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口蹄疫O型LPB-ELISA免疫抗體高通量定性檢測技術(shù)的建立

2022-05-23 10:33:02祁君王麗
中國動(dòng)物保健 2022年5期

祁君 王麗

摘要:為提高偶蹄動(dòng)物口蹄疫O型液相阻斷酶聯(lián)免疫吸附(LPB-ELISA)免疫抗體檢測效率,優(yōu)化動(dòng)物疫情監(jiān)測策略,提高動(dòng)物疫病防控效能。結(jié)合基層一線對(duì)免疫質(zhì)量評(píng)價(jià)實(shí)際需求及財(cái)力人力等因素,在該試驗(yàn)通用操作步驟基礎(chǔ)上,特對(duì)操作步驟及96孔ELISA板檢測樣品布局進(jìn)行了技術(shù)改進(jìn)。改進(jìn)后的1塊ELISA板可檢測樣品80份,在檢測通量上較試劑盒使用說明書標(biāo)明1塊ELISA板可檢測樣品10~20份增加到4~8倍,在ELISA板檢測樣品利用率上從10.42%~20.83%提高到83.33%,在檢測費(fèi)用、檢測時(shí)效及人力成本上則可壓縮4~8倍。同時(shí),亦可減少試驗(yàn)廢棄物產(chǎn)生量,有一定的社會(huì)效益及生態(tài)效益。改進(jìn)后的口蹄疫O型LPB-ELISA免疫抗體高通量定性檢測技術(shù),適用于大樣本情況下以免疫抗體合格率為指標(biāo)的免疫質(zhì)量評(píng)價(jià)工作,尤其對(duì)檢測數(shù)量多、經(jīng)費(fèi)人員配置有限,且要求出結(jié)果快的基層一線,具有很好的現(xiàn)實(shí)操作性和借鑒性。

關(guān)鍵詞:口蹄疫;LPB-ELISA;免疫抗體;高通量;定性檢測

口蹄疫是由口蹄疫病毒引起的偶蹄動(dòng)物急性、熱性、接觸性傳染病,對(duì)畜牧業(yè)健康發(fā)展危害巨大,該病被世界動(dòng)物衛(wèi)生組織列入法定上報(bào)傳染病[1]。2005年5月—2017年1月,我國共發(fā)布了125次口蹄疫疫情,主要為O型和A型,口蹄疫防控形勢依然嚴(yán)峻[2]。目前,我國對(duì)口蹄疫采取強(qiáng)制免疫的防控政策,而提高免疫質(zhì)量無疑是對(duì)該病防控最有力的措施之一。LPB-ELISA試驗(yàn)則是目前用于評(píng)價(jià)免疫質(zhì)量方面普遍采用的技術(shù),但該試驗(yàn)通用操作步驟較為繁瑣,尤其是被檢血清倍比稀釋次數(shù)多、ELISA板利用率低,在進(jìn)行大量樣品檢測時(shí),需要配備較多檢測人員及工作經(jīng)費(fèi),開展工作耗時(shí)費(fèi)力。有研究者就基層實(shí)驗(yàn)存在諸多不利的現(xiàn)實(shí)條件對(duì)獸醫(yī)血清學(xué)試驗(yàn)方法進(jìn)行了改進(jìn),今后如何在諸多不利條件下更加準(zhǔn)確快速地開展血清學(xué)試驗(yàn),仍有不斷努力的空間[3]。本文在LPB-ELISA試驗(yàn)通過操作技術(shù)基礎(chǔ)上,參照口蹄疫診斷技術(shù)標(biāo)準(zhǔn)(GB/T18935—2018),以定性需求為主要考量目的,合理設(shè)置被檢血清稀釋度(免疫抗體合格滴度),將被檢血清多步倍比稀釋步驟進(jìn)行一步到位稀釋改進(jìn),并對(duì)ELISA板檢測布局進(jìn)行了優(yōu)化,建立起了基于以免疫抗體合格率為評(píng)價(jià)指標(biāo)的口蹄疫O型LPB-ELISA免疫抗體高通量定性檢測技術(shù),為基層開展口蹄疫免疫抗體質(zhì)量評(píng)價(jià)提供一種高效、快速、經(jīng)濟(jì)的檢測方法。

