林偉鈴,胡 丹,朱宏陽,林 勇,王金海
(福建衛生職業技術學院藥學院, 福建 福州 350101)
纖維素存在于植物細胞壁中,是自然界中能夠找到的最豐富的聚合材料之一[1]。目前,工業所需的纖維素主要來源是木材[2],生產過程涉及森林的砍伐并且會造成環境污染[3-4]。與植物纖維素相比,由多種微生物產生的細菌纖維素(Bacterial Cellulose, BC) 不含半纖維素和木質素等雜質,是最純的纖維素形式之一[5]。BC具有高安全性、低成本、高柔韌性和適應性、親水性、透明性、生物相容性和生物可降解性等優異的物理化學性質[6]。BC在食品、醫療、化妝品、造紙及聲學器材等領域工業中有著廣泛的應用,特別是在食品方面除了作為食品添加劑,還可作為環保型食品外包裝材料[7-11]。 BC可與抗菌劑制備獲得抗菌材料,此類復合抗菌材料具備生物可降解性,還能夠較好地抑制微生物的生長,可用作醫用抗菌敷料,也可用作抗菌食品包裝材料。目前,在抗菌食品包裝材料上BC抗菌復合材料的研究主要集中于月桂酸/BC、姜黃素/BC、殼聚糖/BC等[12-14]。
ε-聚賴氨酸(ε-Polylysine,ε-PL)是由25~35個L-賴氨酸殘基組成的生物聚合物,可被機體完全消化為賴氨酸[15]。ε-PL具有廣譜抗菌能力,同時具備生物降解性、低毒性和低成本等特點,可應用于果蔬保鮮、食品防腐以及農業生產上植物病害的防治等領域[16-18]。本課題將ε-PL與細菌纖維素復合制備新型抗菌敷料PLBC復合膜,并對PLBC復合膜進行性能評價和抑菌性能考察,為今后PLBC復合膜在抗菌敷料及抗菌食品包裝領域的應用提供技術支持。
細菌纖維素由本課題組制備獲得,ε-聚賴氨酸由南京工業大學提供,菌種為大腸埃希菌(Escherichiacoli)[CMCC(B)44102]、金黃色葡萄球菌(Staphylococcusaureus) [CMCC(B)26003]。
將若干BC膜片浸泡于100 mL一定濃度(0、0.5%、1.0%)的ε-PL溶液中,并將其置于超聲清洗器中超聲震蕩,使BC與ε-PL充分接觸吸附均勻,總吸附時間為1 h,分3次重復震蕩,間隔時間10 min。將吸附后的膜片放入濃度為15%甘油中,1~2 s后迅速取出,取出后瀝干表面多余液體,于60℃烘箱烘干至恒重供測試使用。
1.3.1PLBC復合膜SEM微觀結構觀察 使用S-3400N型掃描電子顯微鏡觀察PLBC復合膜的微觀結構。具體參數為:使用電壓為10 kV,工作距離5 400~5 600 μm,將樣品固定在銅板上在離子濺射儀中真空噴金,然后觀察表面形貌。
1.3.2吸水率和脫水率測定 將1.0 g左右(具體稱重記為W1)的BC膜/PLBC復合膜在常溫下浸入蒸餾水中,每間隔2 h稱其重量,直至恒重。將樣品取出后離心分離,稱重記為W2,吸水率計算公式如下:
吸水率(%)=(W2-W1)/W2×100。將測定完稱重后的樣品置于平皿中37℃通風干燥,每隔0.5~1 h稱重,至恒重,繪制脫水率曲線。
1.3.3PLBC復合膜的分子結構紅外光譜分析 采用傅里葉紅外光譜儀測試PLBC復合膜的分子結構。將制備好的膜樣品剪取2.5 cm×2.5 cm的方塊后,充分干燥,取一定樣品研碎后與KBr混合并倒入模具中壓片。取樣品進行紅外光譜的測定,波長范圍為400~4 000 cm-1,分辨率為4 cm-1,結合紅外光譜數據庫對所得紅外光譜進行分析。
