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高脂飲食誘導肥胖對大鼠心臟、肝臟線粒體呼吸功能的影響

2022-10-18 02:33:46鄒志卓許松姬
中國獸醫雜志 2022年8期

鄒志卓 , 黃 鶴 , 許松姬

(延邊大學醫學院,吉林 延邊朝鮮族自治州 133000)

肥胖是一種能量攝入大于能量消耗的代謝性疾病[1]。當今社會,隨著經濟發展、飲食結構調整和運動量減少,肥胖人數逐年增加[2]。肥胖是現今影響全球的公共衛生問題,是很多疾病的高危因素,如高血壓、高血脂、脂肪肝、動脈粥樣硬化、癌癥等[3]。關于肥胖引起心血管疾病的研究很多,其中肥胖引起的臟器線粒體損傷[4-5]也受到廣泛關注。本試驗擬通過高脂飲食誘導大鼠肥胖,觀察肥胖對其心臟、肝臟線粒體呼吸功能的影響,通過檢測大鼠臟器線粒體呼吸控制率(Respiratory control ratio,RCR)和純化線粒體磷氧比(Adenosine diphosphate/ Oxygen,ADP/O),直觀反映飲食誘導肥胖對其心臟、肝臟線粒體呼吸功能的影響,為進一步研究肥胖相關心血管疾病的線粒體損傷機制提供理論依據。

1 材料與方法

1.1 實驗動物 SD清潔級雄性大鼠108只,體重(230±10)g,購自北京維通利華實驗動物技術有限公司,許可證號:SCXK(京)2016—0006,飼養于吉林醫藥學院動物實驗室。

1.2 主要試劑 心臟和肝臟組織線粒體分離緩沖液A、B(自制);磷酸鹽(Phosphate buffered saline,PBS)緩沖液、ADP/O檢測試劑盒、RCR檢測試劑盒,均購自上海杰美基因醫藥科技有限公司。

1.3 分組及處理 大鼠適應性飼養1周。自由飲水和攝食,記錄每天進食量,每周稱量體重1次。高脂飼料飼養2周后,根據體重增加量降序排序,位于體重增加量上1/3的大鼠作為飲食誘導肥胖(Diet-induced obesity,DIO)組,位于體重增加量下1/3的大鼠作為飲食誘導肥胖抵抗(Diet-induced obesity resistance,DR)組,位于體重增加量中間的為正常對照(Control,CON)組,每組36只。DIO組和DR組給予高脂飼料,CON組給予基礎飼料,持續喂養18周。

1.4 線粒體提取 為觀察飲食誘導肥胖過程中心臟和肝臟線粒體呼吸功能的動態變化,在飲食誘導肥胖過程中第8、10、12、14、16周和第18周,分別從CON組、DIO組和DR組中每組隨機選取6只大鼠處死,立即取心臟和肝臟組織置于預冷的PBS中。洗去血液,充分剪碎、勻漿,在4 ℃條件下使用低溫離心機3 000 g離心5 min,棄上清,取沉淀。心臟組織用心臟分離緩沖液A(120 mol/L NaCl,20 mol/L HEPES,2 mol/L MgCl2,1 mol/L EGTA,5 g/L 牛血清白蛋白;pH 7.4),600 g離心10 min,取上清,再次離心(4 ℃,17 000 g,10 min),沉淀用心臟緩沖液B(300 mol/L 蔗糖,2 mol/L HEPES,0.1 mol/L EGTA;pH 7.4)重懸即制成心臟線粒體懸液。肝臟組織用肝臟分離緩沖液A (0.22 mol/L甘露醇,0.07 mol/L蔗糖,0.02 mol/L HEPES,2 mol/L Tris-HCl,1 mol/L EDTA;pH 7.2),于4 ℃條件下1 000 g離心10 min,取上清,再次離心(4 ℃,16 000 g,4 min),棄上清,取沉淀后使用肝臟緩沖液B(0.22 mol/L甘露醇,0.07 mol/L蔗糖,0.01 mol/L Tris-HCl,1 mol/L EDTA;pH 7.2)重懸即制成肝臟線粒體懸液。心臟和肝臟部分所有操作均在0~4 ℃進行。

1.5 ADP/O水平的測定 預熱氧電極儀到37 ℃后加入2 mL介質液(Reagent A)到反應玻璃槽,開始記錄氧濃度O1。1 min后加入50 μL待測的心臟線粒體懸液和肝臟線粒體懸液,持續1 min后加入10 μL底物液(Reagent B)。持續記錄直至下行斜線出現拐點,記錄氧濃度O2,繼續加入10 μL底物液(Reagent B),記錄氧濃度O3,持續記錄直至下行斜線出現拐點,記錄氧濃度O4,按照公式(1)和公式(2)計算氧濃度降低值和線粒體磷氧比(ADP/O)。

氧濃度降低值=(O1-O2)+(O3-O4)

(1)

ADP/O=

(2)

1.6 RCR水平的測定 將2 mL介質液(Reagent A)加入到反應玻璃槽,開始記錄氧濃度。1 min后加入50 μL待測的心臟線粒體懸液和肝臟線粒體懸液,持續1 min后加入10 μL底物液(Reagent B)——開始Ⅳ態呼吸。持續記錄2 min,出現氧濃度緩慢下降,繼續加入20 μL底物液(Reagent C)——開始Ⅲ態呼吸,持續記錄直至下行斜線出現拐點,記錄數據,按照公式(3)分別測算Ⅲ態呼吸速率和Ⅳ態呼吸速率,

