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葛根醇提工藝優化及醇提物體外降脂研究

2022-11-01 10:15:24董紅影龐會娜肖鳳琴嚴銘銘
食品與機械 2022年10期
關鍵詞:工藝

董紅影 龐會娜 肖鳳琴 邵 帥 嚴銘銘

高脂血癥主要是由于脂質代謝異常所引起。在機體內脂類物質甘油三酯(TG)和總膽固醇(TC)偏高則會導致高血脂癥[1]。目前的降血脂藥物通過與膽固醇結合為膽酸鹽排出體外,起到降血脂作用[2]。

葛根為豆科植物野葛[Puerarialobata(Willd.)Ohwi]的干燥根,含有黃酮類、三萜類、生物堿類等多種化合物[3],其中葛根黃酮是其主要有效活性成分之一[4]。研究[5-6]表明,黃酮類化合物能夠清除人類血液中的膽固醇與脂肪。目前黃酮類化合物的制備方法較多,包括水提法、有機溶劑萃取法、酸堿水解法等[7],而乙醇提取法可克服水提物易霉變、其他有機溶劑毒性大等缺點,提取率高,后續的干燥及過濾等操作也比較容易進行,且有關葛根醇提物的降脂活性尚未見報道。

研究擬以膽固醇、油脂吸附量及膽酸鹽結合量為評價指標優化葛根醇提工藝,并用棕櫚酸誘導HepG2細胞構建脂肪肝細胞模型進一步驗證,探究葛根醇提物體外降脂功效,以期為其進一步體內研究提供依據。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

葛根藥材:長春市某藥房;

無水乙醇:分析純,無錫市晶科化工有限公司;

DMEM高糖培養基(含雙抗):美國Gibco公司;

油紅O染色液:上海源葉生物科技有限公司;

棕櫚酸(PA):美國Solarbio公司;

總膽固醇(TC)試劑盒以及甘油三酯(TG)檢測試劑盒:南京建成生物工程研究所。

1.2 儀器與設備

紫外分光光度計:UV-1700型,日本島津(中國)有限公司;

恒溫水浴鍋:HH-6數顯型,金壇市佳美儀器有限公司;

離心機:Sigma微型,德國Sigma公司;

電子天平:ME204E型,梅特勒—托利多儀器(上海)有限公司;

酶標儀:Bio-red 550型,上海領成生物科技有限公司。

1.3 試驗方法

1.3.1 體外降脂指標測定

(1) 油脂吸附作用:根據文獻[8]。按式(1)計算葛根醇提物結合油脂量。

(1)

式中:

OA——油脂吸附量,g/g;

W1——稱取葛根醇提物質量,g;

W2——葛根醇提物吸油后質量,g。

(2) 膽固醇吸附作用:

① 膽固醇吸附標準曲線繪制:根據文獻[9]并修改。按0.05的梯度分別精確吸取0.1 mg/mL膽固醇標準工作液(0.00~0.40 mL)于比色管中,加入冰醋酸至0.40 mL,然后向各管中依次加入0.2 mL鄰苯二甲醛(1 mg/mL)試劑及4.0 mL混合酸(V濃硫酸∶V冰醋酸=1∶1),混勻后37 ℃水浴10 min,于550 nm處測定各管的吸光度值,重復3次,將平均值進行線性回歸,以膽固醇質量濃度為橫坐標,吸光值為縱坐標,繪制標準曲線。

② 膽固醇吸附作用測定:根據文獻[10]并修改。取50 mL 10 mg/mL樣品與100 mL 1 mg/mL膽固醇溶液混合,pH值調至7,80 r/min、37 ℃恒溫振蕩2 h,取0.4 mL 待測溶液加入0.2 mL鄰苯二甲醛溶液和混酸4 mL,37 ℃水浴10 min,在4 000 r/min離心20 min,取上清液于550 nm處測定其吸光度。按式(2)計算膽固醇吸附率。

(2)

式中:

CA——膽固醇吸附率,%;

C1——膽固醇加入量,mg/g;

C2——膽固醇剩余量,mg/g。

(3) 膽酸鹽結合能力:

① 繪制膽酸鹽標準曲線:根據文獻[11]并修改。配制甘氨膽酸鈉與牛磺膽酸鈉標準溶液0.12 mmol/L(pH 6.3的磷酸緩沖溶液),取7個10 mL的具塞試管,分別加入0.0,0.1,0.5,1.0,1.5,2.0,2.5 mL上述標準液,加入磷酸緩沖液補充至2.5 mL,再加入7.5 mL 60% H2SO4,70 ℃水浴20 min,冰浴5 min,在387 nm處測定吸光度。分別以甘氨膽酸鈉和牛磺膽酸鈉濃度為橫坐標,吸光度為縱坐標,繪制標準曲線。

② 膽酸鹽結合試驗:根據文獻[12]。分別按(3)和式(4) 計算剩余甘胺膽酸鈉和牛磺膽酸鈉含量。

(3)

式中:

SG——甘胺膽酸鈉吸附率,%;

c0——加入甘胺膽酸鈉的量,mmol;

c1——剩余甘胺膽酸鈉的量,mmol。

(4)

式中:

ST——牛磺膽酸鈉吸附率,%;

c2——加入牛磺膽酸鈉的量,mmol;

c3——剩余牛磺膽酸鈉的量,mmol。

1.3.2 葛根醇提物的提取工藝 將葛根飲片粉碎,過100目篩,稱取干燥粉末,乙醇回流提取,合并濾液,濃縮,得葛根醇提物浸膏,將所得提取物干燥,粉碎,過200目篩,備用。

1.3.3 單因素試驗

(1) 提取時間對體外降脂活性影響:固定乙醇體積分數為70%,提取次數為3次,考察提取時間(0.5,1.0,1.5,2.0 h)對體外降脂指標的影響。

(2) 提取次數對體外降脂活性影響:固定乙醇體積分數為70%,提取時間為1 h,考察提取次數(1,2,3,4次)對體外降脂指標的影響。

(3) 乙醇體積分數對體外降脂活性影響:固定提取次數3次,提取時間為1 h,考察乙醇體積分數(30%,50%,70%,90%)對體外降脂指標的影響。

1.3.4 Box-Behnken響應面法優化提取工藝 根據單因素試驗的結果,分別選擇提取時間、提取次數和乙醇體積分數為自變量,以多個降脂指標作為響應值,采用多指標綜合評分法優化葛根的醇提工藝。

綜合評分:為使試驗結果全面反映葛根醇提工藝,研究賦予4種降脂指標權重均為0.25,根據式(5)計算綜合評分。

W=(OA×0.25+CA×0.25+SG×0.25+ST×0.25)×100%,

(5)

式中:

W——綜合評分,%;

OA——油脂吸附量,g/g;

CA——膽固醇吸附率,%;

SG——甘胺膽酸鈉吸附率,%;

ST——牛磺膽酸鈉吸附率,%。

1.3.5 葛根醇提物棕櫚酸誘導的人肝癌細胞(HepG2)脂肪肝模型影響

(1) 細胞培養:用DMEM高糖(10%胎牛血清,1%青霉素與鏈霉素雙抗)培養基培養HepG2細胞,置于含5% CO2,37 ℃的細胞培養箱生長,待細胞處于對數生長期時進行傳代試驗[13]。

(2) 細胞毒性測定:采用MTT法對葛根醇提物(AL)和棕櫚酸(PA)進行細胞毒性試驗。通過細胞計數使96孔板中每孔細胞密度為1.5×104個/100 μL,放入37 ℃,5% CO2培養箱中培養。利用顯微鏡觀察,待細胞長滿96孔板板底后,加入不同濃度的藥物,PA以50的梯度設置(50~550 μmol/L)共11個濃度,AL設置0.5,1.0,10,20,50,80,100,200,500,800,1 000 μg/mL共11個濃度,繼續培養20 h后,加5 mg/mL MTT溶液20 μL 后繼續培養4 h,吸去溶液后加入150 μL二甲基亞砜,充分反應10 min,使用酶聯免疫檢測儀在490 nm處測量各孔的吸光值。按式(6)計算細胞存活率。

(6)

式中:

CV——細胞存活率,%;

A0——調零組吸光度;

A1——空白組吸光度;

