5 種食用菌水提物生物活性的比較

韓明月，李 俐，郝利民，王小龍，江慶伍，李 雪，劉可可，劉永奇，伊娟娟,*，魯吉珂,*

（1.鄭州大學生命科學學院，河南 鄭州 450001；2.中國人民解放軍軍事科學院系統工程研究院，北京 100010；3.河南省銀豐生物工程技術有限公司，河南 鄭州 450001；4.安徽金寨喬康藥業有限公司，安徽 六安 237300）

食用菌通稱為蘑菇，是一類可供食用、子實體碩大的真菌[1]。食用菌營養物質豐富，含有多種對人體有益的活性成分，包括酚類化合物、萜類化合物、黃酮類化合物、多糖類化合物等，相應展現出多種生物學功能，如抗氧化、免疫調節及輻射防護等作用[2-3]。

在生物體內自由基的生成和清除通常處于動態平衡狀態，自由基過剩將會對機體造成一定程度的氧化損傷，進而誘導衰老、癌癥、肝損傷、心血管等疾病[4-5]。免疫系統是機體抵抗各種病原微生物，如細菌、病毒和寄生蟲等的主要防御系統。機體在發揮免疫應答時不僅依賴于胸腺、脾臟等免疫器官，還依賴于淋巴細胞、巨噬細胞等免疫細胞進而發揮免疫調節作用[6]。隨著核能技術的廣泛應用，人類經常暴露于各種各樣的電離輻射中。但電離輻射會對機體的免疫、造血、生殖等系統造成不同程度的氧化損傷[7]，天然輻射防護劑的開發在來源、效用、成本及安全等方面具有特殊的優勢，對人類健康具有十分重要的意義。

食用菌具有開發成天然抗氧化劑、免疫調節劑和輻射防護劑的潛力，本研究以草菇、灰樹花、紅菇、雞腿菇、樹舌5 種食用菌水提物為實驗材料，通過生物活性對比研究篩選出活性較高的食用菌水提物，為天然抗氧化劑和輻射防護劑的開發提供一定的理論依據。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

草菇水提物（water extracts ofVolvariellavolvacea，WEVV）、灰樹花水提物（water extracts ofGrifolafrondosa，WEGF）、紅菇水提物（water extracts ofRussulavinosa Lindblad，WERV）、雞腿菇水提物（water extracts ofCoprinus comatus，WECC）和樹舌水提物（water extracts ofGanoderma applanatum，WEGA）由安徽金寨喬康藥業有限公司提供。

考馬斯亮藍G-250 北京鼎國昌盛生物技術有限責任公司；2,2’-聯氨-雙(3-乙基苯并噻唑-6-磺酸)（2,2’-azino-bis-(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid)，ABTS）、1,1-二苯基-2-三硝基苯肼（1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl，DPPH）、沒食子酸、福林-酚 上海麥克林生化科技有限公司；蘆丁 北京索萊寶科技有限公司；鐵氰化鉀、過硫酸鉀 天津致遠化學試劑有限公司；三氟乙酸 上海科豐實業有限公司；三氯化鐵、硫酸亞鐵 天津風船化學試劑科技有限公司；苯酚、抗壞血酸（ascorbic acid，VC）、水楊酸 天津恒興化學試劑制造有限公司；30%過氧化氫 煙臺市雙雙化工有限公司。以上試劑均為分析純。

小鼠巨噬細胞系RAW264.7 中國科學院細胞庫（上海）；小鼠肝細胞系AML-12 南京三生生物技術有限公司；DMEM/F12培養基 美國HyClone公司；DMEM高糖培養基、雙抗、地塞米松、胰蛋白酶消化液北京索萊寶科技有限公司；胎牛血清 杭州四季青生物有限公司；脂多糖（lipopolysaccharide，LPS） 中國上海碧云天生物技術有限公司；ITS液體培養基補充劑美國Sigma試劑公司；細胞計數試劑盒（cell counting kit-8，CCK-8） 上海陶術生物科技有限公司。

1.2 儀器與設備

HH-2SC型恒溫水浴鍋 常州普天儀器制造有限公司；TU-1810型紫外-可見分光光度計 北京普析通用儀器有限責任公司；JW-1016型低速離心機 安徽嘉文儀器裝備有限公司；CMax Plus濾光片型光吸收酶標儀美谷分子儀器（上海）有限公司；60Co γ輻射裝置（200萬 Ci） 河南省科學院同位素研究所有限公司；3111型CO2恒溫培養箱 美國Thermo公司；QL-902型旋渦混合器 海門市其林貝爾儀器制造有限公司。

