原花色素對雞胸肉肌原纖維蛋白凝膠特性影響

鄭卓琦 李 巖 李松艷 馮冠霖 李靜媛

(青島農業大學 食品科學與工程學院,山東 青島 266109)

雞胸肉作為一種經濟實惠的食品,由于雞肉營養豐富,適宜微生物生長繁殖,極易腐敗且腐敗問題嚴重制約中式快餐企業規模化的推進。雞胸肉質量主要由其肌原纖維蛋白凝膠的質構、流變等特性決定。提取肉制品中的肌原纖維蛋白是對肉制品中蛋白質性質專門研究的一種方案。肌原纖維蛋白凝膠的形成是基于蛋白質的鹽析作用,使蛋白質在溶液中發生團聚和沉淀。凝膠的穩定性在一定程度上是蛋白質穩定性的體現[1]。熱加工是生產肌原纖維蛋白凝膠的常用方法之一[2]。在蛋白質的加熱過程中,蛋白質骨架斷裂,疏水基團暴露。隨著溫度的升高,蛋白質聚集,α-螺旋結構展開,逐漸轉變為β-折疊結構。蛋白質的凝膠化來源于蛋白質之間通過共價鍵和非共價鍵的交聯,包括離子鍵、氫鍵、疏水作用、二硫鍵等共價鍵[3-4]。通過研究凝膠的保水性、凝膠強度、抗氧化性等因素,可以從側面反映出蛋白質的一些生理特性。因此,提高雞胸肉肌原纖維蛋白的保護機制以及其肉制品品質具有重要意義。

原花色素是廣泛存在于植物中的一類黃酮類化合物,是天然抗氧化劑。Xu等[5]研究發現,表沒食子兒茶素沒食子酸(EGCG)的添加可提高大豆分離蛋白的成膠速率,形成更均勻的網絡結構,從而改善大豆分離蛋白的凝膠性能。Ferreira等[6]發現原花色素富含疏水芳香環和羥基,可通過氫鍵和疏水作用與蛋白質相互作用,通過填充作用支撐和穩定蛋白凝膠的網絡支架,還能與蛋白質產生相互作用,有效增強凝膠強度和持水能力。Jia等[7]研究發現,當兒茶素添加量大于2.9 g/kg蛋白時,兒茶素引起的疏水結構域被暴露,凝膠中的巰基(S-H)含量明顯降低,在超過14.5 g/kg時凝膠嚴重惡化,在此濃度下兒茶素對凝膠產生了極不利的影響。Lee等[8]研究表明,兒茶素或原花青素的添加對3D打印材料有強化作用,且添加物具有更好的打印性和凝膠性。研究表明,原花青素可以降低凝膠的表面疏水性,從而改變蛋白質的二級結構,添加原花青素可以保護肉制品免受紫外線誘導的光損傷,是減輕紫外線誘導的氧化損傷的有效策略[1,9]。

原花色素現主要應用領域為魚油微膠囊的壁材和部分保健食品的添加劑,但在研究中發現其潛在的生物功效并沒有很好的應用于醫療或其他領域,在很多食品領域的功能尚未開發完全。本研究設計一定濃度范圍原花色素對雞胸肉肌原纖維蛋白的影響,以及添加原花色素后,凝膠理化性質隨時間的變化。本研究目的在于通過研究原花色素對蛋白凝膠特性的影響,反應其對雞胸肉中最重要的蛋白肌原纖維蛋白的影響,從而探究原花色素是否可以作為一種天然的食品添加劑加入至雞胸肉中。Cao等[10]研究了添加0.1 g/kg原花色素單倍體可以提高凝膠的氧化穩定性,但是Jongberg等[11]研究發現在添加量為0.5 g/kg時,原花色素對肉及其凝膠產生了負面影響,其基質包括觸覺、味覺和視覺與空白組對比均出現明顯差異,且凝膠形成不穩定。本研究補足了0.1～0.5 g/kg濃度區間原花色素對凝膠的影響,研究了原花色素對凝膠影響的關鍵濃度,確定了原花色素的最適添加量及在合適添加量的條件下凝膠的變化情況,對原花色素的實際生產應用提供了可參考的應用價值。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

