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微生物源性抗氧化劑對葡聚糖硫酸鈉誘發(fā)小鼠肝臟氧化損傷和炎癥反應(yīng)的影響

2021-08-09 02:15:50徐維娜徐建雄
動物營養(yǎng)學(xué)報 2021年7期
關(guān)鍵詞:氧化應(yīng)激小鼠

李 莉 馬 升 張 京 徐維娜 徐建雄

(上海交通大學(xué)農(nóng)業(yè)與生物學(xué)院,上海市獸醫(yī)生物技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,上海 200240)

動物養(yǎng)殖過程中,受環(huán)境、營養(yǎng)、心理等因素影響,易發(fā)生腸道炎癥,腸道炎癥發(fā)生的同時往往伴隨肝臟疾病,因此,開發(fā)新型飼料添加劑緩解腸道和肝臟損傷具有重要意義。Uko等[1]觀察到腸道炎癥會誘發(fā)肝臟并發(fā)癥,并且大多數(shù)治療炎癥性腸病(inflammatory bowel disease,IBD)的藥物對腸道和肝臟有不良影響[2]。IBD是一種非特異性腸道炎癥疾病,以葡聚糖硫酸鈉(dextran sulfate sodium salt,DSS)誘導(dǎo)的小鼠結(jié)腸炎是最常見的研究模型[3],之前的研究大多集中于利用DSS潰瘍性結(jié)腸炎模型研究IBD。Kitajima等[4]發(fā)現(xiàn)利用DSS處理小鼠后,DSS會分布在肝臟枯否氏細(xì)胞、腸系膜淋巴結(jié)巨噬細(xì)胞和大腸固有層細(xì)胞,但目前未見關(guān)于DSS處理是否會對肝臟造成損傷的報道。研究發(fā)現(xiàn),活性氧自由基(ROS)參與調(diào)控結(jié)腸炎的發(fā)展[5],抗氧化劑如維生素C、維生素E等具有清除自由基、緩解氧化應(yīng)激和炎癥的作用[6-7]。課題組前期研究發(fā)現(xiàn),微生物源性抗氧化劑(microbe-derived antioxidants,MA)可以緩解敵草快引起的小鼠肝臟和腸道氧化應(yīng)激,提高空腸養(yǎng)分轉(zhuǎn)運(yùn)能力[8],緩解肝臟內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激[9]。因此,本試驗(yàn)旨在探究DSS處理小鼠是否會發(fā)生肝臟損傷以及MA的緩解作用,為腸道炎癥疾病及其肝臟損傷的治療提供新的治療思路。

1 材料與方法

1.1 試驗(yàn)設(shè)計

選擇48只6周齡C57BL/6J雄性小鼠,預(yù)飼養(yǎng)1周后,隨機(jī)分為4組,每組12只。對照組和DSS組每天每只小鼠灌胃0.020 mL/g BW的生理鹽水,低劑量MA組(LMA組)每天每只小鼠灌胃0.002 mL/g BW的MA,高劑量MA組(HMA組)每天每只小鼠灌胃0.003 mL/g BW的MA。對照組每天飲用雙蒸水;其余各組1~7 d飲用雙蒸水,8~14 d飲用含3% DSS的雙蒸水。試驗(yàn)期14 d。小鼠飼養(yǎng)于25 cm×40 cm加不銹鋼蓋的塑料籠盒中,溫度控制在20~25 ℃,相對濕度為50%~60%,光照和黑暗各占12 h,自由飲水,自由采食。試驗(yàn)期結(jié)束后1 d將小鼠脫頸處死,解剖后取出肝臟,去除結(jié)締組織,用預(yù)冷生理鹽水沖洗后裝入凍存管,在液氮中速凍之后置于-80 ℃冰箱保存。