(3)

并按照公式(4)計算RCR。

(4)

1.7 統計分析 連續變量用平均值±標準差(Mean±SD)表示,并使用獨立樣本t檢驗進行比較。所有的數據分析使用IBM SPSS程序(26版,SPSS公司,美國芝加哥)進行,所有的圖表使用GraphPad Prism軟件(8版,GraphPad Prism,美國加州圣地亞哥)進行。

2 結果

2.1 飲食誘導肥胖大鼠的體重變化 各組大鼠初始體重無差異,試驗第1周開始,DIO組體重明顯高于DR組(P<0.001),第2周開始DIO組體重明顯高于CON組(P<0.001)。試驗第1、2、3、5、6、7、10、11周和第12周時,CON組大鼠體重明顯高于DR組(P<0.05),見表1。

表1 大鼠每周體重變化情況Table 1 Weekly weight change in rats

2.2 心臟線粒體RCR和ADP/O測定 DIO組大鼠心臟線粒體RCR在試驗第16周和第18周時顯著低于CON組(P<0.05),DR組在第16周和第18周也表現出低于CON組的趨勢,在第18周有統計學差異(P<0.05),見圖1。ADP/O結果與RCR表現出相似的趨勢,均在第16周和第18周時,DIO組與DR組ADP/O水平顯著低于CON組(P<0.05),見圖2。

圖1 大鼠心臟線粒體呼吸控制率(A)和磷氧比(B)Fig.1 Rat heart mitochondrial respiratory control rate (A) and P/O ratio (B)a:DIO組與CON組比較,P<0.05; b:DR組與CON組比較,P<0.05a:Comparison between DIO group and CON group, P<0.05; b:Comparison between DR group and CON group, P<0.05

2.3 肝臟線粒體RCR和ADP/O測定 大鼠肝臟線粒體呼吸功能表現出較心臟更強的抵抗能力,RCR結果僅在第16周時出現了DIO組顯著低于CON組(P<0.05),其余時間點各組間均無統計學差異(P>0.05)(圖2A)。ADP/O在第10周時,DIO組有高于CON組的趨勢(P=0.057),在第18周時,DIO組ADP/O顯著低于DR組(P<0.05),且有低于CON組的趨勢(P=0.093)(圖2B)。

圖2 大鼠肝臟線粒體呼吸控制率(A)和磷氧比(B)Fig.2 Rat liver mitochondrial respiratory control rate (A) and P/O ratio (B)a:DIO組與CON組比較,P<0.05; b:DIO組與DR組比較,P<0.05a:Comparison between DIO group and CON group,P<0.05; b:Comparison between DIO group and DR group,P<0.05

3 討論

肥胖個體易發生心肌脂類蓄積[6]、心肌耗氧量和脂肪酸氧化增加以及心肌效能降低;心肌線粒體呼吸功能降低和ATP合成減少,氧化磷酸化減弱,心肌解偶聯蛋白3(Uncoupling protein 3,UCP3)表達增加[7]。一旦線粒體受到外界因素影響,富含線粒體的心臟將很快出現相關反應[8]。本試驗發現,第8~16周時,與肝臟相比,心臟各組各項指標都出現了十分明顯的變化。心臟線粒體對肥胖所致的損傷最為敏感。通過第14~18周心臟指標的變化,發現心臟在第16周時下降趨勢減緩,但因為試驗時間原因,不能確定心臟是否已出現了失代償[9]。與肝臟相比,心臟出現失代償的趨勢更為明顯,并且從最開始測定各組指標時,心臟的波動比肝臟更劇烈,說明心臟的線粒體損傷更嚴重。

在保持機體代謝平衡的各種臟器中,肝臟起至關重要的作用[10]。除了脂類代謝主要在肝臟中發生外,肝臟同時與骨骼肌一起保持機體的血糖平衡。本試驗發現,高脂飲食喂養大鼠肝臟并沒有出現明顯的失代償,這可能便是肝臟在脂類代謝和維持血糖平衡中發揮重要作用的原因。

本試驗顯示,高脂飲食可以引起大鼠心臟、肝臟線粒體損傷,其中大鼠心臟對肥胖所致的線粒體損傷尤為敏感,且心臟各項指標在較短時間內出現波動,而肝臟也在之后的短時間內出現指標波動。DR組大鼠比DIO組大鼠的線粒體代償能力更強,這種現象在不同臟器均有體現,在肝臟中DR組大鼠各項水平與CON組更相近。雖然本次試驗并未出現明顯的失代償,但是根據各項指標趨勢可以推測,隨著時間的進行,DR組大鼠出現失代償的時間將晚于DIO組。得出上述試驗結果的可能原因:在高脂飲食誘導過程中,DIO組大鼠體內在肥胖過程中會逐漸出現生理性代償作用,不同程度地緩沖適應高脂肥胖給機體帶來的一系列生理性損害。與此同時,大鼠各臟器及其線粒體含量、鼠種不同、飼養環境、鼠齡等都可能是出現不同試驗結果的影響因素。

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