血糖、體質量的影響
造模前,各組大鼠血糖、體質量差異均無統計學意義(P>0.05);造模后,模型組、安多明組、低劑量組、中劑量組、高劑量組大鼠血糖均顯著升高,并趨于穩定,與空白組對比差異具有統計學意義(P<0.01);灌胃4周后,與模型組對比,中劑量組、高劑量組大鼠血糖均降低(P<0.05)。造模前、造模后1周,各組大鼠體質量差異無統計學意義(P>0.05);造模后4、8周及灌胃4周后空白組大鼠體質量持續增加,高于其余各組(P<0.01);灌胃4周后,與模型組對比,安多明組、低劑量組、中劑量組、高劑量組大鼠體質量均升高(P<0.01)。詳見圖1。
2.3 ?益肝明目湯對模型大鼠視網膜形態變化的影響
灌胃4周后,空白組大鼠眼底清晰,視網膜血管走行規律,粗細均勻,以視盤為中心呈放射狀;模型組大鼠眼底較空白組模糊,可見視網膜血管走行迂曲,見散在微血管瘤及少許點狀強熒光;安多明組、中劑量組大鼠眼底可見微血管瘤及點狀熒光數量減少;低劑量組、高劑量組仍可見散在點狀熒光。詳見圖2。
2.4 ?益肝明目湯對模型大鼠視網膜厚度的影響
造模前、造模后4周,各組大鼠視網膜厚度差異無統計學意義(P>0.05);造模后8周,與空白組對比,模型組、安多明組、低劑量組、中劑量組、高劑量組大鼠視網膜厚度均有不同程度的增加(P<0.01);灌胃后4周,與模型組對比,安多明組、低劑量組、中劑量組、高劑量組大鼠視網膜厚度均有不同程度的減少(P<0.01)。詳見圖3。
2.5 ?益肝明目湯對模型大鼠視網膜組織病理形態的影響
空白組大鼠視網膜組織各層結構完整,界限清晰,排列整齊;模型組大鼠視網膜可見各層細胞排列紊亂稀疏,視網膜色素上皮層變薄,內叢狀層、內外核層松散,結構紊亂,視網膜厚度增加;與模型組比較,安多明組、低劑量組、中劑量組、高劑量組大鼠視網膜各層結構基本完整,排列規整,厚度減少。詳見圖4。
2.6 ?益肝明目湯對模型大鼠血清中炎癥因子IL-1β、IL-18含量的影響
與空白組比較,模型組大鼠血清中IL-1β、IL-18含量顯著升高(P<0.01);與模型組比較,安多明組、低劑量組、中劑量組、高劑量組大鼠視網膜組織IL-1β、IL-18含量均有不同程度的降低(P<0.01)。詳見圖5。
2.7 ?益肝明目湯對模型大鼠視網膜組織NLRP3、ASC蛋白表達的影響
與空白組比較,模型組大鼠視網膜組織NLRP3、ASC表達顯著升高(P<0.01);與模型組比較,安多明組、低劑量、中劑量及高劑量組大鼠視網膜組織NLRP3、ASC表達明顯降低(P<0.01)。詳見圖6—7。
2.8 ?益肝明目湯對模型大鼠視網膜組織NLRP3、Caspase-1蛋白表達的影響
與空白組比較,模型組大鼠視網膜組織NLRP3、Caspase-1表達顯著升高(P<0.01);與模型組比較,安多明組、低劑量組、中劑量組、高劑量組大鼠視網膜組織NLRP3、Caspase-1表達明顯降低(P<0.05,P<0.01)。詳見圖8。
3 討論
根據DME臨床癥狀將其歸屬于中醫學“消渴目病”“視瞻昏渺”“視直如曲”等范疇。《素問·陰陽應象大論》云“脾在色為黃”,故五輪學說中黃斑歸屬于脾;消渴日久,耗傷氣血陰液,肝失所養,肝開竅于目,肝血不足,目失濡養而不能視,引發目疾;《素問·氣交變大論》曰“歲木太過,風氣流行,脾土受邪”,肝病日久,疏泄失常,肝氣郁結,肝木乘脾土,脾失健運,水濕內停不化,上犯目竅,導致黃斑區水腫、滲出,故DME與肝、脾兩臟密切相關。陳向東教授基于“血水同治”理論,在四物湯的基礎上,創立以疏肝健脾、活血利水為治法的中藥湯劑益肝明目湯,該方由柴胡、當歸、白芍、川芎、丹參、密蒙花、茯苓、澤瀉、車前子、蒺藜、茺蔚子、決明子組成。柴胡疏肝解郁、疏暢氣機為君;密蒙花養肝明目,蒺藜平肝明目、疏肝解郁,車前子明目、利水滲濕,決明子清肝明目,四藥共助君藥以達益肝明目之效;當歸、白芍養血柔肝、健脾調肝為臣;茺蔚子、川芎活血行氣,丹參活血祛瘀,茯苓、澤瀉利水滲濕,共為佐藥;方中川芎為血中之氣藥,協諸藥上行直達病所。