1.3 方法

1.3.1 食用菌水提物中總糖質量分數的測定

采用苯酚硫酸法測定食用菌水提物中總糖質量分數[8]。以葡萄糖質量濃度為橫坐標、490 nm波長處的吸光度為縱坐標，繪制標準曲線y＝13.435x－0.023 7（R2＝0.999 7）。

1.3.2 食用菌水提物中總蛋白質量分數的測定

采用考馬斯亮藍法測定食用菌水提物中總蛋白質量分數[9]。以牛血清白蛋白質量濃度為橫坐標、樣品反應液在595 nm波長處的吸光度為縱坐標，繪制標準曲線y＝6.867 1x＋0.002 7（R2＝0.998 7）。

1.3.3 5 種食用菌水提物中粗多糖質量分數的測定

5 種食用菌水提物經醇沉過夜，4 000 r/min離心10 min獲得粗多糖沉淀，將沉淀溶解定容，并參照出入境檢驗檢疫行業標準SN/T 4260—2015《出口植物源食品中粗多糖的測定 苯酚-硫酸法》[8]測定樣品溶液中的粗多糖質量分數。

1.3.4 食用菌水提物中總酚質量分數的測定

采用福林-酚法檢測食用菌水提物中總酚質量分數[10]。以沒食子酸為標準品，其質量濃度為橫坐標、760 nm 波長處的吸光度為縱坐標，繪制標準曲線y＝69.873x＋0.002 3（R2＝0.999 7）。

1.3.5 食用菌水提物中總黃酮質量分數的測定

采用NaNO2-AlCl3法測定食用菌水提物中總黃酮質量分數[11]。以蘆丁作為標準品，其質量濃度為橫坐標、510 nm波長處吸光度為縱坐標，繪制標準曲線y＝7.577x－0.002 3（R2＝0.999 8）。

1.3.6 食用菌水提物的體外抗氧化活性測定

1.3.6.1 ABTS陽離子自由基清除率的測定

采用劉宇琪等[12]的方法測定。7.4 mmol/L的ABTS和2.6 mmol/L的過硫酸鉀溶液等體積混合，避光靜置12～16 h，用pH 7.4的磷酸緩沖液稀釋，使其在734 nm波長下的吸光度在0.70±0.02左右，制成ABTS工作液。取不同質量濃度的食用菌水提物溶液（0.2～1.0 mg/mL）以及VC溶液（0.001～0.005 mg/mL）各1 mL，加6 mL ABTS工作液，混勻并在室溫下靜置6 min，測定混合液在734 nm波長處的吸光度，以VC為陽性對照，按照公式（1）計算ABTS陽離子自由基清除率。

式中：A0為以等體積蒸餾水代替水提物樣品溶液的吸光度；A1為1 mL水提物樣品溶液與6 mL ABTS工作液混合的吸光度；A2為以等體積蒸餾水代替ABTS工作液的吸光度。

1.3.6.2 DPPH自由基清除率測定

采用Luan Xiaoxu等[13]方法評估DPPH自由基清除活性并稍作修改。分別將食用菌水提物配制成質量濃度為0.2～1.0 mg/mL的樣品溶液，并分別取2 mL樣品溶液與2 mL 0.1 mmol/L DPPH-乙醇溶液混勻，靜置20 min后，在517 nm波長處測定混合液的吸光度。質量濃度0.2～1.0 mg/mL的VC溶液作為陽性對照組。以2 mL蒸餾水和2 mL無水乙醇混合液作為空白對照。根據公式（2）計算食用菌水提物清除DPPH自由基的能力。

式中：A0為2 mL DPPH溶液與2 mL蒸餾水混合的吸光度；A1為2 mL DPPH溶液與2 mL水提物樣品溶液混合的吸光度；A2為2 mL無水乙醇溶液與2 mL水提物樣品溶液混合的吸光度。

1.3.6.3 羥自由基清除率的測定

參照Zhang Tao等[14]方法并稍作改進。取不同質量濃度的食用菌水提物（1.0～5.0 mg/mL）及VC溶液（0.1～0.5 mg/mL）各1 mL，依次加入1 mL 5 mmol/L FeSO4溶液、1 mL蒸餾水、1 mL 5 mmol/L水楊酸-乙醇溶液及1 mL 5 mmol/L H2O2溶液，混合均勻，37 ℃下放置30 min，測定510 nm波長處的吸光度，以VC為陽性對照，按公式（3）計算羥自由基清除率。

