曹玉祥,張志堅(jiān),周辰康,魏慧君,吳志浩*
(1.皖南醫(yī)學(xué)院檢驗(yàn)學(xué)院,安徽 蕪湖 241002;2.基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院;3.安徽省活性大分子研究重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室)
肺癌是全球發(fā)病率和病死率增長(zhǎng)最快的惡性腫瘤,目前5年相對(duì)生存率僅為15%[1],是一種以細(xì)胞異常增殖為特點(diǎn)的疾病之一,造成肺癌患者遠(yuǎn)期生存率較低的主要原因是腫瘤的侵襲和轉(zhuǎn)移。全球80%以上的肺癌死亡病例是由非小細(xì)胞肺癌(non-small cell lung cancer,NSCLC)轉(zhuǎn)移引起的[2]。NSCLC在肺癌中最常見,其發(fā)生、發(fā)展機(jī)制一直是腫瘤學(xué)研究的熱點(diǎn)。
G蛋白偶聯(lián)受體81(G protein-coupled receptor 81,GPR81)被鑒定為乳酸的受體[3],其在脂肪細(xì)胞和骨骼肌細(xì)胞中高表達(dá),目前發(fā)現(xiàn)在包括肺癌細(xì)胞在內(nèi)的多種腫瘤細(xì)胞中同樣高水平表達(dá)[4],有研究強(qiáng)調(diào)了GPR81在腫瘤生長(zhǎng)和遷移過程中的重要性,在乳腺癌中高表達(dá)的GPR81以PI3K/Akt途徑依賴的方式促進(jìn)增殖并刺激血管生成[5]。Roland等[6]的研究表明GPR81表達(dá)水平與胰腺癌腫瘤生長(zhǎng)速度相關(guān),抑制GPR81表達(dá)可顯著降低腫瘤生長(zhǎng)和體內(nèi)轉(zhuǎn)移。在我們的前期研究中發(fā)現(xiàn)GPR81可以介導(dǎo)肺癌細(xì)胞的侵襲遷移和免疫逃逸[7-8]。
核因子E2相關(guān)因子2(nuclear factor erythroid 2-related factor 2,Nrf2)是一種細(xì)胞存活的調(diào)節(jié)因子并可以啟動(dòng)細(xì)胞防御機(jī)制,在氧化應(yīng)激和外源性應(yīng)激條件下,能引起Nrf2對(duì)細(xì)胞的保護(hù)作用[9],防止腫瘤的發(fā)生發(fā)展。然而Nrf2不僅可以保護(hù)正常細(xì)胞,在腫瘤細(xì)胞中表達(dá)量較正常細(xì)胞高,維持腫瘤細(xì)胞的氧化還原平衡狀態(tài),在保護(hù)腫瘤細(xì)胞的增殖、侵襲和遷移等過程中扮演著重要角色,但 其 分 子 機(jī) 制 并 不 清 楚[10]。乳 酸 脫 氫 酶A(lactate dehydrogenase A,LDHA)是糖酵解途徑中的關(guān)鍵酶之一,對(duì)丙酮酸具有較強(qiáng)的親和力,LDHA的表達(dá)又會(huì)促進(jìn)糖醇解產(chǎn)生大量乳酸[11]。本文探究GPR81介導(dǎo)的乳酸通過Nrf2/LDHA通路促進(jìn)NSCLC遷移的信號(hào)通路,并探索其分子機(jī)制。
1.1 材料與試劑 NSCLC細(xì)胞系H1299由上海生科院細(xì)胞庫(kù)提供;高糖DMEM培養(yǎng)基購(gòu)自美國(guó)Hyclone公司;10%小牛血清購(gòu)自南京博全科技有限公司;基因組DNA提取試劑盒、DNA marker、2×Taq PCR MasterMix購(gòu)自北京天根生化科技有限公司;DNA上樣緩沖液、感受態(tài)大腸桿菌DH5α購(gòu)自日本TaKaRa公司;瓊脂糖凝膠、2×Leammli Sample Buffer細(xì)胞裂解液、抗β-actin抗體購(gòu)自美國(guó)Sigma公司;PCR純化試劑盒、質(zhì)粒大量提取試劑盒購(gòu)自德國(guó)Qiagen公司;限制性內(nèi)切酶KpnⅠ、HindⅢ,T4 DNA連接酶購(gòu)自美國(guó)NEB公司;胰蛋白胨、酵母提取物購(gòu)自英國(guó)Oxoid公司;質(zhì)粒小量抽提試劑盒購(gòu)自上海碧云天生物技術(shù)有限公司;PolyJet轉(zhuǎn)染試劑購(gòu)自美國(guó)SignaGen公司;pGL3-Basic載體、pRL-CMV載體、Passive Lysis Buffer細(xì)胞裂解液、雙熒光素酶報(bào)告基因檢測(cè)試劑盒、雙熒光素酶報(bào)告基因檢測(cè)系統(tǒng)購(gòu)自美國(guó)Promega公司;Nrf2質(zhì)粒購(gòu)自美國(guó)Addgene公司;siLDHA、siNrf2購(gòu)自廣州銳博生物科技有限公司;紫外分光光度計(jì)、PCR儀購(gòu)自德國(guó)Eppendorf公司;凝膠成像儀購(gòu)自美國(guó)Protein Simple公司;抗Nrf2抗體購(gòu)自英國(guó)Abcam公司;抗LDHA抗體購(gòu)自美國(guó)CST公司;Amersham Imager 600成像儀購(gòu)自美國(guó)GE公司,熒光倒置顯微鏡購(gòu)自日本Olympus公司。