新鮮雞胸肉購自大潤發超市。兒茶素、原花色素二聚體和原花色素四聚體購自國藥集團化學試劑有限公司,純度為99.9%。葡萄籽購自山東煙臺部分酒莊。

藥品EDTA、EDTA-2Na、NaCl、Tris-HCl、Triton X-100、Na2HPO4、NaH2PO4、香蘭素和濃硫酸為分析純,均購自國藥集團化學試劑有限公司。藥品CH3CN、HOAc、CH3OH、C3H6O、兒茶素為色譜純,購自國藥集團化學試劑有限公司。

1.2 試驗方法

1.2.1 原花色素制備與檢測

參考李春陽[12]和周蒙等[13]、楊成東[14]和張兵兵等[15]的試驗方案,稱取20 g葡萄籽用冷凍-研磨機研磨,研磨后的粉末過100目篩。過濾后的粉末用索氏抽提器抽提8 h去除油脂和脂肪。之后用真空冷凍干燥機對溶液進行凍干。凍干后將凍干粉取出,按料液比1∶14加入50%乙醇中,再加入0.56 g/L纖維素酶,靜置30 min。將溶液微波消解,微波處理時間6 min,微波功率800 W,微波溫度60 ℃。后將溶液在4 ℃下8 000 g離心10 min,取上清液凍干,得到的凍干粉即為原花色素粉末。

參考石磊等[16]的方法,采用香草醛-鹽酸法檢測原花色素的濃度。根據周蒙等[13]和樊金玲[17]的試驗方法,采用高效液相色譜-熒光檢測器(HPLC-FLD)檢測提取的原花色素組分。使用C-18液相色譜柱,流速為1.0 mL/min,柱溫35 ℃,以0.1%磷酸水溶液為流動相A,甲醇為流動相B, 進行梯度洗脫。

1.2.2 凝膠的制備

參考魯小川等[18]的方法并加以修改, 將切碎的雞胸肉進行多次鹽析去雜并通過三層紗布過濾去除結締組織和脂質,在10 000 g離心10 min后,用冷蒸餾水洗滌沉淀2次。本研究中使用的蛋白質是從最終收集的沉積物中獲得的,將提取的肌原纖維蛋白粗粉(Myofibrillar protein crude powder, MP)粉末與磷酸鹽緩沖液混合,形成濃度為100 mg/mL的MP溶液。將50 mL MP溶液置于80 mL燒杯中。此時,分別向燒杯中添加0.05、0.10、0.15、0.20、0.25和0.30 g/kg 原花色素。并將其置于水浴中以1 ℃/min的速度從室溫升至80 ℃,在黑暗條件中進行,80 ℃保溫30 min。然后將燒杯轉移至-20 ℃冷卻10 min,棄去液體,剩余部分為合成的凝膠。

1.2.3 凝膠色澤測定

根據Filipecki等[19]的方法對凝膠色澤進行測定,采用全自動色差儀進行檢測,檢測樣品均被切成小立方體(1 cm×1 cm×1 cm)上機檢測。

1.2.4 凝膠微觀結構

凝膠微觀結構采用拉曼顯微鏡進行觀測并記錄,樣品被切成1 mm薄片進行檢測。

1.2.5 凝膠結構強度的測定

根據王秀娟等[20]研究的方法,制備的MP凝膠經過全自動切割機切成小立方體(1 cm×1 cm×1 cm),采用P50探針測試硬度、咀嚼性和彈性,并根據質構剖面分析(TPA)計算出最佳測試條件為:應變(40%)、觸發力(10 g)、測試前、測試中和測試后速度(1、0.5和1 mm/s)和間隔時間(10 s)。