諸藥合用,共奏疏肝健脾、活血利水之功。臨床研究發現,益肝明目湯能有效減輕視網膜水腫,改善患者視力,具有遠期療效穩定的優勢[9-10]。現代藥理研究表明,柴胡-白芍合用可協同抗炎[15-16],且柴胡皂苷能減輕DR大鼠視網膜微血管炎癥及通透性[17];當歸具有刺激胰島素分泌、降糖、抗炎的作用[18],可抑制VEGF及新生血管的生成[19];丹參提取物具有抗炎、抗氧化作用[20],可抑制人視網膜血管內皮細胞凋亡及新生血管的形成[21];密蒙花能抗VEGF、抑制視網膜神經節細胞凋亡及新生血管生成[22];川芎、澤瀉能抗炎[23-24];茯苓、車前子、決明子可降糖、抗炎[25-27];蒺藜具有保護視網膜、視神經的作用[28];茺蔚子可抗炎、抗氧化、保護神經[29]。本研究FFA結果顯示,模型組大鼠眼底模糊,視網膜血管走行迂曲,有散在微血管瘤及少許點狀強熒光;HE染色見模型組大鼠視網膜各層細胞排列紊亂稀疏,視網膜色素上皮層變薄,內叢狀層、內核層、外核層松散,結構紊亂,視網膜厚度增加。經藥物干預后各組大鼠血糖、體質量、視網膜水腫、視網膜各層組織結構均有所改善,提示益肝明目湯能降低DME大鼠血糖、穩定體質量、減輕視網膜病理損傷及水腫,與臨床研究結果相似[9-10]。
細胞焦亡又稱細胞炎性壞死,其特征為炎性 Caspase激活導致細胞膜成孔、透化,細胞腫脹,直至胞膜破裂,最終導致細胞內容物釋放,繼而引起強烈的炎癥反應[30]。DME的發生、發展伴隨著高血糖及慢性炎癥,在高血糖及炎癥刺激下,NOD樣蛋白受體被激活,如NLRP1、NLRP3等,通過ASC,與募集而來的Caspase-1前體結合形成NLRP3炎性復合物,進而活化Caspsae-1[31-32],有活性的Caspase-1 可對執行蛋白GSDMD的N端和C端結構域進行切割,活化的N-結構域可促進細胞膜形成親水性孔道,導致細胞膨脹裂解,釋放出IL-1β和IL-18,進而吸引更多的炎性細胞,加重炎癥反應,導致組織水腫[33-34]。研究證實,糖尿病大鼠視網膜中NLRP3、ASC、Caspase-1蛋白及其下游成熟分子IL-1β、IL-18的表達增加[35-37],DR患者的玻璃體及手術切除的增殖膜中NLRP3、Caspase-1、IL-18也呈高表達[38],且水平高低與DR進展程度呈正相關[39],證實了NLRP3炎癥小體激活誘發的炎癥反應在DR及DME發展進程中的重要作用。本研究發現,模型組大鼠視網膜組織NLRP3、ASC、Caspase-1蛋白及血清炎癥因子IL-1β、IL-18表達水平均顯著升高,表明糖尿病視網膜水腫大鼠視網膜組織存在細胞焦亡;與模型組比較,各干預組均能在不同程度上抑制NLRP3、ASC、Caspase-1蛋白表達,減少血清炎癥因子IL-1β、IL-18釋放,表明益肝明目湯可通過抑制NLRP3、ASC、Caspase-1蛋白表達,減少NLRP3炎癥小體的形成,進而減少炎癥因子IL-1β、IL-18的釋放,減輕視網膜損傷。
綜上所述,益肝明目湯可能通過抑制NLRP3炎癥小體的激活,抑制NLRP3、ASC、Caspase-1蛋白表達及炎癥因子IL-1β、IL-18釋放,改善視網膜組織炎癥狀態,減輕視網膜病理損傷,減輕視網膜水腫,從而改善視網膜功能,延緩DME進展。
參考文獻
[1] AMOAKU W M, GHANCHI F, BAILEY C, et al. Diabetic retinopathy and diabetic macular oedema pathways and management: UK Consensus Working Group[J]. Eye, 2020, 34(1): 1-51.