式中：A0為等體積蒸餾水代替水提物樣品溶液的吸光度；A1為水提物樣品溶液的吸光度；A2為等體積蒸餾水代替H2O2溶液的吸光度。

1.3.6.4 總還原力測定

根據Zhang Jingjing等[15]的方法并稍作修改，進行總還原力測定。分別取2 mL不同質量濃度食用菌水提物溶液（0.2～1.0 mg/mL），依次加入2 mL 0.2 mol/L磷酸緩沖液（pH 6.6）和2 mL質量分數1%鐵氰化鉀溶液，混合均勻，50 ℃下靜置20 min，加入2 mL質量分數10%三氟乙酸終止反應，3 000 r/min離心10 min，取2 mL上清液與2 mL蒸餾水、0.4 mL質量分數0.1% FeCl3溶液混合均勻，50 ℃下靜置10 min，檢測混合液700 nm波長處的吸光度，以吸光度表征總還原力的強弱。以蒸餾水為空白對照。以質量濃度0.001～0.005 mg/mL的VC溶液為陽性對照。

1.3.7 食用菌水提物的體外免疫活性檢測

采用CCK-8法檢測RAW264.7細胞增殖活性[16]。取生長狀態良好的RAW264.7細胞制備單細胞懸液，血球計數板計數，以1×104個/孔的細胞濃度接種于96 孔板中，過夜培養巨噬細胞使其充分貼壁。次日，5 種食用菌水提物（質量濃度10～200 μg/mL）分別作用于RAW264.7巨噬細胞，磷酸鹽緩沖液（phosphate buffered saline，PBS）組和LPS（質量濃度1 μg/mL）組分別作為陰性對照和陽性對照，每個實驗組做5 個重復孔，于37 ℃、體積分數5% CO2的細胞培養箱中繼續培養24 h。

24 h之后，棄去96 孔板中的細胞培養液，并避光配制含體積分數10%胎牛血清和10% CCK-8溶液的DMEM培養基，每孔避光加入110 μL，于37 ℃、體積分數5% CO2的細胞培養箱中孵育1～4 h。使用酶標儀測定450 nm波長處吸光度，并按公式（4）計算細胞存活率。

式中：A0為CCK-8溶液吸光度；A1為陰性對照孔的吸光度；A2為樣品孔的吸光度。

1.3.8 食用菌水提物的體外抗輻射活性檢測

將小鼠正常肝細胞AML-12在含有體積分數10%胎牛血清、1%青霉素-鏈霉素、1% ITS液體培養基補充劑和質量濃度40 ng/mL地塞米松的DMEM/F12培養基中培養。

1.3.8.1 AML-12細胞毒性實驗

采用CCK-8方法檢測5 種食用菌水提物對AML-12細胞活力的影響[17-18]。取生長狀態良好的AML-12細胞制備細胞懸液，按照約5 000 個/孔加入96 孔板中，于體積分數5% CO2的細胞培養箱中培養12 h。加入10 μL不同質量濃度的樣品，刺激AML-12細胞，PBS組作為陰性對照，每個實驗組做5 個重復孔，繼續培養36 h，棄去96 孔板中的細胞培養液，并避光配制含體積分數10%胎牛血清和10% CCK-8溶液的DMEM/F12培養基，每孔避光加入110 μL，于37 ℃、體積分數5% CO2的細胞培養箱中孵育1～4 h。使用酶標儀測定450 nm波長處吸光度，并按公式（5）計算細胞存活率。

式中：A0為CCK-8溶液吸光度；A1為陰性對照孔的吸光度；A2為樣品孔的吸光度。

1.3.8.2 輻射防護實驗

通過60Co γ照射建立肝細胞AML-12輻射損傷模型，并采用CCK-8方法檢測5 種食用菌水提物對AML-12細胞的放射保護作用[17-18]。AML-12細胞培養步驟與1.3.8.1節相同。當樣品作用于細胞后于體積分數5% CO2的細胞培養箱中培養12 h，然后對細胞進行60Co γ射線輻射處理，輻射劑量為6 Gy，劑量率為2 Gy/min。以輻照后的PBS組作為模型（model control，MC）組。培養24 h后，棄去96 孔板中的細胞培養液，并避光配制含體積分數10%胎牛血清和10% CCK-8溶液的DMEM/F12培養基，每孔避光加入110 μL，于37 ℃、體積分數5% CO2的細胞培養箱中孵育1～4 h。使用酶標儀測定450 nm波長處吸光度，并按公式（6）計算細胞存活率。

