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丹參噴干粉對缺氧/復氧誘導的心肌細胞損傷的保護作用及其機制

2021-11-25 12:45:14李建華桂明泰周訓杰符德玉
中成藥 2021年11期
關鍵詞:氧化應激檢測

謝 君, 蘆 波, 李建華, 桂明泰, 姚 磊, 周訓杰, 符德玉*

(1.上海中醫藥大學,上海 201203;2.上海中醫藥大學附屬岳陽中西醫結合醫院,上海 200437)

早期再灌注治療是治療心肌梗死的有效策略,但再灌注過程可誘發心肌缺血再灌注損傷(Ischemia/Reperfusion injury,I/R),它涉及復雜的病理生理過程,包括氧化應激、炎癥反應、細胞凋亡等,最終導致心肌細胞死亡[1-2]。研究發現,心肌細胞凋亡和氧化應激是缺氧/復氧(Hypoxia/Reoxygenation,H/R)極為重要的病理基礎,其過程與GPX1等蛋白的異常活化密切相關[3-4]。

丹參及其活性成分在臨床上被廣泛用于治療心腦血管缺血性疾病,療效顯著,可通過抗氧化、減輕炎癥反應、清除自由基等作用來減輕心肌H/R損傷[5-6],但是否能通過GPX1通路調控氧化應激及細胞凋亡尚不明確。因此,本實驗探討丹參噴干粉對缺氧/復氧誘導的心肌細胞損傷的保護作用及其機制,以期為相關研究提供參考。

1 材料

1.1 細胞 H9c2心肌細胞、293T人腎上皮細胞(美國 ATCC細胞庫)。

1.2 藥物和試劑 丹參噴干粉(雷氏丹參片,上海雷允上藥業有限公司,批號Z31020192)。CCK8細胞增殖及細胞毒性檢測試劑盒、AnnexinV-FITC/PI細胞凋亡檢測試劑盒、活性氧(ROS)檢測試劑盒、羊抗兔HRP標記二抗、羊抗鼠HRP標記二抗(上海碧云天生物技術有限公司,貨號C0037、C1062L、S0033、A0208、A0216);胎牛血清(美國Gibco公司,批號16000-044);DEME培養基(美國HyClone公司,批號SH30243.01);N-乙酰半胱氨酸(NAC)(美國MCE公司,貨號HY-B0215);0.25%胰蛋白酶-EDTA消化液(北京索萊寶科技有限公司,貨號T1300-100);丙二醛(MDA)檢測盒、超氧化物歧化酶(SOD)檢測盒(南京建成生物工程研究所,貨號A003-1、A001-3);GPX1抗體(北京博奧森生物技術有限公司,貨號bs-3882R);cleaved caspase3、cleaved PARP(英國Abcam公司,貨號ab2302、ab32064);GAPDH(美國CST公司,貨號5174);Trizol(美國Invitrogen公司,貨號1596-026);SYBR Green PCR試劑盒(美國Thermo Fisher公司,貨號K0223);逆轉錄試劑盒(美國Fermentas公司,貨號K1622)。

2 方法

2.1 細胞培養與轉染 H9c2細胞采用含10%胎牛血清、1%雙抗(青鏈霉素混合液)的DMEM培養,置于37 ℃、5% CO2培養箱中培養,在顯微鏡下發現為貼壁細胞,當細胞融合度達80%時加入0.25%胰蛋白酶消化,進行細胞傳代培養。使用慢病毒轉染過表達GPX1,插入載體質粒pLVX-Puro及包裝質粒psPAX2、pMD2G轉染293T細胞,48 h后獲得高滴度重組慢病毒。將細胞培養于含oeGPX1慢病毒的DMEM中培養12 h,在新鮮培養基中培養12 h,使用Lipofectamine 2000轉染相應的shRNA。采用Western blot法,檢測轉染效果。