1 材料與方法

1.1 材料

診斷試劑:10塊裝口蹄疫O型LPB-ELISA抗體檢測試劑盒(內(nèi)含:口蹄疫O型病毒抗原、口蹄疫O型豚鼠抗體工作液、兔抗豚鼠IgG-HRP工作液、口蹄疫O型陽性對(duì)照血清、口蹄疫陰性對(duì)照血清、25倍PBST濃縮液、終止液、TMB底物A溶液、TMB底物B溶液、兔抗包被ELISA板、U型96孔抗原抗體反應(yīng)板、移液槽、封板膜),由蘭州獸研生物科技有限公司生產(chǎn),自制去離子水或蒸餾水;主要器材:酶標(biāo)儀、洗板機(jī)、微量振蕩器、生化恒溫培養(yǎng)箱、冷藏柜、96孔血清稀釋板(加樣槽)、量筒(10、100、1,000mL等不同規(guī)格)、微量可調(diào)移液器(5、10、50、100、200、300、1,000μL等不同規(guī)格)、吸水紙巾、錫紙;被檢樣品:偶蹄動(dòng)物血清。

1.2? 方法

1)試劑準(zhǔn)備。稀釋PBST濃縮液:將25倍PBST濃縮液用去離子水或蒸餾水稀釋成1倍PBST(1份濃縮液加24份去離子水或蒸餾水進(jìn)行稀釋),用于洗板或稀釋血清和病毒抗原。

2)試驗(yàn)程序。①稀釋被檢血清:被檢血清稀釋布局如圖1所示,在96孔血清稀釋板第1~10列每孔各加315μL的1倍PBST,每孔再各加5μL的被檢血清后混勻,此時(shí)每孔被檢血清的稀釋度為1:64。

②平移稀釋后的被檢血清并稀釋陰陽性對(duì)照血清。將稀釋度為1:64的被檢血清以50μL/孔的量,從96孔血清稀釋板按次序平移至U型抗原抗體反應(yīng)板上。在U型抗原抗體反應(yīng)板第11列每孔各加50μL的1倍PBST,在第11列A11孔加50μL的陽性對(duì)照血清,然后吹打3次,以50μL/孔沿列連續(xù)倍比稀釋至H11孔后棄去50μL液體,由于陽性對(duì)照血清在廠家生產(chǎn)時(shí)已預(yù)先作了8倍稀釋,此時(shí)第11列8個(gè)孔的陽性對(duì)照血清稀釋度則為1:16~1:2048。在第12列A12到B12兩個(gè)孔每孔各加50μL的1倍PBST,在A12孔加50μL的陰性對(duì)照血清,然后吹打3次以50μL/孔連續(xù)倍比稀釋至B12孔后棄去50μL液體,此時(shí)A12到B12兩個(gè)孔陰性對(duì)照血清的稀釋度則為1:2~1:4。

③加病毒抗原。將病毒抗原用1倍PBST稀釋至工作濃度后,以50μL/孔的量加入到U型抗原抗體反應(yīng)板上的被檢血清、陰陽性對(duì)照血清的稀釋孔內(nèi)。如圖2所示,由于加入了等量的病毒抗原液體,此時(shí)被檢血清的稀釋度則從1:64變?yōu)?:128,陽性對(duì)照血清的稀釋度則從1:16~1:2048變?yōu)?:32~1:4096,陰性對(duì)照血清的稀釋度則從1:2~1:4變?yōu)?:4~1:8。同時(shí),在第12列E12到H12四個(gè)孔每孔僅加100μL稀釋至工作濃度的病毒抗原。封板震蕩,4℃靜置過夜或37℃孵育90min。

④平移U型板內(nèi)液體。將U型板內(nèi)各孔液體以50μL/孔的量按次序平移至兔抗包被ELISA板上,封板,37℃孵育60min。

⑤洗板加豚抗。洗ELISA板6次,在吸水紙巾上甩拍干,以50μL/孔的量均加口蹄疫O型豚鼠抗體工作液,封板,37℃孵育60min。

⑥洗板加兔抗。洗ELISA板6次,在吸水紙巾上甩拍干,以50μL/孔的量均加兔抗豚鼠IgG-HRP工作液,封板,37℃孵育60min。

⑦洗板加底物溶液。洗ELISA板6次,在吸水紙巾上甩拍干,將TMB底物A溶液和B溶液以1:1比例混勻,以50μL/孔的量均加混勻后的底物溶液,封板,37℃溫育15min進(jìn)行顯色反應(yīng)。