1.2.6 傅里葉變換紅外光譜和拉曼光譜光譜分析

參考林玲[21]的研究方法,取小部分MP凝膠在真空冷凍干燥機中凍干后研磨成粉,采用KBr壓片法制備樣品上機檢測。掃描波長為500～4 000 cm-1,分辨率為4 cm-1,掃描頻率為64。

根據薛思雯[22]研究的方法并根據儀器調試參數,激光功率10.0 mW, 曝光時間2 Hz, 掃描次數350。

1.2.7 低場核磁共振

根據孫任寬等[23]的研究方法并做了優化,諧振頻率為22.6 MHz、累加次數NS為32,在室溫條件下對水的遷移率和分布進行了評估。將約2 g MP凝膠置于直徑為15 mm圓柱形玻璃管中,插入核磁共振探針中檢測。

1.2.8 流變學特性

根據湯回花等[24]的研究方法,采用配備鋼平行板幾何結構的流變儀評價黏彈性性能。將未加熱的1.5 mL MP溶液置于平板表面,立即用硅油密封。采用10 Hz的恒定頻率,在以下程序下監測儲能模量(G’)和損耗模量(G”):以0.5 ℃/min從30 ℃加熱至80 ℃。此外,對熱處理結束(80 ℃)的凝膠樣品進行了頻率掃描測試,應變范圍為0～100 Hz。

1.2.9 硅壓阻式力敏傳感器測量凝膠體積

根據陳瑩梅等[25]的研究方法并改進,將制備好的凝膠用超聲波切割機切割出1 cm×1 cm×1 cm的立方體。將切下的樣品放入檢測器中10 s后讀取,可以防止因凝膠表面張力而造成的數據誤差。

1.3 統計分析

每份樣品測定3次。試驗采用origin軟件繪制圖表和IBM SPSS Statistics軟件分析數據顯著性差異和誤差等。

2 結果與分析

2.1 原花色素提取分析

以兒茶素標準溶液濃度為橫坐標,吸光度為縱坐標,繪制兒茶素標準曲線。回歸方程:Y=0.001 191X+0.001 23,R2=0.999。根據公式最終提取率為(4.69±0.11)%(w/w),相對偏差為0.638%。

根據圖1液相色譜圖數據分析,該方法提取的原花色素主要成分為原花色素二聚體,其中兒茶素、原花色素二聚體和原花色素四聚體的比例約為5∶31∶4,因為原花色素二聚體相較于兒茶素具有更高的抗氧化活性[13],故提取的原花色素對凝膠抗氧化作用應存在有利影響。由圖1可知,從葡萄籽中提取的原花色素含有兒茶素、二聚體和四聚體。但出現連峰和雜峰的情況,是因為原花色素提取物中所含成分比較復雜,有許多的同分異構體[26]。

2.2 凝膠特性分析

圖2顯示的是添加不同濃度提取的原花色素后形成的凝膠外觀。從圖2和表1色差儀檢測的數據可以看出,由于提取的原花色素呈現鮮紅色,故添加后對所產生的凝膠色澤有所影響,且當原花色素添加量≥0.30 g/kg時,凝膠的狀態不穩定且外觀架構及顏色中的白值不穩定,沒有研究價值,最終確定為0～0.20 g/kg原花色素添加量。

表1 不同濃度原花色素對顏色的影響Table 1 Effects of PAS on gel chromatic aberration

采用雙縮脲法對提取的蛋白質進行檢測,測得純度為(90.08±2.27)%,與先前研究[27-28]開展凝膠研究的蛋白質提取純度大致相同。

紅色曲線為含兒茶素、原花色素二聚體和原花色素四聚體的混合標品的HPLC-FLD色譜圖,黑色曲線為凍干法后重新溶解的原花色素的HPLC-FLD色譜圖,圖中T1-3為物質出鋒時間。The red curve was the HPLC-FLD of the mixed standard substance containing catechin, proanthocyanin dimer and proanthocyanin tetra. The black curve was the HPLC-FLD of the proanthocyanin redissolved after lyophilization. T1-3 in the figure was the material retention time.圖1 提取的PAS與標品的HPLC-FID高效液相色譜圖Fig.1 Label and extracted PAS of HPLC-FID