A2——樣品組吸光度。

(3) 細胞內TC、TG水平測定:通過細胞計數調整細胞密度大約為1.5×105個/mL,待細胞80%融合后加藥,共設5個試驗組,每個試驗組設置3個復孔。空白組加DMEM完全培養基,PA組加200 μmol/L PA,3個藥物組分別加質量濃度為100,200,300 μg/mL的AL,繼續培養24 h。細胞培養24 h后,參照文獻[14]方法制備細胞勻漿上清,將其按照檢測試劑盒的說明檢測細胞中TC和TG含量。

(4) HepG2細胞油紅O染色:根據文獻[15]并修改。將HepG2細胞均勻接種在6孔板上,在恒溫培養箱培養至細胞貼壁,吸去上清液,并用PBS洗滌孔板2次,加入ORO Fixative固定液固定30 min,棄去固定液,用蒸餾水洗滌2次,加入60%異丙醇浸洗5 min,棄去異丙醇后加入新配置好的ORO Stain,浸染10~20 min,棄去染色液,水洗2~5次,直到無多余染液,加入Mayer蘇木素染色液,復染1~2 min,棄去染色液后水洗2~5次,加入ORO Bufffer 1 min,棄去,加入蒸餾水覆蓋細胞并在顯微鏡下觀察。

1.4 數據處理

使用SPSS 21.0軟件對試驗數據進行統計學分析,試驗圖表均采用Origin 2019軟件進行繪制,響應面試驗使用Design-Expert.V8.0.6.1進行試驗設計和數據分析,每組試驗均重復3次,試驗結果以平均值±標準差表示。

2 結果與分析

2.1 單因素試驗結果

由圖1和圖2可知,隨提取時間、提取次數增加,降脂活性先增加后減小,可能由于長時間的提取破壞了葛根中異黃酮類物質轉化[16];當提取時間為1 h、提取次數為3次時降脂活性指標均達最高值;因此,最佳提取時間應選擇1 h,最佳提取次數應選擇3次。由圖3可知,當乙醇體積分數達70%時降脂活性最強,可能由于此時溶液極性與葛根中活性物質極性相似[17];因此,最佳乙醇體積分數選取70%。

圖1 提取時間對降脂活性影響Figure 1 Effects of extraction time on lipid-lowering activity

圖2 提取次數對降脂活性的影響Figure 2 Effects of extraction times on lipid-lowering activity

圖3 乙醇體積分數對降脂活性的影響Figure 3 Effects of ethanol volume fraction on lipid-lowering activity

2.2 響應面分析結果

2.2.1 Box-Behnken響應面法優化結果 根據單因素試驗結果,以油脂吸附量、膽固醇吸附率、甘胺膽酸鈉吸附率及牛磺膽酸鈉吸附率的綜合評分為評價指標,對提取時間、提取次數、乙醇體積分數3個因素進行三因素三水平響應面優化設計。試驗因素水平取值見表1,試驗設計與結果見表2。

2.2.2 回歸模型的建立與數據分析 應用Design-Expert.V8.0.6.1軟件對表2中17個試驗點的響應值進行多元回歸擬合,得到二次回歸方程:

Y=97.91+2.39A+1.76B-0.60C-0.28AB-1.40AC+1.95BC-9.80A2-6.99B2-13.87C2。

(7)

由表3可知,模型P<0.000 1,表明模型極顯著,說明二次回歸模型的選用有意義;失擬項P>0.05,表明失擬不顯著,即模型與試驗的差異較小,可以說明其他因素對試驗結果的干擾較小;模型的相關系數R2=0.989 6,說明該回歸方程的擬合程度較高,可用于葛根醇提物工藝的優化與分析。通過P值可以看出,A、A2、B2、C2差異極顯著,B、BC差異顯著。通過方差分析表可知影響綜合評分的主次因素順序為提取時間>提取次數>乙醇體積分數。

2.2.3 響應面分析 通過Design-Expert.V8.0.6.1軟件得到提取時間、提取次數、乙醇體積分數的交互作用對葛根醇提物工藝綜合評分影響的3D響應面圖和等高線圖,試驗結果見圖4。3D圖傾斜度越大,等高線的形狀越扁平說明二者交互作用越強[18],由圖4可以看出,AB交互作用不顯著,AC、BC交互作用較顯著,與上述方差分析表結論一致。

