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外泌體作為藥物遞送系統(tǒng)的研究進(jìn)展#

2022-12-06 22:13:17巫瑤于洋朱玲王霞萬(wàn)莉紅
四川生理科學(xué)雜志 2022年4期

巫瑤 于洋 朱玲 王霞 萬(wàn)莉紅

·綜述·

外泌體作為藥物遞送系統(tǒng)的研究進(jìn)展#

巫瑤*1于洋2朱玲1王霞3△萬(wàn)莉紅1△

(1. 四川大學(xué)華西基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)與法醫(yī)學(xué)院藥理學(xué)教研室,四川 成都 610041;2. 四川大學(xué)華西醫(yī)院神經(jīng)外科,四川 成都 610041;3. 四川大學(xué)華西第二醫(yī)院檢驗(yàn)科,四川 成都 610041)

外泌體是一種由細(xì)胞分泌的直徑約40-100 nm的盤(pán)狀囊泡,具有天然脂質(zhì)雙分子層,其內(nèi)包含了復(fù)雜的RNA和蛋白質(zhì)。大多數(shù)細(xì)胞在正常及病理狀態(tài)下均能產(chǎn)生外泌體,這些外泌體主要存在于體液中,在細(xì)胞間物質(zhì)運(yùn)輸和信號(hào)交流中發(fā)揮著重要作用。作為天然內(nèi)源性納米級(jí)載體,外泌體具有毒性小、穩(wěn)定性好、、滲透性好、靶向歸巢性強(qiáng)、能透過(guò)血腦屏障、可包載的物質(zhì)種類(lèi)多等特點(diǎn),故可能成為具有良好應(yīng)用前景的藥物遞送載體。本文主要介紹外泌體的基本性質(zhì)、制備、載藥方式,并歸納了其作為藥物遞送載體的研究進(jìn)展。

外泌體;藥物遞送系統(tǒng);天然內(nèi)源性納米級(jí)載體;靶向

目前已經(jīng)有很多新型納米材料被開(kāi)發(fā)應(yīng)用于治療多種重大疾病[1, 2]。相比于傳統(tǒng)藥物遞送載體,納米材料尺寸小、材料和形狀特殊,可在一定程度上提高療效[3]。

但是,大部分納米載體不能被降解,易于堆積、自由移動(dòng),從而阻塞微循環(huán)造成細(xì)胞持久性損傷,因此存在潛在的安全性問(wèn)題[4]。而外泌體是生物體在正常或者病理狀態(tài)下產(chǎn)生的納米級(jí)細(xì)胞囊泡,具有與脂質(zhì)體相似的膜狀結(jié)構(gòu),這促使研究者們開(kāi)始思考能否將藥物裝載到脂質(zhì)體中的經(jīng)驗(yàn)應(yīng)用于外泌體中。此外,外泌體還具有體積小、可荷電、能被修飾具有靶向性、逃避吞噬、能透過(guò)血腦屏障等優(yōu)點(diǎn)[5]。因此,外泌體作為天然內(nèi)源性納米載體,具有良好應(yīng)用前景,可被開(kāi)發(fā)用于藥物的遞送。

1 外泌體概況

1.1 來(lái)源

外泌體可被免疫細(xì)胞、神經(jīng)元、成纖維細(xì)胞、間充質(zhì)干細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞和上皮細(xì)胞等多種細(xì)胞分泌產(chǎn)生[6],可在血液、尿液、唾液、腦脊液、乳汁、羊水、腹水和膽汁等多種體液中出現(xiàn)[7-11]。

1.2 特性

作為細(xì)胞分泌產(chǎn)物的外泌體具有一定的內(nèi)在靶向性,如中樞神經(jīng)細(xì)胞分泌的外泌體能透過(guò)血腦屏障,靶向特定的神經(jīng)元[12];缺氧腫瘤細(xì)胞來(lái)源的外泌體傾向于向缺氧腫瘤組織內(nèi)聚集[13]。另外,通過(guò)設(shè)計(jì)外泌體膜表面與靶細(xì)胞特異性結(jié)合的抗體、配體或受體可實(shí)現(xiàn)外泌體外源靶向性。

外泌體主要有兩種不同類(lèi)型的靶向修飾[14-16]。一種是通過(guò)基因工程技術(shù)在外泌體膜上表達(dá)靶向多肽,從而使外泌體具有靶向功能[17]。另外一種是在外泌體膜表面直接進(jìn)行修飾,如受體蛋白工程[18]。