(a)、(b)和(c)列分別為添加了0.10、0.20和0.30 g/kg原花色素后形成的凝膠形態。Column (a), (b) and (c) showed the gel after adding 0.10, 0.20 and 0.30 g/kg PAS.圖2 不同濃度原花色素對凝膠外觀的影響Fig.2 Effects of PAS on gel appearance

2.3 凝膠表征分析

2.3.1 凝膠含水量及體積分析

保水性是評價肉及肉制品品質的重要指標之一,在加熱過程中蛋白結構的展開、變性和聚集以及與原花色素的聚合作用之間的相互作用都會影響凝膠網狀結構的形成,并最終改變凝膠的保水性[29]。圖3中3個峰從左到右依次為結合水、不易流動水和自由水,當H原子處于不同分子上或處于不同物理狀態下的樣品中時,其弛豫時間會有所不同[30]。從圖4可以看出,在添加原花色素的凝膠形成的0 d,3種水的弛豫時間對比空白組均顯著延遲,說明形成的凝膠中的H原子核能被激發后恢復到原來平衡狀態所需的時間增多,H原子核可以儲存更多的能量,凝膠系統由一個平衡態到達另一個平衡態所用的平均時間間隔更長,說明了原花色素的加入使得凝膠中H原子核需要吸收更多的能量才會發生改變,側面說明了原花色素增強了凝膠持水的穩定性。弛豫時間的延遲證明原花色素對凝膠的水分子的固定起到了增強作用。其原因可能是部分凝膠分子在聚合過程中與原花色素形成了具有較多結合水的空間結構,也可能是原花色素在凝膠形成階段與大量羥基反應使H原子暴露較多。

T1、T3、T5為空白組的結合水、不易流動水和自由水的出峰時間;T2、T4、T6為添加原花色素組的結合水、不易流動水和自由水的出峰時間。T1, T3 and T5 were the peak time of combined water, immobilized water and free water in the blank contrast; And T2, T4 and T6 were the peak time of combined water, immobilized water and free water in the PAS group.圖3 凝膠形成時低場核磁共振圖Fig.3 Low-field NMR during gel formation

圖4和表2給出了5個樣品隨時間變化的低場核磁共振檢測圖。在隨時間變化的檢測中,只有T1和T2的弛豫時間在5 d及以后的檢測中再次提前。其原因可能是原花色素的羥基與凝膠的部分氨基酸分子在空氣氧化作用下形成了較為穩定的結合水。也就是說,原花色素誘導了游離水向固定化水的轉化,凝膠中的水分流動受到了某種限制,這種現象可能歸因于良好的聚集性。

表2 凝膠形成后隨時間推移的弛豫時間及占比Table 2 Relaxation time and proportion with gel formation over time

圖4 凝膠形成后隨時間推移的低場核磁共振圖Fig.4 Low-field NMR change gel formation over time

從圖5可以看出,在0 d時,雖然切割參數設定為1 cm×1 cm×1 cm,但硅壓阻式力敏傳感器測得的體積仍不足1 cm3,這可能是因為切割機的誤差,也可能是凝膠形成時結構不均勻或產生大孔導致。由數據可知,原花色素加入后形成的凝膠具有更緊密的空間結構,凝膠密度也更大,水分子不易揮發,保水性更強。前10 d時,凝膠體積與原花色素添加量呈正相關。10 d后,添加0.15和0.20 g/kg原花色素的凝膠體積迅速下降,但仍高于空白對照,可能是由于凝膠表面氧化孔隙變大變軟導致測量時散落。因此,可以推斷,在添加0～0.2 g/kg原花色素濃度下,凝膠的保水性隨著時間的推移相比于空白組更加穩定,高濃度原花色素短期保水性較好,但長期保水性下降較快。