1.3.4PLBC復合膜的分子結構X射線衍射 用X射線衍射儀分析PLBC復合膜的分子結構。具體參數為:采用Cu靶,加速電壓為40 kV,電流強度為200 mA,樣間隔0.02°,0.15°·s-1,范圍2~60°。
1.3.5PLBC復合膜力學性能測定
(1)PLBC復合膜拉伸強度測定。利用質構儀對PLBC復合膜的拉伸強度進行測定。將膜裁剪成8 cm×1 cm的長條,有效拉伸長度為50 mm,拉伸強度為5 mm·s-1,將復合膜系于拉伸探頭上,啟動儀器,使探頭慢慢向上拉至膜斷裂。記錄復合膜斷裂時的最大張力(F)、伸長距離(L)、應力(σ)、應變(ε)。每個樣品做3次平行試驗。按下列公式計算拉彈性模量:
E=σ/ε
其中,E表示楊氏模數,σ表示正向應力,ε表示正向應變。
(2)PLBC復合膜斷裂伸長率(BE)的測定。如上所述,記錄測試樣品模斷裂時的標線之間的距離L和斷裂時膜被拉伸的長度ΔL。按下列公式計算:
BE(%)=ΔL/L×100
1.4.1培養基 LB培養基:酵母膏5 g·L-1,蛋白胨10 g·L-1,氯化鈉10 g·L-1,pH 7.4,121℃滅菌20 min。LB固體培養基:酵母膏5 g·L-1,蛋白胨10 g·L-1,氯化鈉10 g·L-1,瓊脂20 g·L-1,pH 7.4,121 ℃滅菌20 min。
1.4.2菌株活化 于超凈工作臺中用無菌接種環分別接1環大腸桿菌和金黃色葡萄球菌到裝有50 mL LB培養基的三角瓶(250 mL體積)中,200 r·min-1、37℃振蕩培養12 h,備用。
1.4.3PLBC復合膜抑菌性能測定
(1)抑菌圈法。將BC膜及PLBC復合膜分別用打孔器打出φ8 mm的圓形膜,置于紫外燈下輻照30 min殺菌備用。取無菌培養皿若干套,每皿加入融化的20 mL LB固體培養基作為底層,凝固。將融化并冷卻至45℃左右的LB固體培養基(100 mL)加入50%葡萄糖液1 mL和活化好的大腸桿菌或金黃色葡萄球菌菌液3~5 mL,充分混勻,立即取5 mL均勻平鋪在已凝固的底層培養基上,凝固成為上層培養基。待培養基凝固后,用無菌鑷子將圓形膜分別放置于培養基上,輕輕將膜攤平,蓋上平皿蓋后,正置于37 ℃培養箱中培養18~24 h,培養結束后用游標卡尺測量抑菌圈直徑大小。
(2)吸光度法。于超凈工作臺中取0.2 mL大腸桿菌或金黃色葡萄球菌菌液(預先培養至對數增長期,大約培養8~10 h)接入裝有20 mL無菌LB液體培養基中,分別放入經紫外燈滅菌的BC膜及PLBC復合膜,37℃、120 r·min-1振蕩培養,每隔2 h用酶標儀檢測培養液吸光度(A660)的變化,檢測抗菌膜對指示菌生長的抑制情況。
1.4.4PLBC復合膜的抑菌曲線 內容物溶出試驗:將大腸桿菌或金黃色葡萄球菌培養過夜(8~12 h),無菌生理鹽水洗滌2次,離心收集菌體,并重懸于無菌生理鹽水中,用無菌生理鹽水稀釋(A630約為0.6),分別將0.5%(w/v)的BC膜及PLBC復合膜加入菌懸液中,培養過程中,分別用酶標儀記錄吸光度(A260及A280)的變化曲線。
發酵獲得的BC(圖1A)用粉碎機粉碎后經酸堿酸浸泡,漂白干凈后于烘箱烘干獲得純BC膜(圖1B)。將BC膜置于不同濃度的ε-PL溶液中,經浸泡吸附并恒溫烘干后獲得PLBC復合膜(圖1C)。從圖2可知,加入ε-PL后,膜展現出良好的均一性, PLBC復合膜的色澤及表觀形態與BC膜相比未見明顯區別。