1.2 細(xì)胞培養(yǎng) 用含10%小牛血清的DMEM培養(yǎng)基于37℃、5%CO2孵育箱中培養(yǎng)H1299細(xì)胞,培養(yǎng)基中含青霉素、鏈霉素100 U/ml。
1.3 細(xì)胞轉(zhuǎn)染 取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的H1299細(xì)胞,于轉(zhuǎn)染前1 d接種到6孔板(105個(gè)/孔)或者12孔板(5×104個(gè)/孔)中繼續(xù)培養(yǎng),待細(xì)胞生長(zhǎng)融合度達(dá)到30%~50%時(shí)進(jìn)行轉(zhuǎn)染,根據(jù)Lipofectamine 2000說明書,將siRNA轉(zhuǎn)入細(xì)胞中,在37℃、5%CO2孵育箱中培養(yǎng)48 h后,用于相關(guān)檢測(cè)實(shí)驗(yàn)。
1.4 Western blot檢測(cè)蛋白表達(dá)水平 將已處理完成的細(xì)胞使用PBS洗滌,加入細(xì)胞裂解液,迅速將細(xì)胞刮下收集細(xì)胞。100℃熱變性5 min,使用10% SDS-PAGE電泳后電轉(zhuǎn)移至硝酸纖維素膜(NC膜)上,5%牛奶室溫封閉1 h,按照1∶1 000比例稀釋并孵育一抗,4℃過夜,按照1∶2 000比例稀釋并室溫孵育二抗1 h,ECL發(fā)光顯影。使用Amersham Imager 600系統(tǒng)對(duì)目的條帶進(jìn)行成像分析,測(cè)定灰度值,用β-actin作為內(nèi)參對(duì)照,來檢測(cè)相關(guān)蛋白的相對(duì)表達(dá)量。
1.5 質(zhì)粒構(gòu)建 用DNA提取試劑盒提取細(xì)胞基因組DNA,根據(jù)UCSC Genome Browser數(shù)據(jù)庫(kù)中Genomic Sequence報(bào)道的人源LDHA基因啟動(dòng)子序列(NR-028500.1)利用oligo 7軟件設(shè)計(jì)單鏈引物,并在上游引物和下游引物中分別添加KpnⅠ和HindⅢ兩種酶切位點(diǎn),引物由上海生工生物工程股份有限公司合成。引物序列如下:LDHA-luc(238 bp)上游引物:5′-GGGGTACC ACGTGGAGCAGTCTGCCGGTCGGTTG-3′(下 劃 線 部 分 為KpnⅠ酶切位點(diǎn)),下游引物:5′-GGGAAGCTT TCG TCGGGGGCGCGTGGCAATGAGAT-3′(下劃線部分為HindⅢ酶切位點(diǎn));LDHA-luc(1 249 bp)上游 引 物:5′-GGGGTACC GGCAATGGAATCAGCAAGAATACAGG-3′(下劃線部分為KpnⅠ酶切位點(diǎn)),下游引物:5′-GGGAAGCTT TCGTCGGGGGC GCGTGGCAATGAGAT-3′(下劃線部分為HindⅢ酶切位點(diǎn))。經(jīng)擴(kuò)增、酶切、連接、測(cè)序,完成質(zhì)粒構(gòu)建。
1.6 雙熒光素酶活性測(cè)定 LDHA-luc是由LDHA基因啟動(dòng)子控制的表達(dá)螢火蟲熒光素酶的質(zhì)粒,pRL-CMV是由CMV啟動(dòng)子控制的表達(dá)海腎熒光素酶的質(zhì)粒(作為轉(zhuǎn)染效率的對(duì)照)。按照雙熒光素酶報(bào)告基因檢測(cè)試劑盒說明書進(jìn)行操作,棄去孔內(nèi)培養(yǎng)基,使用PBS洗滌2次,每孔加入Passive Lysis Buffer裂解液100 μl,室溫?fù)u動(dòng)20 min后收取樣品,4℃離心15 min進(jìn)行檢測(cè)。取20 μl上清液與20 μl Luciferase Assay Buffer混合,檢測(cè)螢火蟲熒光素酶的活性;繼續(xù)加入20 μl Stop&Glo Buffer混合,檢測(cè)海腎熒光素酶活性,計(jì)算2種熒光素酶活性的比值。
1.7 細(xì)胞遷移劃痕實(shí)驗(yàn) 在H1299細(xì)胞中分別共轉(zhuǎn)染Nrf2+control siRNA、Nrf2+LDHA siRNA,以pcDNA3.1+control siRNA作為對(duì)照。48 h后,用無(wú)血清培養(yǎng)基同步化處理,用無(wú)菌的10 μl槍頭對(duì)細(xì)胞進(jìn)行劃痕實(shí)驗(yàn),PBS清洗2次后換上無(wú)血清培養(yǎng)基并一直使用無(wú)血清培養(yǎng)基培養(yǎng),立即使用熒光倒置顯微鏡進(jìn)行拍照,記為0 h,每隔24 h拍一次照,分別記為24、48、72、96 h。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,重復(fù)照相,并計(jì)算平均值。