2.2.4 工藝優選及驗證 通過對回歸模型方程求解,得出葛根最佳醇提工藝為提取時間1.06 h,提取次數3.13次,乙醇體積分數72.10%,在此條件下綜合評分預計為98.28%。為了便于試驗,將提取工藝參數進行調整:提取時間1 h,提取次數3次,乙醇體積分數70%。

為了進一步驗證所選工藝為最優且穩定性良好,重復進行3組驗證實驗,結果見表4。由表4可知,各指標效果較好且RSD值均較小,綜合評分較預測值高,說明響應面法優化后的工藝為最佳提取工藝,且工藝穩定性較好。

2.3 葛根醇提物體外降脂細胞試驗

2.3.1 PA及AL對細胞的毒性測定 如圖5所示,用0~550 μmol/L PA處理細胞24 h,MTT結果顯示,當PA濃度達到200 μmol/L時,細胞出現明顯的損傷,存活率明顯下降,故在建立脂肪堆積模型時,選用100 μmol/L的PA誘導細胞并培養24 h。

表1 Box-Behnken響應面試驗因素水平表Table 1 Box-Behnken response surface test factor level table

表2 響應面試驗設計與結果Table 2 Response surface test design and results

表3 響應面二次回歸方程模型方差分析結果?Table 3 Response surface quadratic regression equation model variance analysis results

圖4 響應面分析圖Figure 4 Response surface analysis diagram

表4 提取工藝驗證實驗結果Table 4 Extraction process validation test results

如圖6所示,用0~1 000 μg/mL AL處理細胞24 h,MTT結果顯示,在0~500 μg/mL濃度范圍內的AL對細胞生長無顯著影響,當樣品質量濃度達到800 μg/mL時,表現出明顯的細胞毒性,細胞活力降至69.91%,故在給藥時,選取的樣品最高質量濃度為500 μg/mL。

2.3.2 葛根醇提物對棕櫚酸誘導HepG2細胞內TG、TC含量的影響 PA能夠誘導胞內的TC含量提升,膽固醇代謝和脂質代謝的關系密不可分,Fungwe等[19-20]研究發現攝入膽固醇的同時TG含量也會隨之升高,膽固醇還可以通過抑制脂肪酸的氧化分解從而增加TG水平。由圖7可知,PA處理HepG2細胞后,使得細胞內TG、TC含量明顯升高,在給予AL干預后能夠降低細胞內TG、TC含量,且呈劑量依賴,AL高劑量組TG和TC含量分別降至1.24,0.89 mmol/L,幾乎與空白組的含量持平。說明AL可能是通過膽固醇代謝進而影響脂質代謝,降低TG和TC的含量,進一步驗證了葛根醇提物有較好的體外降脂活性。

2.3.3 HepG2細胞油紅O染色 如圖8所示,未經PA處理的空白對照組的細胞形態正常,細胞輪廓清晰可見,未見明顯脂滴聚集。經過24 h PA處理后的細胞,黃色脂滴量明顯增加,而與PA組相比,AL和PA共同作用組隨著AL濃度的增加其細胞內脂滴量逐漸減少,細胞周圍脂質積累也有所降低。由此表明,AL可抑制HepG2細胞周圍脂滴聚集。

圖5 PA對HepG2細胞活力影響Figure 5 Effects of PA on the viability of HepG2 cells

圖6 AL對HepG2細胞活力影響Figure 6 Effects of AL on the viability of HepG2 cells

圖7 HepG2細胞內TC、TG含量Figure 7 Contents of TC and TG in HepG2 cells

圖8 對HepG2細胞脂質積累的影響Figure 8 Effects of lipid accumulation in hepatoma cells

3 結論

以油脂吸附量、膽固醇及膽酸鹽吸附率進行綜合評分,在前期單因素試驗的基礎上,確定試驗水平后通過響應面法并結合回歸模型方程,得出葛根醇提物最佳提取工藝為提取時間1 h,提取次數3次,乙醇體積分數70%。隨后測定了棕櫚酸誘導的人肝癌細胞細胞內甘油三酯、總膽固醇含量并對其進行油紅O染色,結果顯示,人肝癌細胞中的甘油三酯、總膽固醇含量明顯下降及胞內脂滴聚集逐漸減少,葛根醇提物體外降脂作用較好。

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