⑧加終止液并讀值。以50μL/孔的量均加終止液,混勻后在酶標(biāo)儀上讀取OD450nm值。

3)試驗(yàn)成立條件。每塊ELISA板設(shè)4孔病毒抗原對(duì)照,病毒抗原對(duì)照至少兩孔OD450nm值在1.0~2.0范圍內(nèi),陽性血清對(duì)照抗體滴度應(yīng)在1:512~1:2048之間,陰性血清對(duì)照抗體滴度應(yīng)小于1:4。

4)結(jié)果判定。以病毒抗原對(duì)照OD450nm平均值的50%為臨界值(對(duì)照值),被檢血清稀釋孔OD450nm值大于臨界值的為陰性孔,小于或等于臨界值的為陽性孔。被檢血清抗體滴度大于或等于1:128判為陽性(免疫抗體合格),被檢血清抗體滴度小于1:128判為陰性(免疫抗體不合格)。

2 結(jié)果與分析

從表1可看出,在檢測通量上,改進(jìn)后的1塊ELISA板可檢測樣品份數(shù)較試劑盒使用說明書原有布局增加到4~8倍,在檢測樣品ELISA板利用率上則大幅度提高到83.33%。同時(shí),在檢測試劑盒費(fèi)用、檢測時(shí)效及人力成本上則可壓縮4~8倍,也可減少診斷液及相關(guān)耗材等試驗(yàn)廢棄物產(chǎn)生量,有較為積極的社會(huì)效益及生態(tài)效益。

3 討論

3.1 關(guān)于定性檢測與定量檢測的適用性

就目前基層一線對(duì)口蹄疫免疫質(zhì)量評(píng)價(jià)而言,主要是基于農(nóng)業(yè)農(nóng)村部所要求的免疫抗體合格率這一指標(biāo)來評(píng)價(jià)偶蹄動(dòng)物口蹄疫免疫質(zhì)量的。免疫抗體合格率大于等于70%的畜群,則表明免疫質(zhì)量較高,一定范圍內(nèi)建立起了有效的免疫屏障,在免疫期內(nèi)牲畜對(duì)口蹄疫疫病具有較強(qiáng)的免疫持久性和保護(hù)力。免疫抗體合格率小于70%的畜群,則表明畜群免疫質(zhì)量較差,存在較大的疫病傳播風(fēng)險(xiǎn),提示需強(qiáng)化免疫。因此,在此評(píng)價(jià)指標(biāo)和實(shí)際工作考量下,合格或不合格則是免疫抗體檢測的關(guān)鍵,此評(píng)價(jià)只需定性結(jié)果,無需具體抗體滴度。本文所建立的口蹄疫O型LPB-ELISA免疫抗體高通量定性檢測技術(shù),則能很好地適用于基于此指標(biāo)下大樣本的定性檢測需求,也類比適用于A型和亞洲I型LPB-ELISA免疫抗體的定性檢測。一個(gè)好的疫病防控路線,一定是綜合權(quán)衡技術(shù)、財(cái)力、人力、推行難易程度等社會(huì)各個(gè)因素來制定的,而不是單純只考慮某一因素,從這個(gè)角度來說,本定性檢測技術(shù)也是與基層一線實(shí)際情況緊密結(jié)合,是基層用于口蹄疫免疫質(zhì)量評(píng)價(jià)很好的選擇。也有研究者針對(duì)地方外調(diào)畜數(shù)量大、檢測量多的實(shí)際情況,以另一個(gè)思路對(duì)口蹄疫LPB-ELISA方法進(jìn)行了改進(jìn),也取得類似本文改進(jìn)后的良好效果[4]。湯天元等[5]對(duì)5塊裝口蹄病毒O型LPB-ELISA抗體檢測試劑盒操作步驟進(jìn)行了改進(jìn),改進(jìn)后的每份樣品檢測成本由原來32~16元降低到4元,這也與本文改進(jìn)后可壓縮檢測費(fèi)用4~8倍相吻合。而對(duì)于研究分析免疫抗體消漲、抗體滴度高低分布及小樣本的檢測等工作時(shí),則適宜選擇試劑盒說明書中的定量檢測技術(shù)。

