◎ 周瑞錚,林秋鳳,易華娟,張樹權,陳錦杭,蔡潤南
(東莞市食品藥品檢驗所,廣東 東莞 523808)
肉類和肉制品在人們飲食中扮演了重要的角色。預計未來10年,全球肉類產量和人均肉類攝入量將會持續增加,豬肉和雞肉消費量將大幅上升,占全球肉類利用率的36%和35%,其次是牛肉(22%)和羊肉(4%)[1]。我國肉類及其制品消耗占比較大,獸藥的濫用也逐漸發展為不能忽視的食品安全問題。通過對動物源食品不合格項目分析,發現畜禽肉中氯霉素、恩諾沙星等獸藥違規使用問題較為突出[2],水產制品中孔雀石綠濫用較多。動物源性產品獸藥殘留問題關乎公眾健康,如氯霉素抑制人體骨髓造血機能,產生粒細胞缺乏癥、再生障礙性貧血等毒副作用[3-5],沙星類藥物會損害胃腸功能及中樞神經,影響兒童軟骨生長發育[6-8],β-受體激動劑影響人體血液循環,使中樞神經系統缺血和心腎功能損害[9-11],孔雀石綠及其代謝物則具有致癌、致畸等毒副作用[12-14]。如今,獸藥殘留問題已成為全球的焦點,大多數國家和地區加強了對動物源性產品中獸藥殘留的監管,并制訂了相關法規制度。我國在2019年發布的《食品安全國家標準 食品中獸藥最大殘留限量》(GB 31650—2019)規定喹諾酮類獸藥最高殘留限量(Maximum Residue Limit, MRL)為100 μg·kg-1,整頓辦函〔2010〕50號、整頓辦函〔2011〕1號、農業農村部公告第250號中規定不得使用克倫特羅、萊克多巴胺、沙丁胺醇、氯霉素、孔雀石綠。這些常見獸藥殘留項目檢驗方法有液相色譜法、液相色譜質譜聯用法等[15-18],現行的檢驗標準有GB/T 21312—2007、GB/T 19857—2005、GB/T22338—2008和GB/T 22286—2008,但這些標準前處理步驟相對復雜,檢驗效能較低,為降低檢驗成本,提高檢驗效率,設計一種高效、簡潔、靈敏度高、可同一時間檢驗多種類別獸藥的方法十分必要。QuEChERS方法具有操作簡便、快速高效、成本低廉等特點[19-22],結合超高效液相色譜-串聯質譜法,能同時檢測多種獸藥殘留,節省大量時間及實驗成本,便于在食品檢測機構進行樣品初步篩查。本文建立了動物源食品中常見的4大類(恩諾沙星、環丙沙星、氟甲喹、孔雀石綠、隱色孔雀石綠、克倫特羅、萊克多巴胺、沙丁胺醇和氯霉素)共9種獸藥殘留的QuEChERS檢測方法,滿足實際工作的需要。
試驗材料:新鮮肉類(畜肉,禽肉,水產品)、加工肉制品(腌制品,醬鹵肉),來自東莞市學校食堂及肉制品生產廠家。
試劑:甲醇、乙腈、正己烷(色譜純,德國默克公司);甲酸、乙酸銨(色譜純,中國天津市科密歐化學試劑有限公司);CNW dSPE獸藥提取包、凈化管(上海安譜實驗科技股份有限公司)。
標準物質:氯霉素(中國計量科學研究院);氯霉素-D5、恩諾沙星、氟甲喹、沙丁胺醇、鹽酸克倫特羅、萊克多巴胺(北京曼哈格生物科技有限公司);環丙沙星、孔雀石綠草酸鹽、隱色孔雀石綠(德國Dr.Ehrenstorfer公司);孔雀石綠-D5、隱色孔雀石綠-D6、克倫特羅-D9(德國Witegar公司);沙丁胺醇-D3(加拿大CDN公司)。
LC30AD超高效液相色譜儀(日本島津公司);SCIEX 5500質譜聯用儀(配ESI離子源,美國AB公司);CPA225D電子分析天平(感量0.000 01 g,德國賽多利斯);BSA223S電子分析天平(感量0.001 g,德國賽多利斯);3K 15離心機(9 500 r·min-1,德國SIGMA);超純水機(Milli-Q Reference,德國默克)。
1.3.1 標準溶液的制備
分別精密稱取適量氯霉素、孔雀石綠、隱色孔雀石綠,使用乙腈溶解并定容,恩諾沙星、環丙沙星、氟甲喹、克倫特羅、沙丁胺醇、萊克多巴胺使用甲醇溶解并定容,制成濃度為1.0 mg·mL-1的標準儲備液,儲于-20 ℃。臨用時,用體積分數為50%乙腈水溶液稀釋至孔雀石綠、氯霉素、β-受體激動劑質量濃度為10.0 ng·mL-1,喹諾酮質量濃度為200.0 ng·mL-1的混合標準工作液。
分別精密稱取適量氯霉素-D5、孔雀石綠-D5、隱色孔雀石綠-D6使用乙腈溶解并定容,克倫特羅-D9、沙丁胺醇-D3使用甲醇溶解并定容,孔雀石綠-D5、隱色孔雀石綠-D6、克倫特羅-D9、沙丁胺醇-D3定容至100 μg·mL-1,氯霉素-D5定容至1.00 μg·mL-1,制成單一內標儲備溶液。臨用時,用50%乙腈水稀釋至氯霉素-D5、孔雀石綠-D5及隱色孔雀石綠-D6質量濃度為100 ng·mL-1,β-受體激動劑類質量濃度為10.0 ng·mL-1的混合內標工作溶液。
1.3.2 樣品溶液的制備
(1)提取。稱取粉碎試樣約2 g(精確到0.01 g)于50 mL聚丙烯離心管中,加入1袋獸藥提取鹽包,50 μL混合內標物工作溶液,加入15 mL 1%甲酸乙腈后劇烈振搖,使樣品分散,渦旋5 min,超聲10 min,8 000 r·min-1離心5 min,重復提取2次,合并兩次提取液備用。
(2)凈化。將提取液轉移至獸藥凈化管,渦旋5 min,8 500 r·min-1離心5 min,轉移上清液至100 mL棕色雞心瓶,40 ℃水浴減壓旋蒸至近干,加入1 mL 50%乙腈水復溶,過0.22 μm有機濾膜后,供液相-質譜測定。
1.3.3 色譜及質譜條件
(1)色譜條件。色譜柱:Boston, Green ODSAQ C18(2.1 mm×100 mm,3.5 μm);流速:0.2 mL·min-1;進樣體積:2.0 μL;柱溫:35 ℃;流動相A:甲醇,流動相B:0.1%甲酸-1 mmol·L-1乙酸銨,洗脫梯度見表1。