圖5 凝膠隨時間推移的體積變化Fig.5 Volume change of gel over time

2.3.2 紅外光譜和拉曼光譜分析

利用紅外光譜進一步研究了蛋白質-原花色素分子間的相互作用。如圖6所示,中心位于3 000～3 600 cm-1的寬帶歸屬為O-H和N-H基團,暗示了氫鍵相互作用的潛力增強[31-32]。這意味著隨著原花色素的加入,凝膠力中O-H和N-H基團增加,也可能是原花色素本身自帶的O-H和N-H基團導致了氫鍵相互作用的增加。與空白相比,O-H和N-H基團在3 000～3 500 cm-1處出現伸縮振動,0.15%和0.20%原花色素試驗組的強度增強,表明分子間和分子內氫鍵強度增強。這是影響蛋白質之間親和力的有利變化。MP凝膠表面的強氫鍵勢有助于蛋白質之間的穩定和有序,加速了蛋白質的重排和聚集過程[9]。在2 300 cm-1左右是產生氣體的峰,這與凝膠生產時觀察到的表面一致,隨著原花色素濃度的升高,凝膠表面出現的微氣泡增多且更加透軟,但切開后內部仍十分緊實,這可能是蛋白質的某些集團與原花色素活躍的羥基發生反應產生的氣體有關。

圖6 凝膠形成時的紅外光譜圖Fig.6 Infrared spectrum of gel formation during gel formation

近年來,許多研究利用拉曼光譜來反映蛋白質凝膠的二級和三級結構信息。凝膠性質與二級結構的變化有關。通常用酰胺Ⅰ(1 600～1 700 cm-1)和酰胺Ⅲ(1 200～1 300 cm-1)的拉曼光譜來測量二級結構[19]。圖6顯示了0 d時不同濃度原花色素處理后凝膠的拉曼光譜。通過高斯曲線和傅里葉自反卷積擬合分析以1 652 cm-1為中心的酰胺Ⅰ帶和以 1 234 cm-1為中心的酰胺Ⅱ帶和波長為1 509～1 592 cm-1為酰胺Ⅱ區,分析蛋白的結構。1 652、1 663、1 674和 1 683 cm-1的條帶分別為α螺旋、無規卷曲、β-折疊和β轉角[33]。(1 235±10) cm-1波長是β-折疊在酰胺Ⅲ帶的表現[34]。920～1 180 cm-1波長為N-Cα-C骨架伸縮振動,被一些作者歸類為酰胺模式[35]。

由圖7可知,添加原花色素的凝膠中,α-螺旋總量與原花色素添加量無明顯相關性,但1 650 cm-1左右酰胺Ⅰ帶對比空白組的擬合峰面積都減少了,這意味著α-螺旋總量的減少。這種減少可能是由于凝膠主要部分中相當數量的α-螺旋的解旋化造成的。需要指出的是,α-螺旋中的肽鍵可能形成氫鍵[36],因此,α-螺旋非常穩定。本研究中,加入原花色素后,α-螺旋有很大程度的解旋化,分子內疏水基團的暴露似乎有利于解旋化作用后凝膠網絡的形成和新蛋白折疊的出現(β-折疊)。從而促進了疏水作用和凝膠化的穩定。

圖7 凝膠形成時的拉曼光譜圖Fig.7 Raman spectra of gel formation during gel formation

圖8(a)和(b)檢測到的是酰胺Ⅰ帶和酰胺Ⅲ帶的β-折疊。在0 d時形成凝膠時,添加了原花色素形成的凝膠中β-折疊的含量均高于空白對照組,這與α-螺旋總量減少,減少的α-螺旋部分轉化成了β-折疊推論相吻合。隨著時間推移,空白組與試驗組的β-折疊含量雖均出現下降趨勢,但試驗組的β-折疊含量仍高于空白組。這可能是因為添加了原花色素的凝膠在形成過程中原花色素的聚合帶走了凝膠中部分氨基酸的電荷。隨著相同電荷的減少和不同電荷的增加,肽鏈之間形成的β-折疊變得更強和更穩定。但隨著時間的推移,特別是5～10 d,β-折疊有快速下降的趨勢,10 d后繼續緩慢下降,可能是凝膠中部分氫鍵或S-S鍵被氧化斷裂,導致凝膠不穩定。