注:A為發酵獲得的BC;B為BC膜;C為PLBC復合膜圖1 BC、BC膜與PLBC復合膜表觀形態Fig.1 Morphology of BC, BC membrane and PLBC composite membrane
2.2.1PLBC復合膜的微觀結構觀察 由圖2可知,BC膜具有明顯的三維網絡結構和孔隙結構(圖2A)。對比不同ε-PL處理的PLBC復合膜可以發現,當ε-PL濃度為0.5%時,獲得的PLBC復合膜仍保持了與BC膜類似的納米纖維網絡結構,網絡與孔隙結構均明顯(圖2B),當ε-PL濃度提高時至1%時,BC膜吸附ε-PL的量明顯增加,ε-PL的結晶增多,獲得的復合材料的空間網絡結構和孔隙均變差(圖2C),影響了材料的微觀結構,因此本研究在制備PLBC復合膜試驗中,ε-PL濃度選擇0.5%比較適宜。

注:A為BC膜;B為BC膜+0.5%ε-PL;C為BC膜+1%ε-PL圖2 BC和PLBC復合膜的SEM圖像Fig.2 SEM images of BC and PLBC composite membrane
2.2.2PLBC復合膜吸水率和脫水率分析 分別考察了純BC膜及PLBC復合膜的溶劑吸收率,吸收率分別為457.19%±5.62%、397.36%±4.77%。PLBC復合膜的溶劑吸收率低于純BC膜,可能由于ε-PL的吸附,占據了一定的BC膜空間,從而影響了溶劑的吸附,但PLBC復合膜仍然表現出優良的吸收性能。由圖3可知,BC膜與PLBC復合膜均在2 h內完成了脫水。

圖3 PLBC復合膜脫水速率Fig.3 Dry-down rate of PLBC composite membrane
2.2.3PLBC復合膜紅外光譜分析 由圖4可知,PLBC復合膜保留了BC膜的特征吸收峰,即3 341 cm-1處由-OH鍵伸縮振動引起的一個大的吸收帶,以及2 897 cm-1處由-CH-伸縮振動引起的吸收峰。而且,從圖4B可以看出,ε-PL與BC膜形成了新的氫鍵吸收峰位于3 341 cm-1處,光吸收強度變大,在1 558 cm-1處存在特征峰是由-NH2振動引起的,說明PLBC復合膜中存在-NH2,因此證明了PLBC復合膜的成功制備。

注: A為BC膜;B為PLBC復合膜圖4 BC膜與PLBC復合膜的紅外光譜圖Fig.4 Infrared spectrogram of BC membrane and PLBC composite membrane


注:A為BC膜;B為PLBC復合膜圖5 BC膜與PLBC復合膜X射線衍射分析圖譜Fig. 5 X-ray diffraction analysis map of BC membrane and PLBC composite membrane
2.2.5PLBC復合膜力學性能分析 由表1、圖6可知,PLBC復合膜的力學特性與BC膜相比較在應力、應變、彈性模量及斷裂伸長率方面均有了不同幅度的提高,這意味著ε-PL的加入使得BC膜的韌性及拉伸強度增強,將有利于PLBC復合膜在抗菌食品包裝方面的應用。

表1 BC膜與PLBC復合膜的力學性能Table 1 Mechanical properties of BC membrane and PLBC composite membrane

A:BC膜;B:PLBC復合膜圖6 BC膜與PLBC復合膜的彈性Fig.6 Elasticity of BC membrane and PLBC composite membrane
2.3.1抑菌圈法 由圖7可知,在涂布E.coli的平板上,BC膜周圍無抑菌圈,揭開貼于瓊脂表面的BC膜,發現膜下方亦有細菌繁殖,說明純BC膜對E.coli無抑菌活性。PLBC復合膜周圍有明顯的抑菌圈,膜下方無細菌繁殖(圖7A),說明PLBC復合膜對E.coli具有良好的抑菌活性。當以S.aureus為抑菌活性測試菌種時,PLBC復合膜對S.aureus也具有良好的抑菌活性(圖7B)。