式中：A0為CCK-8溶液吸光度；A1為未輻照陰性對照孔的吸光度；A2為樣品孔吸光度。

1.4 數據處理與分析

所有實驗數據采用GraphPad Prism 8.0.2軟件進行統計學分析，結果表示為平均值±標準差。采用單因素方差分析進行顯著性分析，P＜0.05表示差異顯著，P＜0.01表示差異極顯著，P＜0.001表示差異高度顯著。

2 結果與分析

2.1 5 種食用菌水提物中總糖、總蛋白、粗多糖、總酚及總黃酮的質量分數

為了探究5 種食用菌水提物的主要成分，對其總糖、總蛋白、粗多糖、總酚及總黃酮質量分數進行測定及對比，結果見表1。5 種食用菌水提物的總糖質量分數均超過50%以上，其中WECC和WEVV總糖質量分數最高，分別為（84.87±7.31）%和（80.90±1.20）%，表明糖類組分在5 種食用菌水提物中的占比較大。WEGA和WEGF總蛋白質量分數分別為（2.50±0.05）%和（1.06±0.03）%，其余水提物的總蛋白質量分數均較低。為了探究水提物中多糖的含量，將5 種食用菌水提物經醇沉得到的粗多糖進行測定，結果顯示，5 種食用菌水提物中WEGF的粗多糖質量分數最高，其粗多糖質量分數為（61.28±2.95）%。值得注意的是，WEGA的總酚、總黃酮質量分數均高于其余食用菌水提物，分別為（2.62±0.01）%和（3.03±0.02）%。以上研究結果初步顯示，5 種食用菌水提物均含有一定含量的活性成分，而糖類化合物是該5 種食用菌水提物的主要成分。已有報道表明，食用菌多糖具有抗氧化[19]、抗輻射[20]、降血糖[21]、降血脂[22]及增強免疫力[23]等多種生物活性。因而，有必要對這5 種食用菌水提物的生物活性進行進一步的探究。

表1 5 種食用菌水提物中總糖、總蛋白、粗多糖、總酚及總黃酮質量分數Table 1 Contents of total sugar,total proteins,crude polysaccharides,total phenols and total flavonoids in water extracts from five edible mushrooms

2.2 食用菌水提物的體外抗氧化活性

2.2.1 ABTS陽離子自由基清除能力測定結果

ABTS陽離子自由基是由ABTS與過硫酸鉀發生氧化反應生成的，呈現藍綠色，并在734 nm波長下有特征吸收峰。當向ABTS陽離子自由基中補充自由基清除劑后，藍綠色變淡，其吸光度也會隨著抗氧化劑的抗氧化能力的增加而降低。因而，ABTS陽離子自由基清除率可以作為評價樣品抗氧化能力的重要指標[24]。如圖1所示，陽性對照VC及5 種食用菌水提物對ABTS陽離子自由基均具有清除能力。在樣品質量濃度為1 mg/mL時，WEGA、WEGF、WERV、WEVV、WECC對ABTS陽離子自由基的清除率分別為（99.78±0.10）%、（71.43±0.67）%、（65.54±0.92）%、（40.47±0.44）%和（38.58±0.42）%，其中WEGA對ABTS陽離子自由基清除能力最強。據Shi Min等[25]從豆腐渣發酵的靈芝中提取4 種多糖，靈芝多糖組分4（Ganoderma lucidumpolysaccharide-IV，GLP-IV）對ABTS陽離子自由基的清除活性最高，其質量濃度為5 mg/mL時清除率為98.68%。與GLP-IV相比，質量濃度1 mg/mL的WEGA對ABTS陽離子自由基的清除率高于質量濃度5 mg/mL的GLP-IV，表現出較高的抗氧化活性。綜上所述，WEGA對ABTS陽離子自由基清除能力較高。

圖1 5 種食用菌水提物對ABTS陽離子自由基的清除能力Fig.1 2,2’-Azino-bis-(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid (ABTS)cation radical scavenging capacity of water extracts from fvie edible mushrooms