[2] CECILIA O M, JOS?魪 ALBERTO C G, JOS?魪 N P, et al. Oxidative stress as the main target in diabetic retinopathy pathophysiology[J]. Journal of Diabetes Research, 2019, 2019: 8562408.
[3] CAO Z H, HUANG D, TANG C F, et al. Pyroptosis in diabetes and diabetic nephropathy[J]. International Journal of Clinical Chemistry, 2022, 531: 188-196.
[4] YU Z W, ZHANG J, LI X, et al. A new research hot spot: The role of NLRP3 inflammasome activation, a key step in pyroptosis, in diabetes and diabetic complications[J]. Life Sciences, 2020, 240: 117138.
[5] TANG L, XU G T, ZHANG J F. Inflammation in diabetic retinopathy: Possible roles in pathogenesis and potential implications for therapy[J]. Neural Regeneration Research, 2023, 18(5): 976-982.
[6] MA H Y, LI J Q. The ginger extract could improve diabetic retinopathy by inhibiting the expression of e/iNOS and G6PDH, apoptosis, inflammation, and angiogenesis[J]. Journal of Food Biochemistry, 2022, 46(5): e14084.
[7] LI A S, VEERAPPAN M, MITTAL V, et al. Anti-VEGF agents in the management of diabetic macular edema[J]. Expert Review of Ophthalmology, 2020, 15(5): 285-296.
[8] 王園園,趙齊園,相 ?旭,等.玻璃體腔注射不同藥物在糖尿病性黃斑水腫中的研究現狀[J].當代醫學,2022,28(18):187-190.
[9] 陳向東,覃艮艷,張又瑋,等.益肝明目湯治療糖尿病黃斑水腫的療效分析[J].湖南中醫藥大學學報,2016,36(6):71-73.
[10] 陳向東,張又瑋,覃艮艷,等.自擬益肝明目湯治療黃斑囊樣水腫驗案舉隅[J].湖南中醫雜志,2017,33(2):79-80.
[11] 陳向東,孫淑銘,聶輔嬌,等.鏈脲佐菌素誘導Brown Norway大鼠糖尿病視網膜病變模型的建立[J].中醫藥導報,2018,24(18):15-19.
[12] 符超君,凌艷君,顏家朝,等.雙丹明目膠囊對糖尿病視網膜病變大鼠視網膜Ras-Raf-1-MEK-ERK通路的調控作用[J].湖南中醫藥大學學報,2018,38(7):728-731.
[13] 陳 ?奇.中藥藥理研究方法學[M].2版.北京:人民衛生出版社,2006:1261-1263.
[14] PI S H, WANG B J, JIA Y L, et al. Characterization of retinal structural and vascular pathologies in Royal College of Surgeons rat using visible-light OCT[J]. Investigative Ophthalmology & Visual Science, 2021, 62(8): 297.
[15] 楊山景,封安杰,孫 ?越,等.白芍總苷的藥理作用及機制研究進展[J].中國現代應用藥學,2021,38(13):1627-1633.
[16] 李月陽,雷根平,董 ?盛,等.柴胡的現代藥理作用研究進展[J].海南醫學院學報,2022,28(22):1748-1754.
[17] 司長峰,卜 ?荔,徐 ?楠,等.柴胡皂苷D對糖尿病視網膜病變大鼠的治療作用[J].眼科新進展,2021,41(10):925-929.
[18] 任偉鈺,鄭宜鋆,張月梅,等.當歸多糖藥理作用的研究進展[J].時珍國醫國藥,2020,31(10):2484-2487.
[19] 劉 ?琳,柴志勇,刁云輝,等.當歸多糖對氧化型低密度脂蛋白誘導的血管內皮細胞損傷的保護作用研究[J].中國臨床藥理學雜志,2020,36(7):818-821.
[20] 趙全如,謝曉燕.丹參的化學成分及藥理作用研究進展[J].廣東化工,2021,48(1):57-59.
[21] 權聯姣,秦婧婧,權元鼎.丹參提取物抑制高糖誘導的人視網膜血管內皮細胞凋亡的機制研究[J].臨床內科雜志,2020,37(5):371-374.