根據圖8(c)可以得出,在凝膠形成的0 d時,原花色素的加入量與N-Cα-C骨架伸縮振動的強度范圍呈負相關,這很可能是由于原花色素中大量的C=O、羥基或苯環增強了凝膠中某些氨基酸的N-Cα-C穩定性,抑制了N-Cα-C骨架伸縮振動的振幅,導致檢測到的N-Cα-C骨架伸縮振動低于空白組。但隨著時間的推移,原花色素的強化穩定作用逐漸減弱,空白組與試驗組能檢測到的N-Cα-C骨架伸縮振動強度均呈現上升趨勢,這可能與凝膠被氧化導致的密度變小、表面硬度降低、凝膠空隙變大有關。

酰胺Ⅱ區有N-H面內彎曲、C-N拉伸、C-O面內彎曲和C-C拉伸[37-38]。根據圖8(d)可以得出,隨著原花色素的加入,酰胺Ⅱ區的檢測強度也增強,可能是由于原花色素分子中存在C-C、C-O鍵使得檢測信號增強。但酰胺Ⅱ區的強度仍隨時間的延長而增大。可能的原因是氧化和脫水暴露了酰胺Ⅱ區域的C-C拉伸和C-O面內彎曲,從而檢測到了較大的信號強度。

圖8 凝膠隨時間推移的拉曼光譜部分波長峰面積擬合圖Fig.8 Fitting diagram of partial wavelength peak area of Raman spectra

2.3.3 流變性能分析

儲能模量(G’)和損耗模量(G”)是表征凝膠粘彈性的重要指標。動態流變分析對研究肌肉加工過程中蛋白質功能特性非常有用,有助于研究凝膠形成過程[29]。從圖9(a)和(g)可以看出,隨著溫度的升高,G’逐漸減小,在48 ℃時達到最低點,然后繼續上升到80 ℃,G’繼續增加到穩定狀態, Sovrani等[39]也發現了類似的結果。G’的增加表明凝膠或彈性蛋白網絡結構的初步形成。48 ℃前G’的暫時性下降是由于肌球蛋白重鏈的伸縮和交聯,可能是由于肌球蛋白尾部變性,主要涉及非共價鍵的解離和分子間的暫時性相互作用,從而增加了肌球蛋白的流動性[8]。進一步升溫后,疏水基團的形成和二硫鍵的相互作用增加了蛋白質聚集體的相互作用,形成了良好的絲狀結構,從而導致G’增大,說明黏性溶膠狀態向彈性凝膠網絡結構轉變[40-41]。隨后G’迅速增加,在72 ℃時增長放緩,說明凝膠網絡結構完全形成。原花色素的添加,使得凝膠形成的G’均高于空白對照組,說明凝膠存儲彈性變形能量的能力增加。對流變完成后的樣品進行觀察,與在水浴鍋中凝膠的形成表態相似,形貌為絮狀凝聚塊。

根據圖9(b)和圖9(f)可以得出,隨著原花色素的加入,G”也呈現上升趨勢,G’是G”的5倍多。隨著溫度的升高,在70 ℃左右達到峰值,之后呈下降趨勢。當添加量為0～0.20 g/kg時,凝膠的黏度隨添加量的增加而增加,且高于空白對比。從圖9(e)可以看出,隨著原花色素濃度增加,實驗組和空白組的MP溶液的復合模量均繼續增加,其粘彈性不斷增強,向著形成凝膠的方向發展。從圖9(g)和(h)可以看出,隨著溫度、頻率和原花色素添加量的不斷增加,凝膠的儲能模量和損耗模量都在增加,但儲能模量的增長速度明顯高于損耗模量的增長速度,證明在加熱過程中形成的凝膠,在頻率掃描過程中也表現出一定程度的凝膠穩定性。