2.2.2 DPPH自由基清除能力測定結果

DPPH自由基乙醇溶液呈紫色，當加入具有清除自由基能力的樣品時，能夠使得DPPH自由基的孤對電子被配對，原本紫色的DPPH自由基乙醇溶液顏色變淺，根據顏色變淺的程度可以判斷樣品抗氧化能力的大小[26]。如圖2所示，陽性對照VC及5 種食用菌水提物的質量濃度與DPPH自由基的清除能力呈正相關。在0.2～1.0 mg/mL食用菌水提物質量濃度范圍內，WEGA的DPPH自由基清除率均高于其他4 種食用菌水提物，但低于陽性對照VC的DPPH自由基清除率。在樣品質量濃度為1.0 mg/mL時，5 種食用菌水提物的DPPH自由基清除率分別為WEGA（88.36±0.30）%、WEGF（85.37±0.41）%、WERV（62.81±0.39）%、WEVV（59.69±0.63）%、WECC（54.85±0.23）%。其中WEGA對DPPH自由基清除率最高，且高于真空技術提取的香菇多糖對DPPH自由基的清除率（低于50%）[27]。總的來說，5 種食用菌水提物中WEGA對DPPH自由基的清除能力最好。

圖2 5 種食用菌水提物對DPPH自由基的清除能力Fig.2 1,1-Diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH) radical scavenging capacity of water extracts from five edible mushrooms

2.2.3 羥自由基清除能力測定結果

在已知的自由基中，羥自由基的氧化能力比較強，其氧化能力可以對幾乎所有的生物大分子如核酸、蛋白質、糖類等造成氧化損傷，因而測定樣品對羥自由基的清除能力具有十分重要的意義[28]。如圖3所示，當VC質量濃度0.5 mg/mL時，其羥自由基清除率為（68.92±5.89）%，高于5 種食用菌水提物的羥自由基的清除能力。5 種食用菌水提物對羥自由基的清除能力均呈現濃度依賴性增加。但與DPPH自由基清除能力相比，5 種食用菌水提物對羥自由基的清除作用較弱。在1～5 mg/mL的質量濃度范圍內，WEGA的羥自由基清除活性高于其他食用菌。在質量濃度為5 mg/mL時，WEGA羥自由基清除率達到最大，為（33.44±0.07）%，并高于從平菇子實體中分離出的兩種多糖組分PSPO-1a和PSPO-4a對羥自由基的清除能力，PSPO-1a和PSPO-4a的清除率均低于25%[29]。結果表明WEGA是一種潛在的羥自由基清除劑。

圖3 5 種食用菌水提物對羥自由基的清除能力Fig.3 Hydroxyl radical scavenging capacity of water extracts from five edible mushrooms

2.2.4 總還原力測定結果

抗氧化劑是通過自身的還原作用清除自由基，表現為還原能力越強，抗氧化能力越強，因此可以通過還原能力的大小判斷其抗氧化水平的高低。如圖4所示，每種食用菌水提物的總還原能力均隨著樣品質量濃度增加，呈現劑量依賴性增強。在0.2～1.0 mg/mL的質量濃度范圍內，WEGA的總還原能力高于其他食用菌水提物。5 種食用菌水提物總還原能力的大小依次為WEGA＞WERV＞WEGF＞WEVV＞WECC。結果表明WEGA比其他4 種食用菌水提物具有更強的總還原能力。

圖4 5 種食用菌水提物的總還原力Fig.4 Total reducing power of water extracts from five edible mushrooms

2.3 食用菌水提物的體外免疫活性分析結果

巨噬細胞在機體免疫系統中占有非常重要的地位，其體外增殖能力可以作為評價生物活性化合物免疫調節作用的指標[30-31]。如圖5所示，在實驗質量濃度范圍內，與陰性對照組相比，WECC和WEVV對巨噬細胞增殖具有較弱的促進作用。當樣品質量濃度在40～200 μg/mL時，WERV對巨噬細胞增殖有劑量依賴性抑制作用。WEGF在10～160 μg/mL時對巨噬細胞的促增殖作用與質量濃度呈正相關，這一結果與Ma Xiaolei等[32]報道的灰樹花多糖組分GFP-A對巨噬細胞的增殖活性的趨勢一致。并且當WEGF質量濃度在80～200 μg/mL時，WEGF與其他4 種食用菌水提物相比，對巨噬細胞增殖促進能力最強。當質量濃度為10 μg/mL時，5 種食用菌水提物中WEGA對巨噬細胞增殖促進能力最強，并與陽性對照作用相當。綜上所述，WEGA具有較好的免疫調節活性。已有報道表明樹舌多糖具有免疫調節活性[33]，與本研究結果相一致。