1.3 外泌體作為藥物遞送系統(tǒng)的應(yīng)用

外泌體可用于包載小分子藥物,使藥物在靶細(xì)胞內(nèi)富集,增加小分子藥物的穩(wěn)定性并延長(zhǎng)其血液循環(huán)時(shí)間,進(jìn)而提高藥物的療效。

已有研究顯示,一些小分子化療藥物可以被包載于外泌體中從而達(dá)到治療疾病的作用,如紫杉醇[19]、姜黃素[20]、多柔比星[21]等。除小分子外,外泌體還可用于包載大分子,如蛋白質(zhì)藥物和基因藥物等。

2 外泌體的制備

目前大規(guī)模生產(chǎn)外泌體的方法主要是自發(fā)生產(chǎn)和非自發(fā)生產(chǎn)兩種方式。自發(fā)生產(chǎn)通過(guò)依賴(lài)中空纖維生物反應(yīng)器為細(xì)胞生長(zhǎng)提供高表面積比,進(jìn)而支持高密度的細(xì)胞自發(fā)釋放外泌體[22]。研究表明,自發(fā)生產(chǎn)方式耗時(shí)長(zhǎng),不適于工業(yè)化生產(chǎn)。

非自發(fā)生產(chǎn)方式主要通過(guò)增加外部刺激條件來(lái)觸發(fā)細(xì)胞釋放大量外泌體,非自發(fā)生產(chǎn)方式可分為三類(lèi):生物刺激、化學(xué)刺激、物理刺激,異同點(diǎn)見(jiàn)表1。

2.1 提取與分離

由于外泌體的形態(tài)與其他細(xì)胞外小體相似,大小范圍重疊,且體積過(guò)小,使得外泌體的分離變得非常困難[23-26]。不同的分離方法所得的外泌體產(chǎn)量不同、操作不同、耗時(shí)不同、價(jià)格也不同,異同點(diǎn)見(jiàn)表2。其中,超速離心法常常作為外泌體提取分離的金標(biāo)準(zhǔn)[27]。

2.2 鑒定

外泌體的表征包括了粒徑大小范圍、表面電荷、結(jié)構(gòu)和表面蛋白等,其對(duì)外泌體的性質(zhì)和生物學(xué)功能非常重要,并可以影響藥物的裝載和輸送。外泌體的鑒定主要就是對(duì)其表征的鑒定[23]。隨著微流控檢測(cè)技術(shù)的快速發(fā)展,我們可以實(shí)現(xiàn)高通量、高精度和低試劑消耗的新型外泌體檢測(cè)技術(shù),包括熒光相關(guān)顯微鏡(Fluorescence correlation microscopy,F(xiàn)CM)、比色法檢測(cè)、表面等離子體共振(Surface plasmon resonance detection,SPR)檢測(cè)和核磁共振(Nuclear magnetic resonance detection,NMR)檢測(cè)等[23]。

此外,可以通過(guò)評(píng)估外泌體的聚散指數(shù)(Polymer dispersity index,PDI)和囊泡的zeta電位,以確定外泌體作為藥物輸送系統(tǒng)的適用性[28]。

而外泌體的濃度,則可以通過(guò)測(cè)定總蛋白質(zhì)含量來(lái)確定。外泌體的RNA含量則可以通過(guò)毛細(xì)管電泳、分光光度法和實(shí)時(shí)聚合酶鏈反應(yīng)(Polymerase chain reaction,PCR)來(lái)測(cè)定。

表1 外泌體非自發(fā)生產(chǎn)方式

刺激方式具體方法優(yōu)勢(shì)劣勢(shì) 生物刺激血清饑餓處理、缺氧處理、細(xì)胞因子處理(如腫瘤壞死因子TNF-α、白細(xì)胞介素8IL-8、白細(xì)三烯B4 LTB4)快速、成本低、操作簡(jiǎn)單、可大規(guī)模生產(chǎn)殘留大量生物活性劑、需要純化、回收率低 化學(xué)刺激細(xì)胞松弛素B抑制肌動(dòng)蛋白的聚合從而促進(jìn)外泌體的釋放、耗時(shí)短、操作簡(jiǎn)單需要純化、回收率低 物理刺激物理和機(jī)械力不需要加入刺激因子耗時(shí)、產(chǎn)率不高