3.2 關(guān)于血清稀釋比例及抗體滴度合格值的設(shè)定

考量到微量移液器精度、吸頭質(zhì)量、血清稀釋板孔容量、基層單位操作人員嫻熟程度等,將被檢血清稀釋設(shè)定為315μL的1倍PBST加5μL的被檢血清,一步將血清稀釋到1:64,此稀釋方案適合于基層普通操作人員和操作設(shè)備。也可將血清的稀釋設(shè)定為157.5μL的1倍PBST加2.5μL的被檢血清,此血清稀釋方案則對(duì)操作人員和設(shè)備提出的要求較高,對(duì)基層來說不宜采用,而對(duì)于各方面條件成熟者,亦可嘗試采用此稀釋方案。對(duì)于630μL的1倍PBST加10μL的被檢血清的稀釋方案,則稀釋液體體系過大,對(duì)血清稀釋板孔容量有較高的要求,且操作不便,不宜采用。另外,參照國標(biāo),將1:128設(shè)定為抗體滴度合格值,對(duì)于大樣本下的定性檢測現(xiàn)實(shí)工作來說,介于1:128~1:64之間的疑似結(jié)果極少,從統(tǒng)計(jì)學(xué)的角度來說,極少的疑似結(jié)果對(duì)免疫抗體合格率的統(tǒng)計(jì)影響可忽略不計(jì),從提高免疫質(zhì)量的角度來說,即使有較多樣品免疫抗體滴度處于疑似區(qū)、游走于合格線附近,表明免疫對(duì)象免疫抗體水平衰減厲害,免疫質(zhì)量不高,對(duì)疫病起不到很好的保護(hù)力,亦需強(qiáng)化免疫。因此,未設(shè)定疑似血清稀釋滴度,對(duì)于血清免疫抗體滴度小于1:128的,直接判定為免疫抗體不合格。

3.3 關(guān)于試驗(yàn)操作注意的關(guān)鍵點(diǎn)

LPB-ELISA試驗(yàn)操作繁瑣,周期長,需要注意的事項(xiàng)多,操作中稍有不慎就會(huì)導(dǎo)致試驗(yàn)結(jié)果發(fā)生偏差或試驗(yàn)失敗[6]。在檢測前,要將試劑盒和被檢血清恢復(fù)至室溫狀態(tài),打開ELISA板真空包裝膜后需盡快用完,在操作中要保持ELISA板底部不被臟物污染,確保酶標(biāo)儀讀數(shù)準(zhǔn)確,要避免同一廠家不同批次、不同廠家的試劑混合使用;有研究者對(duì)該試驗(yàn)的測量不確定度在嚴(yán)格控制反應(yīng)時(shí)間、反應(yīng)溫度等因素下進(jìn)行了評(píng)估,找出影響檢測質(zhì)量的主要因素為酶標(biāo)儀的測量和1:128稀釋倍數(shù)下的樣品濃度,其對(duì)不確定度影響最大[7],而本文一步稀釋法所加入的被檢血清只有5μL,量極少,易導(dǎo)致加樣量不準(zhǔn),因此要嚴(yán)格加樣操作,且在加入后要充分混勻,保證稀釋比例準(zhǔn)確,對(duì)于酶標(biāo)儀要定期檢定校準(zhǔn),加強(qiáng)日常維護(hù)管理,規(guī)范操作,在檢測時(shí)可提前打開酶標(biāo)儀運(yùn)行數(shù)分鐘待穩(wěn)定后再行檢測;TMB底物溶液的保存、配置、加樣等環(huán)節(jié)須做好避光措施,且現(xiàn)用現(xiàn)配,如出現(xiàn)溶液變色則棄之勿用;眼觀底物顯色情況,結(jié)合操作經(jīng)驗(yàn),靈活掌握顯色時(shí)間,可對(duì)其進(jìn)行適當(dāng)調(diào)整,顯色時(shí)間過長或過短,都可能會(huì)導(dǎo)致試驗(yàn)條件不成立;終止反應(yīng)后,要盡快對(duì)ELISA板讀值,一般情況下拖延讀值時(shí)間不宜超過30min。

4 結(jié)論

口蹄疫O型LPB-ELISA免疫抗體高通量定性檢測技術(shù),一塊ELISA板可定性檢測樣品80份,能很好地服務(wù)于檢測數(shù)量多、且要求出結(jié)果快的基層一線,對(duì)基層技術(shù)人員具有很好的實(shí)用性和借鑒性。同時(shí),可大幅度節(jié)約檢測費(fèi)用、降低人力成本,對(duì)保護(hù)環(huán)境也具有積極作用。

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