2.2 細胞處理及分組 取對數生長期H9c2細胞,0.25%胰蛋白酶消化,加入含10%胎牛血清的DMEM培養基制備細胞懸液,調整細胞密度為5×104/mL,接種于96孔板(100 μL/孔),置于37 ℃、5% CO2培養箱中培養24 h,待細胞生長至90%融合度時進行H/R處理。將培養液更換為無血清/無糖DMEM,置于37 ℃、94% N2、1% O2、5% CO2培養箱中缺氧處理5 h,在含10%胎牛血清的DMEM培養基中復氧(5% CO2,95% O2)培養1 h,不同質量濃度(0.1、0.5 μg/mL)丹參噴干粉培養H9c2細胞24 h,以正常條件下培養的細胞作為對照。然后,將H9c2細胞分為對照組、H/R組、H/R+0.1 μg/mL丹參噴干粉組、H/R+0.5 μg/mL丹參噴干粉組、H/R+N-乙酰半胱氨酸組。

2.3 CCK8檢測心肌細胞存活率 將處于對數生長期的H9c2細胞收集離心,重懸后顯微鏡下計數,接種至96孔培養板,每孔3×103個細胞,設置3個復孔,在37 ℃下培養過夜。待細胞貼壁后,不同質量分數(1%、2%、2.5%、5%、10%、20%、50%、0.1%、0.5%)丹參噴干粉處理H9c2細胞,分別在0、24、48、72 h后吸去上清,按1∶10比例混合CCK-8和無血清必需基本培養基,每孔100 μL,加入96孔板中,在37 ℃、5% CO2培養箱中孵育1 h,酶標儀檢測450 nm波長光密度(OD)值,計算細胞存活率,公式為存活率=[(檢測組OD值-空白孔OD值)/(對照組OD值-空白孔OD值)]×100%。

2.4 流式細胞術檢測氧化應激與細胞凋亡 收集細胞,1 000 r/min離心5 min,棄上清,PBS輕輕重懸細胞并計數,取1×105個細胞,1 000 r/min離心5 min,棄上清,加入195 μL Annexin V-FITC結合液輕輕重懸細胞,加入10 μL Annexin V-FITC后混勻,再加入5 μL碘化丙啶(PI)染色液,輕輕混勻,室溫避光孵育15 min,置于冰浴中,以不加AnnexinV-FITC及PI的檢測管作為陰性對照,通過流式細胞儀檢測細胞凋亡情況。

2.5 MDA水平、SOD活性檢測 分別用黃嘌呤氧化酶法、TBA法檢測細胞SOD活性、MDA水平,嚴格按照試劑盒說明操作。

2.6 Western blot檢測相關蛋白表達 H9c2細胞用PBS洗滌2次,加入含蛋白酶、磷酸酶抑制劑的裂解液,在4 ℃下充分裂解,將細胞刮入1.5 mL EP管中,95 ℃以上加熱10 min,12 000 r/min離心10 min,取上清,進行蛋白定量。將配制好的PAGE膠放入電泳槽中,加入適量電泳緩沖液,將樣品加到上樣孔,濃縮膠在80 V下電泳20 min,分離膠在120 V下電泳60 min。將PVDF膜在甲醇中浸泡1~2 min,再孵育于冰冷的電轉緩沖液中5 min,凝膠在冰冷電轉緩沖液中平衡3~5 min,轉膜后用含5%脫脂奶粉室溫封閉1 h,加入一抗GPX1(1∶1 000)、cleaved-caspase3(1∶5 000)、cleaved-PARP(1∶2 000)、GAPDH(1∶2 000),4 ℃孵育過夜,TBST洗滌3次后,按1∶1 000比例稀釋HRP標記的二抗,在37 ℃下孵育1 h,TBST洗滌3次,每次5 min,配制ECL發光液,取A和B等量混勻,加在膜正面,暗室避光5 min,倒掉顯色液,用紙吸取,在上面蓋上1層平整透明紙,將其放入成像系統中進行掃描。

2.7 RT-qPCR檢測細胞中GPX1 mRNA的表達 使用Trizol試劑采集H9c2細胞總RNA,用cDNA第一鏈合成試劑盒反轉錄成cDNA。使用SYBR Green Mix,進行PCR擴增,程序為95 ℃ 10 s,40個周期,95 ℃ 15 s,60 ℃ 45 s。以GAPDH為內參,GPX1正向引物5′-TCACCCGCTCTTTACCTTC-3′,反向引物5′-AACACCGTCTGGACCTACC-3′;GAPDH正向引物5′-GGAGTCTACTGGCGTCTTCAC-3′,反向引物5′-ATGAGCCCTTCCACGATGC-3′。