表2 外泌體分離方法

方法分離原理優(yōu)勢(shì)劣勢(shì) 超速離心沉降系數(shù)可大規(guī)模生產(chǎn)、分離純度高時(shí)間長(zhǎng)(>4小時(shí))、回收率低(5-25%)、重復(fù)性差 超濾大小和分子量操作簡(jiǎn)單、快速回收率低、易損壞、變形 分子尺寸排阻色譜凝膠的孔徑和外泌體的大小高純度和高產(chǎn)量昂貴、色譜柱易污染、分離后分析費(fèi)時(shí)費(fèi)力 沉降試劑盒疏水性樣品量小、操作簡(jiǎn)單特異性低、成本高 免疫學(xué)分離抗原-抗體反應(yīng)省時(shí)、高純度、程序簡(jiǎn)單昂貴、不能大規(guī)模生產(chǎn) 電泳(DEP)分離大小和電荷快速、高產(chǎn)量低分辨率、低純度 微流控芯片大小快速、成本低、便攜、回收率高、工藝要求高、不能大規(guī)模生產(chǎn)

3 外泌體載藥系統(tǒng)

3.1 載藥方式

外泌體由脂質(zhì)雙分子層構(gòu)成。藥物主要有兩種包載方式:主動(dòng)包載和被動(dòng)包載。不同方法所得外泌體質(zhì)量不同,其藥物裝載率及穩(wěn)定性都不相同。

3.1.1 被動(dòng)包載

被動(dòng)包載的方法總體上比較簡(jiǎn)單,主要分為以下兩種。一種是直接將外泌體與藥物進(jìn)行混合后共孵育,藥物會(huì)順著濃度梯度進(jìn)入外泌體中,裝載率與藥物的極性大小相關(guān),但這種方法載藥效率低[20]。另一種是將藥物與外泌體供體細(xì)胞混合后共孵育,通過(guò)這些細(xì)胞胞吞藥物后再分泌出裝載了藥物的外泌體[29]。這種方法的載藥效率也不高[30, 31],主要應(yīng)用于包載細(xì)胞毒性較低且脂溶性較高的小分子化學(xué)藥物[32]。

3.1.2 主動(dòng)包載

主動(dòng)包載相較于被動(dòng)包載,其藥物包載率更高。大分子的裝載常通過(guò)主動(dòng)包載這種方式被包載。主動(dòng)包載主要包括超聲法、擠出法、反復(fù)凍融法、電致孔法,其中超聲法和擠壓法會(huì)破壞膜的完整性[33, 34],異同點(diǎn)見(jiàn)表3。

3.2 影響載藥率的因素

3.2.1 外泌體/藥物比例

大多數(shù)研究?jī)A向于使用較多的外泌體,該比例的選擇與藥物的特性有關(guān)。疏水性藥物應(yīng)先溶解于有機(jī)溶劑如醇類(lèi)溶劑中,稀釋后再與外泌體溶液混合。而親水性藥物可預(yù)先溶解于生物相容的親水性溶劑中,再直接與外泌體溶液混合[28]。

3.2.2 外泌體細(xì)胞來(lái)源

不同細(xì)胞來(lái)源的外泌體其表面具有不同的標(biāo)記蛋白[35]。而牛奶來(lái)源的外泌體價(jià)格低廉,可用于大規(guī)模生產(chǎn),常被用于天然化合物和化療化合物的藥物輸送[36],具有良好的前景[37-39]。

表3 外泌體主動(dòng)包載方法

方法具體操作優(yōu)勢(shì)劣勢(shì) 超聲法均質(zhì)探頭超聲包載率高外泌體聚集、表面蛋白結(jié)構(gòu)改變 擠出法通過(guò)具有多孔膜的脂質(zhì)擠出機(jī)擠出載藥效率高、粒徑均一改變外泌體膜的性質(zhì) 反復(fù)凍融法混合物依次在室溫、液氮條件下共孵育,再解凍操作簡(jiǎn)單、條件溫和、可大規(guī)模生產(chǎn)外泌體的聚集、包載率低 電致孔法利用電場(chǎng)在外泌體膜上打孔操作簡(jiǎn)單RNA 沉淀、外泌體聚集

3.2.3 藥物性質(zhì)

外泌體的結(jié)構(gòu)是基于天然的膦脂雙層膜,具有親脂性,而親脂性藥物可以很好地融入到雙層結(jié)構(gòu)中,不容易從膜上釋放,從而具有持續(xù)釋放藥物的特性。根據(jù)藥物的相對(duì)親水性/疏水性,應(yīng)慎重選擇和優(yōu)化合適的裝載方法[28]。

4 總結(jié)與展望

本文主要介紹了外泌體的基本性質(zhì)、制備、載藥方式,并歸納了其作為藥物遞送載體的研究進(jìn)展。

盡管外泌體作為藥物載體具有生物兼容性、穩(wěn)定性、內(nèi)在靶向性等潛在優(yōu)勢(shì),但其作為藥物遞送系統(tǒng)的研究仍然不夠深入,還有很多問(wèn)題有待解決,外泌體作為藥物載體從實(shí)驗(yàn)室到市場(chǎng)有很長(zhǎng)一段路要走,需要研究者的共同努力。

1 Kundu M, Chatterjee S, Ghosh N, et al. Tumor targeted delivery of umbelliferone via a smart mesoporous silica nanoparticles controlled-release drug delivery system for increased anticancer efficiency [J]. Mat Sci Eng C-Mater, 2020, 116.