注:A為E.coli抑菌試驗;B為S.aureus抑菌試驗圖7 BC膜及PLBC復合膜抑菌活性Fig.7 Antibacterial activity of BC membrane and PLBC composite membrane
2.3.2吸光度法 由圖8可知,空白試驗中菌體生長曲線與添加BC膜的菌體生長曲線是幾乎重疊的,說明純BC膜對E.coli及S.aureus生長無抑制效果,這與2.3.1中抑菌圈法結果是一致的。PLBC復合膜吸光度曲線與0.5%純ε-PL吸光度曲線基本接近,說明PLBC復合膜中的ε-PL可以近似完全地釋放出來而發揮抑菌效果,也側面說明了BC膜吸附ε-PL后可以比較好地釋放從而產生抑菌作用,PLBC復合膜的抑菌活性來自ε-PL。從結果分析,PLBC復合膜對G+及G-菌都表現出良好的抑菌效果。

A為大腸桿菌;B為金黃色葡萄球菌圖8 吸光度法測定PLBC復合膜對E.coli及S.aureus的抑菌效果Fig.8 Determination of the antibacterial effect of PLBC composite membrane on E.coli and S.aureus by using the absorbance method
2.3.3PLBC復合膜對E.coli與S.aureus的抑菌機制 由圖9可知,當分別向E.coli菌液中添加BC膜、PLBC復合膜、ε-PL時,PLBC復合膜、ε-PL組的A260及A280均明顯高于BC膜組及空白菌懸液試驗組,以S.aureus作試驗菌時,結果亦與E.coli菌相似。根據文獻報道,付萍等[20-21]通過電鏡觀察發現ε-PL對E.coli與S.aureus的抑菌機制主要為造成細胞膜的損傷。當細胞膜損傷出現孔洞時,菌體中的內容物核酸及蛋白質便會釋放出來,通過測定菌液的A260及A280可以檢測菌體裂解后核酸及蛋白質的釋放情況,反映抑菌試劑的抑菌效果。當PLBC復合膜與ε-PL加入菌懸液后,A260及A280在短時間內迅速上升,說明PLBC復合膜與ε-PL一樣具有良好的抑菌活性,也印證了PLBC復合膜對抑菌機制為損傷E.coli與S.aureus的細胞膜。

A為A260;B為A280圖9 PLBC復合膜的添加對A260及A280的影響Fig.9 Effect of the addition of PLBC composite membrane on A260及A280
本研究通過超聲震蕩使BC與ε-PL充分接觸吸附后制備出了PLBC復合膜。對PLBC復合膜的各項性能進行考察,發現PLBC復合膜的溶劑吸收率低于BC膜,脫水率則兩者相當。觀察到ε-PL的結晶會影響PLBC復合膜的微觀結構,ε-PL濃度選擇0.5%比較適宜。紅外光譜分析顯示PLBC復合膜保留了BC膜的特征峰,同時存在新的氫鍵吸收峰以及由-NH2振動引起的特征峰。XRD分析表明ε-PL沒有影響BC的結晶結構。在力學特性上,PLBC復合膜的應力、應變、彈性模量及斷裂伸長率均較BC膜有了不同幅度的提高。通過抑菌圈法與吸光度法考察了BC膜與PLBC復合膜對E.coli及S.aureus的抑菌作用,PLBC復合膜中的ε-PL可以近似完全地釋放出來而發揮抑菌效果。初步檢測分析了PLBC復合膜對E.coli與S.aureus的抑菌機制,結果表明PLBC復合膜與ε-PL的抑菌機制一致,可通過損傷細胞膜造成菌體凋亡。本課題制備所得的PLBC復合膜具有良好的性能及抑菌表現,在醫用敷料、食品的保鮮包裝等眾多領域中將具有廣泛的應用潛力。