3 結果

3.1 H/R處理對H9c2細胞中GPX1表達的影響 圖1A~1B顯示,與對照組比較,H/R組細胞中GPX1的蛋白表達降低(P<0.05)。圖1C顯示,與對照組比較,H/R組細胞中GPX1的mRNA表達降低(P<0.05)。

注:與對照組比較,**P<0.01。

3.2 丹參噴干粉對H/R處理H9c2細胞的增殖和GPX1表達的影響 圖2A顯示,與對照組比較,H/R組H9c2細胞增殖下降(P<0.01);與H/R組比較,0.1、0.5 μg/mL丹參噴干粉處理后對細胞增殖的抑制作用明顯(P<0.01),因此選擇這2種質量濃度進行后續實驗。圖2B~2D顯示,與H/R組比較,丹參噴干粉能提高H/R處理H9c2細胞中GPX1表達(P<0.01),在0.5 μg/mL下效果更強。為探究GPX1的具體作用機制,加入ROS抑制劑NAC,發現與H/R組比較,加入ROS抑制劑后H9c2細胞中GPX1表達增高(P<0.01),說明GPX1是氧化應激的關鍵。

注:與對照組比較,**P<0.01;與H/R組比較,##P<0.01;與H/R+0.1 μg/mL丹參噴干粉組比較,△△P<0.01;與H/R+0.5 μg/mL丹參噴干粉組比較,●●P<0.01。

3.3 丹參噴干粉對H/R處理H9c2細胞凋亡的影響 圖3顯示,與對照組比較,H/R處理后的H9c2細胞凋亡率上升(P<0.01),而丹參噴干粉預處理能降低 H/R 誘導的細胞凋亡水平(P<0.01),并且質量濃度越高,作用效果越強。此外,ROS抑制劑NAC也能降低H/R誘導的細胞凋亡水平(P<0.01)。

注:A為丹參噴干粉對細胞凋亡的影響,B為細胞凋亡統計圖。與對照組比較,**P<0.01;與H/R組比較,##P<0.01;與H/R+0.1 μg/mL丹參噴干粉組比較,△△P<0.01;與H/R+0.5 μg/mL丹參噴干粉組比較,●●P<0.01。

3.4 丹參噴干粉對H/R處理H9c2細胞的ROS水平和抗氧化影響 圖4顯示,與對照組比較,H/R組ROS、MDA水平升高(P<0.01),而ROS抑制劑NAC及丹參噴干粉能降低ROS水平(P<0.01)。與對照組比較,H/R組SOD水平降低(P<0.01),而ROS抑制劑NAC及丹參噴干粉能增加SOD水平(P<0.01)。

注:A為丹參噴干粉對ROS的影響,B為ROS計數,C為丹參噴干粉對SOD的影響,D為丹參噴干粉對MDA的影響。與對照組比較,**P<0.01;與H/R組比較,#P<0.05,##P<0.01;與H/R+0.1 μg/mL丹參噴干粉組比較,△△P<0.01;與H/R+0.5 μg/mL丹參噴干粉組比較,●●P<0.01。

3.5 丹參噴干粉以及oeGPX1對H/R誘導H9c2細胞的相關蛋白影響 圖5顯示,與H/R組比較,過表達GPX1后GPX1表達增高(P<0.01);H/R+oeGPX1+丹參噴干粉組GPX1表達更高(P<0.01)。與H/R組比較,H/R+oeGPX1組cleaved-caspase3、cleaved-PARP表達降低(P<0.01);H/R+oeGPX1+丹參噴干粉組cleaved-caspase3、cleaved-PARP表達更低(P<0.01)。

注:A為丹參噴干粉及oeGPX1對相關蛋白的影響,B為丹參噴干粉及oeGPX1相關蛋白表達。與對照組比較,**P<0.01;與H/R+oeGPX1組比較,##P<0.01。

3.6 丹參噴干粉對oeGPX1緩解H/R誘導H9c2細胞損傷的影響 圖6顯示,與H/R組比較,H/R+oeGPX1組ROS及細胞凋亡水平降低(P<0.01);H/R+oeGPX1+丹參噴干粉組降低程度更明顯(P<0.01)。