2 Zid L, Zelenak V, Berkutova A, et al. Nanocargo-delivery platform for targeted drug delivery in biomedical applications: magnetic Gd2O3 nanoparticles in porous SiO2[J]. Acta Phys Pol A, 2020, 137(5): 773-5.

3 Xie XT, Zhang L, Zhang WJ, et al. Fabrication of temperature and pH sensitive decorated magnetic nanoparticles as effective biosensors for targeted delivery of acyclovir anti-cancer drug [J]. J Mol Liq, 2020, 309.

4 Qin YT, Feng YS, Ma YJ, et al. Tumor-sensitive biodegradable nanoparticles of molecularly imprinted polymer-stabilized fluorescent zeolitic imidazolate framework-8 for targeted imaging and drug delivery [J]. Acs Appl Mater Inter, 2020, 12(22): 24585-98.

5 Pinky, Gupta S, Krshnakumar V, et al. Mesenchymal stem cell derived exosomes: a nano platform for therapeutics and drug delivery in combating COVID-19 [J]. Stem Cell Rev Rep, 2020.

6 Kalluri R. The biology and function of exosomes in cancer [J]. J Clin Invest, 2016, 126(4): 1208-15.

7 Caby MP, Lakar D, Vincendeau-Scherrer C, et al. Exosomal-like vesicles are present in human blood plasma [J]. Int Immunol, 2005, 17(7): 879-87.

8 Ogawa Y, Miura Y, Harazono A, et al. Proteomic analysis of two types of exosomes in human whole saliva [J]. Biol Pharm Bull, 2011, 34(1): 13-23.

9 Vella LJ, Sharples RA, Lawson VA, et al. Packaging of prions into exosomes is associated with a novel pathway of PrP processing [J]. J Pathol, 2007, 211(5): 582-90.

10 Asea A, Jean-Pierre C, Kaur P, et al. Heat shock protein-containing exosomes in mid-trimester amniotic fluids [J]. J Reprod Immunol, 2008, 79(1): 12-7.

11 Masyuk AI, Huang BQ, Ward CJ, et al. Biliary exosomes influence cholangiocyte regulatory mechanisms and proliferation through interaction with primary cilia [J]. Am J Physiol-Gastr L, 2010, 299(4): G990-G9.

12 Shi M, Sheng LF, Stewart T, et al. New windows into the brain: central nervous system-derived extracellular vesicles in blood [J]. Prog Neurobiol, 2019, 175: 96-106.

13 Jung KO, Jo H, Yu JH, et al. Development and MPI tracking of novel hypoxia-targeted theranostic exosomes [J]. Biomaterials, 2018, 177: 139-48.

14 Kauke M, Ross N, Burztn D, et al. Engineering exosomes with altered cellular tropism for targeted payload delivery in vivo [J]. Mol Ther, 2020, 28(4 suppl 1): 568-568. Meeting Abstract

15 Mallaredy V, Cheng ZJ, Garikipati V, et al. Surface modification of stem cell exosomes myocardial infarction specific peptides for non invasive delivery to ischemic myocardium [J]. Circulation, 2019, 140.

16 Mcdonald M, Hasan I, Adachi S, et al. Engineered exosomes for therapeutic gene delivery in brain tumors [J]. Neuro-Oncology, 2019, 21(suppl 6): 90-90. Meeting Abstract

17 Cheng Q, Shi XJ, Han ML, et al. Reprogramming exosomes as nanoscale controllers of cellular immunity [J]. J Am Chem Soc, 2018, 140(48): 16413-7.

18 Stickney Z, Losacco J, Mcdevitt S, et al. Development of exosome surface display technology in living human cells [J]. Biochem Bioph Res Co, 2016, 472(1): 53-9.

19 Kim MS, Haney MJ, Zhao YL, et al. Engineering macrophage-derived exosomes for targeted paclitaxel delivery to pulmonary metastases: in vitro and in vivo evaluations [J]. Nanomedicine, 2018, 14(1): 195-204.