表1 液相洗脫梯度表
(2)質譜條件。離子源:H-ESI;掃描模式:正負離子同時掃描;檢測方式:多反應監測(MRM);霧化氣(GS1):379.2 kPa(氮氣);輔助氣(GS2):379.2 kPa(氮氣);氣簾氣(CUR):206.8 kPa(氮氣);噴霧電壓(IS):5 500 V、-4 500 V;去溶劑溫度(TEM):350 ℃;碰撞氣(CAD):55.16 kPa(氮氣)。離子對優化結果見表2。

表2 定性離子、定量離子、碰撞能量、去簇電壓表
本文中涉及的獸藥包含氟喹諾酮類、三苯甲烷類、β-受體激動劑類和氯霉素類,乙腈對上述幾類獸藥均有較好的提取效果,還可以有效去除蛋白,是較為理想的溶劑,但有研究表明氟喹諾酮類具有酸堿兩性性質,在酸性或堿性條件下的提取效率更高,因此對乙腈、0.1%甲酸-乙腈,1%甲酸-乙腈進行比較[22]。3種提取溶劑的回收率結果如圖1所示,綜合考慮認為1%甲酸-乙腈對各組分的提取效果均較好,最終選擇1%甲酸-乙腈作為提取溶劑。

圖1 不同提取溶劑回收率對比圖
為了縮短檢測時間,優化色譜峰形,本研究對常用的流動相體系進行了比較。文獻報道顯示[23-25],動物源性食品獸藥殘留常用甲醇/水、乙腈/水體系作為流動相進行檢測。本研究對這兩個體系分別進行試驗,比較在乙腈/水體系和甲醇/水體系對9種獸藥、5種內標物化合物的分離效果、峰型的影響。乙腈-水體系大部分物質出峰時間集中在4~7 min,個別在9 min左右;甲醇-水體系則更加分散,3~9 min均有物質出峰,分離效果更好。但在不添加緩沖鹽和調節pH的甲醇-水和乙腈-水體系下,部分組分的峰形較差,出現拖尾等情況。經試驗,添加0.1%甲酸和1 mmol·L-1乙酸銨有利于提高分離度,對檢測組分的峰形有明顯改善。因此,選用甲醇、0.1%甲酸-1 mmol·L-1乙酸銨作為流動相。
如表3所示,各組分在0.1~100 ng·mL-1濃度范圍內線性良好,相關系數均大于0.998。以定性離子的3倍信噪比(S/N=3)對應的檢測限為檢出限(Limit of Detection,LOD),測定各組分的檢出限。本研究以檢出限的1、5、10倍作為加標水平,對空白豬肉基質進行加標,每個水平分別進行6次平行試驗,如表3所示,各組分的檢出限在0.1~2.0 ng·mL-1,滿足國家標準的檢測需求。各組分的平均加標回收率為69.2%~115.4%,相對標準偏差為0.9%~12.7%,該方法回收率、精密度均符合《實驗室質量控制規范 食品理化檢驗》(GB/T 27404—2008)附錄F的檢測方法確認的技術要求[16]。

表3 線性范圍、線性方程、相關系數、檢出限、回收率表
運用本研究建立的方法與標準方法進行結果比對
(GB/T 21312—2007、GB/T 22286—2008、GB/T 19857—2005、GB/T 22338—2008),結果表明,大部分組分的QuEChERS方法與標準測定方法結果偏差在20%~30%,而萊克多巴胺的檢測結果相對標準方法則相對較低,推測是因為樣品處理時沒有進行酶解,而萊克多巴胺與蛋白結合較為牢固。如果檢驗過程中對樣品進行酶解,則需要較長的時間,效率低下不利于大批量篩查工作。現今檢測儀器的靈敏度較高,即便只能提取部分萊克多巴胺,依然能滿足日常篩查的需求,因此,本方法適合動物源性食品中獸藥殘留的初步篩查。
本研究建立了QuEChERS-超高效液相色譜-串聯質譜法篩查動物源性食品中恩諾沙星、環丙沙星、氟甲喹、孔雀石綠、隱色孔雀石綠、克倫特羅、沙丁胺醇、萊克多巴胺、氯霉素共計9種獸藥殘留情況的分析方法,以1%甲酸乙腈作為溶劑,渦旋、超聲進行提取,QuEChERS凈化后旋蒸濃縮,50%乙腈-水復溶。各組分在0.1~100 ng·mL-1濃度范圍內線性良好,相關系數R均大于0.998,平均加標回收率在69.2%~115.4%,相對平均偏差為0.9%~12.7%,重復性好。該方法可以實現高通量處理,大大提高工作效率,為食品安全日常監管提供了有效保障。