4 討論

GPX1是參與主要抗氧化分子谷胱甘肽的抗氧化系統中最重要的成分之一,通過降低氧化應激來抑制細胞凋亡[7]。GPX1表達的改變或異常與心血管疾病、神經退行性變、自身免疫性疾病等疾病的病因密切相關[8]。本研究結果顯示,缺氧/復氧刺激使H9c2心肌細胞的GPX1表達降低,氧化應激水平及細胞凋亡率增加;給予丹參噴干粉或ROS抑制劑預處理后,心肌細胞的生長活性增加,凋亡率降低,此外,丹參噴干粉協助oeGPX1來緩解H/R誘導H9c2細胞損傷,表明丹參噴干粉抑制心肌細胞凋亡及抗氧化的作用是通過GPX1實現的。

丹參化合物具有良好的抗氧化、抗炎、抗血栓、心臟保護活性等多種生物活性[9],因此在臨床是被廣泛用于治療心腦血管疾病。如Zhang等[10]研究證明丹參注射液能夠逆轉氧化應激標志物SOD活性、MDA水平的變化,發揮保護小鼠心肌細胞作用。Ai等[11]研究發現,丹參腹腔注射4周,能夠改善心肌梗死模型大鼠心肌血管受損情況,改善射血分數(EF)和縮短分數(FS)的作用,表明其具有改善心功能的作用。Huang等[12]發現丹參川芎嗪注射液可保護冠狀動脈閉塞和再灌注2 h小鼠心肌缺血/再灌注(I/R)和缺氧/復氧(H/R)損傷,降低MDA水平,增加SOD活性。體外實驗證明,用丹參川芎嗪處理H9c2細胞后,細胞凋亡受到抑制,caspase-3表達降低,Bcl-2/Bax比值升高。

多項研究證明細胞凋亡參與心肌缺血再灌注過程,抑制細胞凋亡成為治療心肌缺血再灌注手段之一。而氧化應激是H/R誘導的細胞凋亡[13]的重要機制。H/R誘導的氧化應激的主要機制是通過細胞內大量ROS的積累,破壞細胞內氧化和抗氧化活性之間的平衡。ROS的積累損傷膜上的磷脂和脂蛋白,導致脂質過氧化,進而通過傳遞鏈反應[14]損傷DNA。細胞內氧化應激可導致氧化損傷,促進細胞凋亡。本研究結果顯示,H/R刺激后H9c2 心肌細胞凋亡率增加,丹參噴干粉及ROS抑制劑的預處理能降低心肌細胞凋亡率。此外,過表達GPX1及丹參噴干粉處理能夠降低凋亡相關蛋白cleaved-caspase3、cleaved-PARP表達,這表明了丹參噴干粉對H/R誘導的心肌細胞的保護作用是通過調控關鍵基因GPX1實現的。

心肌缺血再灌注加速氧化代謝并產生ROS,導致細胞退化[15]。本研究發現,H/R誘導的H9c2細胞ROS水平升高,伴隨SOD活性降低。抗氧化劑通過誘導參與細胞保護的基因表達來清除ROS,活性氧自由基的產生需要SOD的誘導并伴隨GPX1的增加,這與本研究結果一致。有報道,高同型半胱氨酸血癥可降低GPX1表達[16],這是心血管疾病的危險因素。因此,疾病特異性基因的改變可能導致心血管疾病發生,GPX1的上調可能有助于減緩疾病的進程。

GPX1在氧化應激中發揮著雙重作用。本實驗證明了GPX1在氧化應激反應下對心肌細胞起保護作用。然而,GPX1敲除小鼠更容易受到嚴重的急性氧化應激,而過表達GPX1則更容易獲得額外的保護作用[17]。異常情況下,GPX1的過量導致細胞缺乏必要的氧化劑,因而產生有害影響[18-19],這會導致以缺乏氧化劑和/或過量還原劑為特征的還原應激[20-21]。因此,未來仍需要更多的研究來進一步研究GPX1在氧化還原反應中的復雜調控以及其在相關疾病中的潛在應用。

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