20 Sun DM, Zhuang XY, Grizzle W, et al. A novel nanoparticle drug delivery system: the anti-inflammatory activity of curcumin is enhanced when encapsulated in exosomes [J]. Cancer Res, 2011, 71.

21 Schindler C, Collinson A, Matthews C, et al. Exosomal delivery of doxorubicin enables rapid cell entry and enhanced in vitro potency [J]. Plos One, 2019, 14(3): e0214545.

22 Watson DC, Bayik D, Srivatsan A, et al. Efficient production and enhanced tumor delivery of engineered extracellular vesicles [J]. Biomaterials, 2016, 105: 195-205.

23 Patil SM, Sawant SS, Kunda NK. Exosomes as drug delivery systems: a brief overview and progress update [J]. Eur J Pharm Biopharm, 2020, 154: 259-69.

24 Liu D, Li X. Exosomes as targeted drug delivery vehicles: perspectives and challenges [J]. Curr Drug Metab, 2020, 21(5): 329.

25 Liao W, Du Y, Zhang CH, et al. Exosomes: the next generation of endogenous nanomaterials for advanced drug delivery and therapy [J]. Acta Biomater, 2019, 86: 1-14.

26 Narayanan E. Exosomes as drug delivery vehicles for cancer treatment [J]. Curr Nanosci, 2020, 16(1): 15-26.

27 Tauro BJ, Greening DW, Mathias RA, et al. Comparison of ultracentrifugation, density gradient separation, and immunoaffinity capture methods for isolating human colon cancer cell line LIM1863-derived exosomes [J]. Methods, 2012, 56(2): 293-304.

28 Mehryab F, Rabbani S, Shahhosseini S, et al. Exosomes as a next-generation drug delivery system: an update on drug loading approaches, characterization, and clinical application challenges [J]. Acta Biomater, 2020, 113: 42-62.

29 Zhuang XY, Zhang HG. Treatment of brain inflammatory diseases by delivering exosome encapsulated anti-inflammatory drugs from the nasal region to the brain [J]. Mol Ther, 2011, 19(10): 1769-79.

30 Tian T, Zhang HX, He CP, et al. Surface functionalized exosomes as targeted drug delivery vehicles for cerebral ischemia therapy [J]. Biomaterials, 2018, 150: 137-49.

31 Munagala R, Aqil F, Jeyabalan J, et al. Bovine milk-derived exosomes for drug delivery [J]. Cancer Lett, 2016, 371(1): 48-61.

32 Qq HZ, Liu CY, Long LX, et al. Blood exosomes endowed with magnetic and targeting properties for cancer therapy [J]. Acs Nano, 2016, 10(3): 3323-33.

33 Sato YT, Umezaki K, Sawada S, et al. Engineering hybrid exosomes by membrane fusion with liposomes [J]. Sci Rep, 2016, 6: 21933.

34 Wan Y, Wang L, Zhu C, et al. Aptamer-conjugated extracellular nanovesicles for targeted drug delivery [J]. Cancer Res, 2018, 78(3): 798-808.

35 Fuhrmann G, Serio A, Mazo M, et al. Active loading into extracellular vesicles significantly improves the cellular uptake and photodynamic effect of porphyrins [J]. J Control Release, 2015, 205: 35-44.

36 Agrawal AK, Aqil F, Jeyabalan J, et al. Milk-derived exosomes for oral delivery of paclitaxel [J]. Nanomedicine, 2017, 13(5): 1627-36.

37 Munagala R, Aqil F, Jeyabalan J, et al. Exosomal formulation of anthocyanidins against multiple cancer types [J]. Cancer Lett, 2017, 393: 94-102.

38 Aqil F, Jeyabalan J, Agrawal AK, et al. Exosomal delivery of berry anthocyanidins for the management of ovarian cancer [J]. Food Funct, 2017, 8(11): 4100-7.

39 Aqil F, Kausar H, Agrawal AK, et al. Exosomal formulation enhances therapeutic response of celastrol against lung cancer [J]. Exp Mol Pathol, 2016, 101(1): 12-21.

(2022-04-01)

四川省科技廳重點(diǎn)研發(fā)項(xiàng)目(編號(hào):2020YFS0103);

巫瑤,女,四川大學(xué)華西基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)與法醫(yī)學(xué)院藥理學(xué)教研室研究生,Email:1274795088@qq.com;

王霞,女,副主任技師,主要從事臨床檢驗(yàn)工作,Email:80832491@qq.com;

萬(wàn)莉紅,女,教授,主要從事藥理學(xué)教學(xué)與科研工作,Email:wanlihong1976@sina.com。

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