1.2 試驗(yàn)材料

6周齡C57BL/6J雄性小鼠(18~22 g)購于常州卡文斯實(shí)驗(yàn)動物有限公司,生產(chǎn)許可證號:SCXK(蘇)2016-0010。小鼠基礎(chǔ)飼糧購于江蘇協(xié)同生物有限公司,其營養(yǎng)水平見表1。DSS購自美國MP Biomedicals公司;MA(商品名KB-120)由上海江翰生物科技有限公司提供,是以沙棘、刺梨果實(shí)為原料,經(jīng)枯草芽孢桿菌、乳酸桿菌、酵母菌等益菌發(fā)酵,經(jīng)提取、濃縮、滅活、凍干等固液復(fù)合發(fā)酵處理而成,含有微生素C、維生素E、異黃酮、谷胱甘肽(GSH,glutathione)、超氧化物歧化酶(SOD)和多種微量元素的金屬衍生物,MA可清除組織過量ROS,提高小鼠血清中免疫球蛋白A(IgA)含量,提高脾臟淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)化率,促進(jìn)脾臟和胸腺發(fā)育。過氧化氫(H2O2)、丙二醛(malondialdehyde,MDA)、GSH含量和總抗氧化能力(total antioxidant capacity,T-AOC)及總超氧化物歧化酶(total superoxide dismutase,T-SOD)、谷胱甘肽過氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH-Px)、谷草轉(zhuǎn)氨酶(aspartate transaminase,AST)、谷丙轉(zhuǎn)氨酶(alanine transaminase,ALT)活性檢測試劑盒均購于南京建成生物工程研究所。Trizol購于美國Invitrogen公司。反轉(zhuǎn)錄試劑盒PrimeScript RT reagent Kit(Perfect Real Time)和熒光定量PCR試劑盒SYBR Premix Ex TaqTM(Perfect Real Time)購自日本TaKaRa公司。線粒體提取試劑盒購自北京索萊寶科技有限公司。線粒體膜電位檢測試劑盒(JC-1法)購自北京雷根生物技術(shù)有限公司。

表1 基礎(chǔ)飼糧營養(yǎng)水平(飼喂基礎(chǔ))

1.3 肝臟組織形態(tài)觀察

取新鮮肝臟組織轉(zhuǎn)移到4%的多聚甲醛中,通過脫水、石蠟包埋、蘇木精-伊紅(HE)染色并封片之后,光學(xué)顯微鏡下觀察組織形態(tài)。

1.4 氧化應(yīng)激指標(biāo)及AST、ALT活性測定

取凍存的肝臟組織稱重后,按1∶9比例加入生理鹽水,冰上勻漿,4 000 r/min離心20 min,取上清液進(jìn)行相關(guān)指標(biāo)測定。依據(jù)試劑盒說明書測定H2O2、MDA、GSH含量T-AOC及T-SOD、GSH-Px、AST和ALT活性。

1.5 線粒體膜電位測定

取凍存的肝臟組織200 mg,加入預(yù)冷裂解緩沖液(lysis buffer)冰上勻漿,按照試劑盒步驟提取出線粒體。取100 μL純化的線粒體與900 μL JC-1染色工作液混合,取200 μL轉(zhuǎn)移到96孔板于熒光酶標(biāo)儀下讀數(shù),檢測JC-1單體激發(fā)光設(shè)置為490 nm,發(fā)射光設(shè)置為590 nm;檢測JC-1聚合體激發(fā)光設(shè)置為525 nm,發(fā)射光設(shè)置為590 nm,2次讀數(shù)比值為線粒體膜電位。取20 μL轉(zhuǎn)移至玻板于熒光顯微鏡下觀察,設(shè)置綠色熒光蛋白(GFP,標(biāo)記綠色熒光)觀察JC-1單體,設(shè)置Cy5(標(biāo)記紅色熒光)觀察JC-1聚合物。

