綠蘿的組織培養研究進展

伍席軍，張鵬，袁云香

綠蘿的組織培養研究進展

伍席軍，張鵬，*袁云香

（渭南師范學院化學與環境學院，陜西渭南714099）

具體論述了綠蘿在組織培養過程中通過探討外植體的處理及培養基的篩選，從而得出影響綠蘿組織培養的主要因素，旨在進一步研究植物組織培養技術對綠蘿生長發育的影響，同時完善綠蘿植物組織培養體系。

綠蘿；組織培養；外植體；培養基

綠蘿（Scindapsus aureus），又名黃金葛、魔鬼藤等，屬多年生常綠藤本植物。由于具有頑強的生命力，可遇水即活，也被稱為“生命之花”。在室內栽培綠蘿，不僅可以吸附塵埃、凈化空氣，還能起到吸收有害物質的作用[1]。由于綠蘿的眾多優點，使大眾對其需求日益加劇，進而導致對高品質的優良植株和快速繁殖技術的需求也呈快速增長趨勢。然而，目前綠蘿的繁殖方式普遍采用扦插法，但該方法存在操作過程繁瑣、耗費時間長、繁殖系數低等缺點，無法在短期內快速獲得大量優良品種，難以滿足市場需求[2]。

植物組織培養技術是在人為控制的外界條件下對植物進行離體培養，能根據植物不同部位的組織或器官提供適宜的培養環境，不僅能使植物在生長過程中免受自然災害的影響，也會縮短植物的生長周期，即能夠在短時間內獲得大量完整植株。因此，將綠蘿進行植物組織培養對其研究和生產都具有重要意義。

1 外植體

1.1 外植體的選擇

張瑜等人[3]以綠蘿的莖尖、嫩葉、帶節莖段和不帶節莖段為外植體，經過試驗對比，發現帶節莖段是進行組織培養最好的外植體。林茂等人[4]以綠蘿的葉片和無節莖段作為外植體，通過研究發現2種外植體均能產生愈傷組織，但是無節莖段產生愈傷組織速度較快，產生不定芽的速度也快，其培養效果優于葉片。黃鳳蘭等人[5]認為，將綠蘿帶節莖段作為外植體，可以增強腋芽生枝能力。而郭英等人[6]認為，以綠蘿的嫩芽為外植體進行培養最為快捷。

1.2 外植體的處理

1.2.1 外植體的消毒

不同外植體所需的消毒時間各不相同。范俊崗[7]發現，以綠蘿嫩葉為外植體，滅菌時間的長短對其污染率和褐化率都有顯著影響。滅菌時間越長，外植體褐化率會隨之而增加，而外植體污染率則會降低；經過研究得出綠蘿外植體的最佳滅菌時間為6 min。張盛圣等人[8]通過統計外植體的污染率和存活情況，發現以帶節莖段為外植體的最佳滅菌時間為15 min。馬艷麗等人[9]以綠蘿頂芽、莖段為外植體，認為消毒12 min效果最好，且95%無污染。若時間過短會增加細菌和真菌感染率；若時間過長則會對腋芽造成較大傷害，使其成活率降低。

1.2.2 外植體的截取

外植體需裁剪成合適的大小，并將其以適當的數量平均接種到每一份培養基中，以確保培養基能夠被外植體充分利用。將經過滅菌消毒處理的外植體葉片切成0.5 cm×0.5 cm大小的片段；將外植體莖段切成1 cm左右的小段，外植體的材料決定了接種時對培養基中營養物質的吸收方式。因而在接種外植體時，應注意其姿勢的擺放。葉片接種時，正面朝上；莖段接種時，橫放于培養基上。

2 培養基

在植物組織培養過程中，MS培養基和1/2 MS培養基是目前使用最廣泛的基本培養基。黃鳳蘭等人[5]經過篩選發現在1/2 MS培養基中，綠蘿外植體褐化率低于MS培養基，證明1/2 MS培養基的效果優于MS培養基。范俊崗[7]通過觀察培養基對愈傷組織的誘導情況，認為MS培養基誘導綠蘿外植體愈傷組織的效果最佳。