圖5 5 種食用菌水提物對RAW264.7細胞活力的影響Fig.5 Effects of water extracts from five edible mushrooms on RAW264.7 cell viability

2.4 食用菌水提物的體外抗輻射活性

電離輻射是能引起一切物質電離的總稱[34]。電離輻射會對機體造成直接和間接的傷害，嚴重危害人類身體健康[35]。肝臟是生物體的重要代謝器官，電離輻射也會對肝臟造成損傷[17,36]。因此，60Co γ輻射氧化損傷的小鼠肝細胞AML-12可以作為評價生物活性化合物的輻射防護作用的細胞模型。

如圖6A所示，5 種食用菌水提物均能促進AML-12細胞的增殖，并對AML-12細胞無毒性作用。如圖6B所示，60Co γ輻射后，與陰性對照組相比，MC組AML-12細胞存活率極顯著下降（P＜0.01）。WEGF在質量濃度80～200 μg/mL時，能夠改善AML-12細胞存活率的下降，但改善作用較弱。與MC組相比，WECC和WERV在質量濃度10～200 μg/mL范圍內均能改善輻射所致的肝細胞AML-12的損傷，但隨質量濃度的增加WECC對AML-12細胞的輻射防護作用逐漸下降。在質量濃度10～200 μg/mL范圍內，與其余4 種食用菌水提物相比，WEVV能夠明顯改善電離輻射導致的AML-12細胞存活率下降。WEGA在低質量濃度（10～40 μg/mL）時對肝細胞AML-12細胞存活率下降表現出顯著的改善作用（P＜0.05、P＜0.01）。因而，WEGA、WEVV、WECC和WERV均可作為天然的輻射防護劑進行開發利用。此外，課題組前期采用AML-12細胞進行輻射防護作用研究時，發現布拉氏酵母發酵的山藥多糖對60Co γ射線誘導的AML-12細胞損傷表現出較好的輻射防護作用[18]。而本研究水提物主要組分分析顯示，糖類是5 種食用菌水提物的主要成分，由此推測多糖可能是食用菌水提物發揮輻射防護作用的主要因素，值得進一步探究。

圖6 5 種食用菌水提物對AML-12細胞活力的影響Fig.6 Effects of water extracts from five edible mushrooms on AML-12 cell viability

3 討論

近些年來，關于食用菌生物活性的研究備受科研工作者的關注，食用菌中的功能性成分已成為天然藥物資源開發的領域之一[37]。目前，關于食用菌生物活性方面的研究，主要是針對單種食用菌的生物活性進行研究。本研究選用草菇、灰樹花、紅菇、雞腿菇、樹舌5 種食用菌水提物為研究對象，進行主要成分分析及生物活性比較，結果發現5 種食用菌水提物均具有一定的抗氧化活性、免疫活性和輻射防護作用，這可能與5 種食用菌水提物富含糖類化合物相關。WEGA的還原能力、DPPH自由基清除率、羥自由基清除率和ABTS陽離子自由基清除率均高于WEVV、WEGF、WERV、WECC，特別是當WEGA質量濃度為1 mg/mL時，WEGA對ABTS陽離子自由基清除率高達（99.78±0.10）%，表明其是天然抗氧化功能食品開發的良好原料來源。

同時，5 種食用菌水提物的體外免疫活性結果顯示，低質量濃度（10 μg/mL）時，WEGA對巨噬細胞的促增殖能力強于其他食用菌水提物；在實驗質量濃度范圍內（10～160 μg/mL），WEGF對巨噬細胞表現出劑量依賴性的促增殖效果。此外，5 種食用菌水提物對60Co γ輻射下的肝細胞AML-12輻射防護結果顯示，WEVV的輻射防護作用較強；WEGA的抗輻射活性結果與其體外免疫活性結果相似，在低質量濃度（10～40 μg/mL）時明顯改善電離輻射導致的肝細胞AML-12的損傷。綜合比較，WEGA具有較好的抗氧化、免疫及抗輻射活性，本實驗結果可為WEGA相關功能產品的開發提供新的思路。