1.6 實(shí)時熒光定量PCR

檢測肝臟組織相關(guān)基因[含pyrin結(jié)構(gòu)域NOD樣受體家族蛋白3(NLRP3)、白細(xì)胞介素-18(IL-18)、凋亡相關(guān)斑點(diǎn)樣蛋白(ASC)、半胱天冬蛋白酶-1(Caspase-1)、白細(xì)胞介素-1β(IL-1β)、端粒酶逆轉(zhuǎn)錄酶(Tert)、腫瘤壞死因子-α(TNF-α)、細(xì)胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶(PERK)、活化轉(zhuǎn)錄因子6(ATF6)、肌醇依賴性激酶1(IRE1)和葡萄糖調(diào)節(jié)蛋白78(GRP78)]表達(dá):將肝臟組織在液氮中研磨后使用Trizol法提取RNA,并用Nanodrop測定RNA濃度,按照PrimeScript RT reagent Kit(Perfect Real Time)說明書進(jìn)行,首先去除基因組DNA,反應(yīng)條件為42 ℃ 2 min,4 ℃ 30 s。將RNA逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,反應(yīng)條件為:37 ℃ 15 min,85 ℃ 5 s,4 ℃ 30 s。設(shè)計引物序列并委托Invitrogen公司合成。引物序列見表2。以cDNA為模板,根據(jù)SYBR Premix Ex TaqTM(Perfect Real Time)試劑盒進(jìn)行實(shí)時熒光定量PCR反應(yīng),反應(yīng)條件:預(yù)變性,95 ℃ 30 s;PCR反應(yīng),95 ℃ 3 s,60 ℃ 30 s;熔解曲線,95 ℃ 15 s,60 ℃ 60 s,95 ℃ 15 s,循環(huán)40次。實(shí)時熒光定量PCR結(jié)果以β-肌動蛋白(β-actin)作為內(nèi)參基因,采用2-ΔΔCt法計算待測樣品的相對表達(dá)量。

表2 引物序列

1.7 統(tǒng)計分析

采用SPSS 20.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計分析,采用單因素方差分析(one-way ANOVA)和LSD法統(tǒng)計組間差異,結(jié)果以均值±標(biāo)準(zhǔn)誤表示,P<0.05表示差異顯著,P<0.01表示差異極顯著。

2 結(jié)果與分析

2.1 肝臟組織切片HE染色

如圖1所示,DSS組小鼠的肝小葉中央?yún)R管區(qū)炎性細(xì)胞浸潤,肝細(xì)胞發(fā)生脂肪變性;HMA組的DSS誘導(dǎo)結(jié)腸炎發(fā)生的肝臟病理變化明顯改善。這表明MA緩解了DSS引起的肝臟組織損傷。

圖1 對照組(A)、DSS組(B)、LMA組(C)和

2.2 肝臟組織氧化應(yīng)激指標(biāo)

如表3所示,與對照組相比,DSS組H2O2、MDA含量極顯著升高(P<0.01),T-SOD、GSH-Px活性和GSH含量及T-AOC顯著或極顯著降低(P<0.05或P<0.01)。與DSS組相比,LMA組H2O2含量顯著降低(P<0.05),T-AOC和GSH-Px活性顯著升高(P<0.05);HMA組H2O2、MDA含量顯著降低(P<0.05),T-SOD、GSH-Px活性和GSH含量及T-AOC顯著升高(P<0.05)。這表明DSS誘導(dǎo)肝臟組織發(fā)生氧化應(yīng)激,MA清除肝臟組織過量ROS,提高肝臟組織抗氧化能力。

表3 肝臟組織氧化應(yīng)激指標(biāo)

2.3 肝臟AST和ALT活性

如圖2所示,與對照組相比,DSS組AST和ALT活性降低,但差異不顯著(P>0.05)。與DSS組相比,LMA組和HMA組AST和ALT活性沒有顯著差異(P>0.05)。這表明DSS未造成肝臟AST和ALT活性下降。

數(shù)據(jù)柱標(biāo)*表示與對照組相比差異顯著(P<0.05),標(biāo)#表示與DSS組相比差異顯著(P<0.05)。下圖同。

2.4 肝臟線粒體膜電位

如圖3所示,與對照組相比,DSS組綠色熒光強(qiáng)度明顯增強(qiáng),且觀察不到紅色熒光;MA處理后綠色熒光強(qiáng)度明顯減弱,紅色熒光強(qiáng)度明顯增強(qiáng)。與對照組相比,DSS組線粒體膜電位顯著降低(P<0.05);與DSS組相比,LMA組和HMA組線粒體膜電位顯著升高(P<0.05)。這表明MA緩解DSS引起的肝臟線粒體膜電位下降。