2.1 外植體培養

2.1.1 愈傷組織的誘導

以MS培養基為基礎，將消毒處理的愈傷組織接種到培養基上，添加不同質量濃度、不同種類、不同配比的植物激素，統計其出愈率并篩選出最適合誘導愈傷組織的培養基。目前，主要使用的植物激素為6-芐氨基腺嘌呤（6-BA）、萘乙酸（NAA）、2,4-二氯苯氧乙酸（2,4-D）等。6-BA是一種既可以促進芽的形成，又能誘導愈傷組織的細胞分裂素；NAA能促進細胞分裂，誘導不定根的形成；2,4-D可以起到促進生根的作用。

張盛圣等人[8]認為，最適合誘導愈傷組織分化的激素組合是MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.7 mg/L+ 2,4-D 0.3 mg/L。陳廣玉[10]根據愈傷組織的分化和長勢情況，認為最適合誘導愈傷組織的培養基為MS+ 6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L+2,4-D 0.5 mg/L；誘導帶節莖段叢生芽的最適培養基為MS+6-BA 1.0 mg/L+ NAA 0.2 mg/L+2,4-D 0.1 mg/L。

2.1.2 愈傷組織的分化誘導

林茂等人[4]在誘導綠蘿的愈傷組織和不定芽時發現，以綠蘿的葉片和無節莖段為外植體，進行繼代培養的最適培養基為MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L，且增殖系數較高，產生不定芽所需時間較短，長勢也較好。黃鳳蘭等人[5]在誘導愈傷組織分化出胚狀體后，將其接種到1/2 MS培養基中，發現即使不添加任何生長調節物質，該胚狀體的分化率仍然很高。陳廣玉[10]將綠蘿葉片和莖段誘導形成的叢生芽進行增殖培養，發現最適的增殖培養基是MS+6-BA 2.0 mg/L+ NAA 0.5 mg/L。

2.2 生根和移栽

2.2.1 生根

郭英等人[6]認為基本培養基的濃度越低越有利于根的生長，而且在植物激素中，NAA比IBA（吲哚乙酸）更適合誘導綠蘿根的生長。張盛圣等人[8]則認為，當生根培養基為1/2 MS+NAA 0.1 mg/L時，植物根的數量最多，且根粗壯。

2.2.2 移栽

待根長至3～5 cm時，將生根的試管苗移至溫室，進行自然光4～5 d煉苗。洗去試管苗根部的瓊脂和部分殘留的培養基，將其移栽于腐殖土和沙土比例為1∶1的苗床中。在移栽初期，保持苗床空氣濕度在85%以上，即以保持葉面濕潤為準，溫度控制在25～30℃。

3 討論與分析

3.1 植物生長調節劑的影響

馬艷麗等人[9]以6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L的激素組合誘導不定芽，試驗結果表明，當NAA質量濃度低于0.05 mg/L時，不定芽的數量開始逐漸變少且不定芽較小；當NAA質量濃度增加至0.5 mg/L時，形成不定芽的時間也開始變長，由此可能會導致不定芽的遺傳特性發生改變。林茂等人[4]認為NAA質量濃度越高，葉片產生愈傷組織的時間就越短，而莖段則無明顯變化；6-BA質量濃度越高，葉片和莖段產生愈傷組織的時間都會縮短。因此，在誘導綠蘿愈傷組織過程中，6-BA和NAA是必不可少的。

3.2 外植體的影響

在誘導愈傷組織過程中，除了植物激素外，外植體本身也是重要的影響因素。由于植物細胞具有全能性，即任何外植體都具有發育成為完整植株的潛能，但是不同的外植體，在誘導過程中始終存在著明顯的差異。林茂等人[4]認為，在選擇綠蘿外植體時應該要多方面去考慮。若外植體材料較多，可選取莖段；若外植體材料非常稀缺、寶貴，則應該采用葉片為外植體。

3.3 污染

外植體的污染是由于外植體自身內部附帶有許多細菌，這些細菌很難被清除。劉玲玲[11]認為，細菌的數量會隨著外植體的生理特征，以及外界環境的變化而變化。外植體的生理年齡越大，所帶的細菌越多；氣候越濕潤，會使菌類繁殖旺盛；外植體滅菌不徹底，也會使其滅菌效果變差，進而為后期的試驗操作埋下隱患。