[22] ZHU J J, SUN H, KANG X L, et al. Acidic polysaccharides from Buddleja officinalis inhibit angiogenesis via the Nrf2/ARE pathway to attenuate diabetic retinopathy[J]. Food & Function, 2022, 13(17): 9021-9031.
[23] 夏青松,孔靖瑋,李德順,等.不同配比當歸-川芎藥對的抗炎、鎮痛作用實驗研究[J].湖北中醫藥大學學報,2015,17(6):1-4.
[24] 顧云龍,李兆健.澤瀉功用的本草考證及現代研究進展[J].中醫藥導報,2021,27(11):137-141.
[25] 馬艷春,范楚晨,馮天甜,等.茯苓的化學成分和藥理作用研究進展[J].中醫藥學報,2021,49(12):108-111.
[26] HUONG D T V, GIANG P M, HOANG D H, et al. Chemical composition and pharmacological activities of Plantago major L. in Vietnam[J]. Asian Journal of Chemistry, 2021, 33(2): 314-318.
[27] DHATWALIA J, KUMARI A, VERMA R, et al. Phytochemistry, pharmacology, and nutraceutical profile of Carissa species: An updated review[J]. Molecules, 2021, 26(22): 7010.
[28] 郝菲菲,張東蕾,何 ?偉.中藥蒺藜在眼科疾病治療中的應用[J].實用中醫內科雜志,2020,34(6):113-117.
[29] 舒朋華,羅躍輝,劉婉蓉,等.茺蔚子化學成分與藥理作用的研究進展[J].中華中醫藥學刊,2022,40(7):39-43.
[30] 王啟芝,劉 ?敏,劉 ?雨,等.細胞焦亡分子機制及其相關疾病中醫藥研究進展[J].中國中醫藥信息雜志,2020,27(12):140-144.
[31] CHEN M N, RONG R, XIA X B. Spotlight on pyroptosis: Role in pathogenesis and therapeutic potential of ocular diseases[J]. Journal of Neuroinflammation, 2022, 19(1): 183.
[32] RIAZ M, REHMAN A U, SHAH S A, et al. Predicting multi-interfacial binding mechanisms of NLRP3 and ASC pyrin domains in inflammasome activation[J]. ACS Chemical Neuroscience, 2021, 12(4): 603-612.
[33] GU J L, GENG K, GUO M, et al. Targeting pyroptosis: New insights into the treatment of diabetic microvascular complications[J]. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine, 2022, 2022: 5277673.
[34] AIZAWA E, KARASAWA T, WATANABE S, et al. GSDME-dependent incomplete pyroptosis permits selective IL-1α release under caspase-1 inhibition[J]. iScience, 2020, 23(5): 101-120.
[35] GE K K, WANG Y T, LI P, et al. Down-expression of the NLRP3 inflammasome delays the progression of diabetic retinopathy[J]. Microvascular Research, 2022, 139: 104265.
[36] KUO C Y, MARAN J J, JAMIESON E G, et al. Characterization of NLRP3 inflammasome activation in the onset of diabetic retinopathy[J]. International Journal of Molecular Sciences, 2022, 23(22): 14471.
[37] KONG H, ZHAO H R, CHEN T R, et al. Targeted P2X7/NLRP3 signaling pathway against inflammation, apoptosis, and pyroptosis of retinal endothelial cells in diabetic retinopathy[J]. Cell Death & Disease, 2022, 13(4): 336.
[38] GUO Y, SUN Z C, WANG L, et al. Increased expression of TSPO-VDAC complex is correlated with NLRP3 inflammasome activation in diabetic retinopathy[J]. Molecular Medicine Reports, 2022, 26(6): 353.
[39] CHEN H, ZHANG X Z, LIAO N Y, et al. Enhanced expression of NLRP3 inflammasome-related inflammation in diabetic retinopathy[J]. Investigative Ophthalmology & Visual Science, 2018, 59(2): 978-985.
〔收稿日期〕2022-11-15
〔基金項目〕湖南省中醫藥科研計劃課題項目(201917);湖南省中醫藥科研計劃項目(C2022003,E2022044);湖南省自然科學基金面上項目(2021JJ30520);長沙市自然科學基金項目(kq2014226);湖南省教育廳科學研究項目(19A362);湖南中醫藥大學中醫學一流學科開放基金項目(2018ZYX60);湖南中醫藥大學研究生創新課題項目(2021CX76)。
〔第一作者〕廉藝童,男,碩士研究生,研究方向:眼底病的防治與研究。
〔通信作者〕*陳向東,男,博士,教授,博士研究生導師,E-mail:564259166@qq.com。