A、B、C、D:GFP熒光圖;E、F、G、H:Cy5熒光圖。

2.5 GRP78、ATF6、IRE1、PERK、Tert mRNA表達(dá)

如圖4所示,與對照組相比,DSS組GRP78、ATF6、IRE1、PERK、TertmRNA相對表達(dá)量顯著升高(P<0.05)。與DSS組相比,LMA組IRE1、TertmRNA相對表達(dá)量顯著升高(P<0.05),GRP78、ATF6、PERKmRNA相對表達(dá)量沒有顯著差異(P>0.05);HMA組GRP78 mRNA相對表達(dá)量顯著降低(P<0.05),IRE1 mRNA相對表達(dá)量顯著升高(P<0.05),ATF6、PERKmRNA相對表達(dá)量沒有顯著差異(P>0.05)。這表明MA緩解DSS引起的肝臟內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激。

GRP78:葡萄糖調(diào)節(jié)蛋白78 glucose regulated protein 78;ATF6:活化轉(zhuǎn)錄因子6 activating transcription factor 6;IRE1:肌醇依賴性激酶1 inositol requiring enzyme 1;PERK:細(xì)胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶 extracellular regulated protein kinases;Tert:端粒酶逆轉(zhuǎn)錄酶 telomerase reverse transcriptase。

2.6 TNF-α mRNA表達(dá)

如圖5所示,與對照組相比,DSS組TNF-α mRNA相對表達(dá)量顯著升高(P<0.05)。與DSS組相比,LMA組和HMA組TNF-α mRNA相對表達(dá)量沒有顯著差異(P>0.05)。這表明DSS誘發(fā)肝臟發(fā)生炎癥,MA對DSS處理后肝臟TNF-α mRNA表達(dá)沒有顯著影響。

圖5 肝臟TNF-α mRNA表達(dá)

2.7 NLRP3、ASC、Caspase-1、IL-18和IL-1β mRNA表達(dá)

如圖6所示,與對照組相比,DSS組ASC、Caspase-1、IL-1βmRNA相對表達(dá)量顯著升高(P<0.05),NLRP3、IL-18 mRNA相對表達(dá)量沒有顯著差異(P>0.05)。與DSS組相比,LMA組Caspase-1、IL-1βmRNA相對表達(dá)量顯著降低(P<0.05),HMA組ASC、Caspase-1、IL-1βmRNA相對表達(dá)量顯著降低(P<0.05)。這表明NLRP3相關(guān)基因參與調(diào)控MA緩解DSS引起的肝臟炎癥。

NLRP3:Nod樣受體家族含pyrin結(jié)構(gòu)域蛋白3 Nod-like receptor family pyrin domain-containing protein 3;ASC:凋亡相關(guān)斑點(diǎn)樣蛋白 apoptosis-associated speck-like protein containing a CARD;Caspase-1:半胱天冬蛋白酶-1 cysteine aspartatespecific proteinase-1;IL-18:白細(xì)胞介素-18 interleukin-18;IL-1β:白細(xì)胞介素-1β interleukin-1β。

3 討 論

本研究發(fā)現(xiàn),DSS處理后小鼠肝臟H2O2和MDA含量極顯著升高,肝臟T-SOD、GSH-Px活性和GSH含量及T-AOC顯著或極顯著降低,表明肝臟產(chǎn)生過量自由基發(fā)生氧化應(yīng)激,組織抗氧化能力下降。線粒體功能是細(xì)胞健康的重要指標(biāo),是評估線粒體功能的指標(biāo)之一,線粒體膜電位越高,促進(jìn)細(xì)胞能量轉(zhuǎn)換越強(qiáng)[10],在各種凋亡信號的誘導(dǎo)下,線粒體會發(fā)生顯著的結(jié)構(gòu)與功能性的變化,比如線粒體膜電位的丟失、電子傳遞鏈的變化以及細(xì)胞內(nèi)氧化還原狀態(tài)的變化[11]。本試驗(yàn)中,DSS處理后,肝臟線粒體膜電位顯著降低,表明肝臟細(xì)胞處于凋亡早期。氧化應(yīng)激是導(dǎo)致肝功能異常變化的原因之一[12],當(dāng)肝細(xì)胞受損,會釋放AST、ALT進(jìn)入血液循環(huán)[13],AST主要存在于線粒體中,肝細(xì)胞壞死嚴(yán)重時,AST活性才會明顯變化,ALT絕大多數(shù)存在于細(xì)胞質(zhì)中[14]。本試驗(yàn)結(jié)果發(fā)現(xiàn),DSS處理后,肝臟AST和ALT活性雖然有下降趨勢但差異不顯著,仍說明肝臟有部分AST和ALT釋放。GPR78是發(fā)生內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激的標(biāo)志性蛋白,當(dāng)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)處于應(yīng)激狀態(tài)時,大量未折疊或錯誤折疊蛋白堆積于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)腔中,GRP78與ATF-6和PERK感應(yīng)蛋白解離,轉(zhuǎn)而與未折疊蛋白結(jié)合[15],IRE1可被未折疊蛋白直接激活[16],導(dǎo)致其相對表達(dá)量升高;Tert表達(dá)是檢測肝臟組織內(nèi)端粒酶活性的重要指標(biāo),端粒酶活性及TertmRNA相對表達(dá)量與細(xì)胞壞死凋亡具有相關(guān)性[17]。在本試驗(yàn)中,DSS處理后,GRP78、ATF6、IRE1、PERK、TertmRNA相對表達(dá)量顯著升高,肝臟組織出現(xiàn)炎性細(xì)胞浸潤和脂肪變性,炎性因子IL-1β和TNF-α mRNA表達(dá)量顯著上升,表明肝臟發(fā)生內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激并有早期凋亡、炎癥和組織損傷。