圖9(c)、(d)和(h)中的頻率掃描表明,在0～0.20 g/kg質量濃度范圍內,隨著原花色素和掃描頻率的增加,除0.15和0.20 g/kg的原花色素實驗組,凝膠的G’和G”均呈現上升趨勢。但從添加0.15 和0.20 g/kg原花色素的凝膠的數據可以看出凝膠已經表現出一定的不穩定性。當添加量為0.05 g/kg時,PG的復合黏度數據與空白對比無明顯差異。當添加量為0.05～0.20 g/kg時,可以看出原花色素的添加增強了凝膠的強度,但在0.20 g/kg時也存在不穩定性。隨著原花色素添加量的增加,凝膠的硬度和黏度增加,但PG在0.20 g/kg時存在不穩定性,這與質構、拉曼和紅外檢測結果一致。

2.3.4 質構分析

圖10(a)中的咀嚼性數據顯示,0.05 g/kg原花色素添加量的咀嚼性低于空白組。考慮到原花色素濃度過低時形成的凝膠黏附性和黏聚力不足,對二硫鍵和酰胺鍵的影響不穩定,導致0.05 g/kg時咀嚼性較低。但隨著原花色素用量的增加,可以看出咀嚼性有非常迅速的增長趨勢。隨著時間的推移,各濃度試驗組中的咀嚼性隨時間迅速下降。可以看出,原花色素在凝膠形成過程中可以起到抗氧化和穩定作用,但原花色素容易聚合,低聚物形式過多,在參與凝膠形成時會因為不同集團的種類和數量影響凝膠的穩定性[42]。隨著時間的推移,不同的分子基團由于氧化而轉變為新的分子形態,導致凝膠外的凝膠層發生軟化。將20 d凝膠切片后發現,凝膠表面柔軟、柔嫩,無凝膠特性,但中心部分仍顯示凝膠特性。這與拉曼顯微鏡的觀察趨勢一致。

從圖10(b)可以看出,凝膠的彈性與原花色素添加量呈正相關,在4 ℃貯藏20 d后,原花色素組的彈性衰減率低于空白組,衰減率比空白組平均低13.574%。根據數據推測,彈性下降與凝膠20 d內游離水流失和二硫鍵破壞有關。從圖6也可以看出,硅壓阻式力敏傳感器測量的凝膠體積下降也表明凝膠有一定程度的收縮和塌陷。但從數據來看,實驗組的凝膠崩解速率比空白對照組慢。這可能是由于在凝膠形成的加熱過程中,原花色素中的C-環與凝膠顆粒中的C-C、C-N鍵發生聚合,加強了凝膠中鍵之間的相互作用[29]。從圖10(c)可以看出,隨著試驗組原花色素濃度的增加,形成的凝膠硬度增加,并且隨著時間的推移,凝膠硬度仍然增加,這與凝膠的失水直接相關。20 d時,兩組自由水含量均顯著降低,凝膠呈現硬脆特性。

同時發現,在質構儀檢測過程中,實驗組比空白組更加不穩定,誤差更大。分析認為,在凝膠形成的加熱過程中,形成了不同的原花色素低聚物或聚合物,不同的聚合物對S-S鍵的影響不同,使得試驗組的穩定性低于空白組。

2.3.5 微觀結構分析

通過對比圖11(a)和(b)的顯微圖像,空白組凝膠表面粗糙,結構紊亂,說明凝膠化過程中蛋白質分子沒有充分展開,彼此之間沒有很好的連接。隨著原花色素的加入,凝膠網絡變得更加規則和均勻,從圖11(c)和(d)中可以看出形成的凝膠孔隙更加致密且并不會隨時間變化使得凝膠結構出現較大程度的變化。高度互聯、緊密的網絡結構可能會表現出更大的抗外應力,通過毛細管效應為包裹水提供更多的空間,從而提高凝膠強度和保水性。此外,基于原花色素的自我聚集效應,團聚的原花色素可以充當填料填充網絡結構,且這些填充效應在較高濃度時似乎更加明顯。