3.4 褐化現象

王苑等人認為，在組織培養過程中，不同種類植物所發生褐化的頻率和程度都是有差異的。相對于草本植物，木本植物的酚類物質較多，因而在培養過程中更容易發生褐化現象。溫度也是決定植物組織褐化的重要因素。溫度過高會促進酚類物質合成，也會增強多酚氧化酶的活性，加速酚類物質氧化成醌類物質，從而增強褐化現象；溫度過低則會抑制酚類物質的氧化，降低褐化率。

3.5 防治措施

3.5.1 污染的防治

外植體選擇時，應以無病蟲害的健壯綠蘿植株為原材料，并選擇正常發育的組織或器官作為外植體。由于莖段擁有穩定的遺傳特性，且又有生長速度快、病毒含量低等優點，因而在培養綠蘿時，莖段是最佳的外植體。

在對外植體進行接種前，要在確保不會損傷外植體的前提下，對其進行徹底的消毒處理。因此，應謹慎選擇消毒劑。對于一些比較難消毒的外植體，可采用適當延長消毒時間或多次浸泡消毒的方法。

3.5.2 褐化現象的防治

選擇適宜的外植體和培養基是目前為止防止植物體褐化的主要手段。

在培養基中加入抗氧化劑，或者可直接將外植體放入到抗氧化劑中進行預處理，對抑制酚類物質的形成也有極好的效果。在植物組織培養過程中，常用的抗氧化劑有硫代硫酸鈉和多胺等，常用的吸附劑有聚乙烯吡咯烷酮（PVP）和活性炭（AC）等。參考文獻：

[1]黃玉源，張施君.天南星科觀賞植物重要品種及其繁育技術[J].仲愷農業，2002（4）：54-59.

[2]崔蕊絨.校本課程綠蘿的組織培養實驗[J].新課程（中旬），2012（9）：79-81.

[3]張瑜，關力，楊曉賀.花葉綠蘿的組織培養與快速繁殖[J].北方園藝，2012（12）：155-157.

[4]林茂，王華新，唐遒冥，等.綠蘿組織培養與快繁技術[J].南方農業學報，2012（10）：1 447-1 451.

[5]黃鳳蘭，梁冰，盧寶偉，等.小葉綠蘿的組織培養技術研究[J].北方園藝，2004（6）：76-78.

[6]郭英，梁國魯.小葉綠蘿同源多倍體誘導研究初報[J].西南園藝，2002（4）：1-3.

[7]范俊崗.綠蘿組織培養及離體再生體系研究[D].雅安：四川農業大學，2009.

[8]張盛圣，李娜，張黎.花葉綠蘿組培快繁技術研究[J].農業科學研究，2015（4）：19-21，69.

[9]馬艷麗，馮豹.青葉綠蘿組培快繁體系的研究[J].南方農業，2015，9（21）：111，113.

[10]陳廣玉.綠蘿的組織培養及快速繁殖的研究[J].北京農業，2011（3）：16-17.

[11]劉玲玲.植物組織培養過程中的污染及其防治方法[J].甘肅高師學報，2012（5）：21-23.◇

Research Progress of Scindapsus aureus Tissue Culture

WU Xijun，ZHANG Peng，*YUAN Yunxiang
（College of Chemistry and Environment，Weinan Normal University，Weinan，Shaanxi 714099，China）

This paper discusses the scindapsus aureus in the tissue culture process by treatment of explant and medium induction and screened，to obtain the main factors that affect tissue culture，aims to investigate the effects of plant tissue culture technology on the growth of scindapsus aureus.At the same time,improve the scindapsus aureus plant tissue culture system.

scindapsus aureus；tissue culture；explant；medium

S682

A

10.16693/j.cnki.1671-9646（X）.2017.03.050

1671-9646（2017）03b-0077-02

2017-03-02

渭南師范學院特色學科建設項目（14TSXK04）；渭南師范學院大學生創新項目（15YXK022）。作者簡介：伍席軍（1991—），男，在讀本科，研究方向為植物組織培養。

*通訊作者：袁云香（1980—），女，碩士，副教授，研究方向為植物學及其次生代謝產物。