本研究發(fā)現(xiàn),MA處理后,LMA組和HMA組肝臟H2O2含量顯著下降,HMA組肝臟MDA含量顯著下降,LMA組和HMA組肝臟T-AOC和GSH-Px活性顯著升高,HMA組肝臟T-SOD活性和GSH含量也顯著升高,這一結(jié)果與報道中花青素等抗氧化劑可以有效降低肝臟中H2O2和MDA含量的結(jié)果[18-19]一致。MA處理后,LMA組和HMA組肝臟線粒體膜電位顯著升高,表明MA能夠有效改善細(xì)胞凋亡。HMA處理后,HMA組肝臟GRP78 mRNA相對表達(dá)量顯著降低,LMA組和HMA組肝臟IRE1 mRNA相對表達(dá)量顯著升高,可能是在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激時短期活化IRE1可剪切X盒結(jié)合蛋白-1(X-box binding protein 1,XBP-1)mRNA來促進(jìn)細(xì)胞生存[20],小鼠肝臟炎性細(xì)胞浸潤和脂肪變性有明顯改善;LMA組和HMA組肝臟IL-1βmRNA相對表達(dá)量顯著下降,表明MA可以緩解肝臟內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激、炎癥反應(yīng)和組織損傷,出現(xiàn)一定的劑量依賴性。

本研究發(fā)現(xiàn),DSS處理后,小鼠肝臟ASC、Caspase-1、IL-1βmRNA相對表達(dá)量顯著升高,表明NLRP3炎性小體參與了肝臟炎癥調(diào)控。MA處理后,LMA組和HMA組肝臟Caspase-1、IL-1βmRNA相對表達(dá)量顯著降低,HMA組肝臟ASCmRNA相對表達(dá)量顯著降低。有報道發(fā)現(xiàn),NLRP3基因表達(dá)后小鼠IBD的病死率顯著提高[21],當(dāng)腸道屏障受損腸肝軸[22]會放大腸道與肝臟Toll樣受體(Toll like receptors,TLRs)之間的關(guān)聯(lián)信號[23],導(dǎo)致肝臟損傷,白細(xì)胞介素受體相關(guān)激酶(interleukin receptor associated kinase,IRAK)會繞過引發(fā)過程,并將TLRs快速連接到NLRP3炎性小體使其被激活[24],DSS在肝臟枯否氏細(xì)胞分布,DSS可以通過巨噬細(xì)胞上的TLRs誘導(dǎo)炎癥[25],從而進(jìn)一步促進(jìn)肝病的發(fā)展。

4 結(jié) 論

綜上所述,DSS誘發(fā)了小鼠肝臟組織損傷、氧化應(yīng)激、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激、膜電位下降和炎癥反應(yīng),MA對此有明顯的緩解作用,其中高劑量MA的緩解作用更強(qiáng),并且NLRP3炎性小體參與調(diào)控炎癥。

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