(a)儲能模量隨溫度的變化;(b)損耗模量隨溫度的變化;(c)儲能模量隨頻率的變化;(d)損耗模量隨頻率的變化;(e)復合模量隨溫度的變化;(f) 儲能模量/損耗模量G’/G”;(g)儲能模量與損耗模量隨溫度的變化;(h)儲能模量和損耗模量隨頻率的變化。(a) Change of storage modulus with temperature; (b) Change of loss modulus with temperature; (c) Change of storage modulus with frequency; (d) Change of loss modulus with frequency; (e) Change of composite modulus with temperature; (f) G’/G”; (g) Change of storage modulus and loss modulus with temperature; (h) Change of storage modulus and loss modulus with frequency.圖9 凝膠隨時間變化的流變學數據Fig.9 Rheology data change of gel over time

(a)凝膠咀嚼性隨時間的變化;(b)凝膠彈性隨時間的變化;(c)凝膠硬度隨時間的變化。(a) Change of chewness with time; (b) Change of springness with time; (c) Change of hardness with time.圖10 凝膠隨時間變化的質構數據Fig.10 Texture data change of gel over time

根據圖11(a)和(c)可以看出,0 d形成的凝膠表面和內部凝膠結構不同,這與低場核磁共振檢測、體積檢測和質構檢測中發現的問題一致。考慮可能是凝膠形成過程中凝膠外層表皮與溶液過度接觸所致。研究發現,如果在0 d時剝除凝膠所有表層部分,那么20 d可見兩組凝膠均出現大面積塌陷,考慮凝膠在被氧化的過程中產生了大量的羧基導致。

(a)0 d空白對照組;(b)20 d空白對照組;(c)0 d 0.20 g/kg原花色素;(d)20 d 0.20 g/kg原花色素。(a) Blank contrast on day 0; (b) Blank contrast on day 20; (c) PAS group on day 20; (d) PAS group on day 20.圖11 凝膠隨時間變化的微觀圖Fig.11 Microscopic graph change of gel over time

3 結 論

本研究填補了Ferreira等[6]與Jia等[7]研究中PAS濃度范圍的空缺,找到了PAS濃度對肌原纖維蛋白凝膠影響的拐點。本研究首次引入硅壓阻式力敏傳感器測量凝膠體積,在原有的凝膠常用表征方法[43-44]上豐富了凝膠數據支撐,使得凝膠表征數據更加完整。通過微觀和宏觀的結果表明,PAS的加入提升了凝膠保存自由水的能力,減緩了流動水隨時間的損耗速度,通過提高凝膠的空間密度,提升了凝膠存儲彈性形變能量的能力,這與Xu等[5]研究的大豆分離蛋白凝膠結果相似,說明PAS具有使得凝膠具有更強的保水性以及更致密的空間結構的能力。紅外和拉曼結果與Saeki等[45]研究分析的EGCG對凝膠影響趨勢相同,PAS通過增加蛋白質二級結構中的氫鍵之間的強度、促進蛋白質之間的疏水作用、蛋白之間形成更多的β-折疊,從而強化蛋白質的二級結構,使得添加PAS后的凝膠具有更穩定的二級結構和更不易被破壞的空間結構。Lee等[46]研究發現,兒茶素的添加有助于提升凝膠的儲能模量,提升水凝膠敷料的愈合性能,加速了凝膠成型的速度,這與本試驗中凝膠獲得了更高的彈性和更高的硬度以及更加致密的空間結構結論相同,蛋白質之間的作用力更強,凝膠更具有穩定性。凝膠的流變學結果表明,添加PAS后,凝膠更易形成,且在形成凝膠的過程中,儲能模量和損耗模量與PAS添加量呈正相關趨勢,凝膠具有更強的回彈能力和更大的粘性,這與先前的研究趨勢相同[5,46]。因此,PAS作為一種天然且充裕的物質,可作為一種新型的食品添加劑作用于個性化凝膠制品和肉制品研發中。其營養價值的評價與感官評價有待進一步研究。