1.8 Transwell實(shí)驗(yàn) 將0 mmol/L和20 mmol/L乳酸處理過的細(xì)胞經(jīng)胰酶消化后調(diào)整濃度為1×105個(gè)/ml,700 μl含10%小牛血清的DMEM培養(yǎng)基加入Transwell下室,300 μl細(xì)胞懸浮液加入Transwell上室,在37℃、5%CO2孵育箱中培養(yǎng)48 h后,取出Transwell小室,吸去廢液,用棉簽擦凈基底膜,PBS清洗,甲醛固定10 min,結(jié)晶紫染色20 min,清水漂洗,顯微鏡下觀察、拍照并計(jì)數(shù)。
1.9 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用GraphPad Prism 6軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析作圖,計(jì)量資料采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,2組均數(shù)的比較采用t檢驗(yàn);多組均數(shù)的比較采用方差分析,組間比較采用Dunnet t檢驗(yàn),以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;細(xì)胞遷移劃痕實(shí)驗(yàn)采用Image-Pro Plus 6.0軟件分析細(xì)胞的平均遷移速率。
2.1 乳酸促進(jìn)H1299細(xì)胞的遷移及相關(guān)蛋白水平的上升 Transwell實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,利用20 mmol/L乳酸處理過的H1299細(xì)胞穿膜比例明顯高于未處理過的細(xì)胞,是對(duì)照組10倍,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05) (圖1A、圖1B);Western blot結(jié)果顯示,不同濃度乳酸處理H1299細(xì)胞,GPR81、Nrf2和LDHA蛋白表達(dá)水平隨著乳酸濃度的遞增而成上升趨勢(shì)(圖1C、圖1D)。

圖1 乳酸促進(jìn)H1299細(xì)胞的遷移及相關(guān)蛋白水平的上升
2.2 GPR81介導(dǎo)乳酸對(duì)Nrf2/LDHA通路的上調(diào)
Western blot結(jié)果顯示,在H1299細(xì)胞中轉(zhuǎn)染GPR81 siRNA,Nrf2和LDHA的蛋白表達(dá)水平明顯下降,同時(shí)也觀察到p-AKT蛋白水平的降低(圖2A、圖2B);當(dāng)在H1299細(xì)胞中加入PI3K-AKT通路抑制劑LY294002時(shí),p-AKT蛋白水平降低,Nrf2和LDHA蛋白表達(dá)水平隨之降低(圖2C、圖2D)。

圖2 GPR81介導(dǎo)乳酸對(duì)Nrf2/LDHA通路的上調(diào)
2.3 Nrf2對(duì)LDHA促進(jìn)作用的分子機(jī)制 Western blot結(jié)果顯示,在H1299細(xì)胞中轉(zhuǎn)染Nrf2 siRNA,不同濃度乳酸處理,LDHA蛋白表達(dá)水平降低,并隨著乳酸濃度的遞增而成上升趨勢(shì)(圖3A、圖3B);構(gòu)建完成不同片段長(zhǎng)度的LDHA啟動(dòng)子質(zhì)粒LDHA-luc(1 249 bp)和LDHA-luc(238 bp)(圖3C、圖3D);在H1299細(xì)胞中轉(zhuǎn)染pcDNA3.1+LDHA-luc(238 bp)、Nrf2+LDHA-luc(238 bp)、pcDNA3.1+LDHA-luc(1 249 bp)和Nrf2+LDHA-luc(1 249 bp),與對(duì)照組相比,Nrf2對(duì)LDHA啟動(dòng)子活性有促進(jìn)作用,并且LDHA-luc(1 249 bp)活性比LDHA-luc(238 bp)活性高(圖3E)。

圖3 Nrf2對(duì)LDHA促進(jìn)作用的分子機(jī)制
2.4 LDHA的表達(dá)影響H1299細(xì)胞的遷移速率細(xì)胞遷移劃痕實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,在H1299細(xì)胞中轉(zhuǎn)染Nrf2+LDHA siRNA實(shí)驗(yàn)組的遷移速率明顯比轉(zhuǎn)染Nrf2+control siRNA實(shí)驗(yàn)組的遷移速率慢(圖4A);且在96 h內(nèi)的平均遷移速率分別為(15.4±0.5)μm/d、 (38.7±0.5)μm/d和(19.0±0.5)μm/d(圖4B)。

圖4 LDHA的表達(dá)影響H1299細(xì)胞的遷移速率
肺癌侵襲轉(zhuǎn)移的動(dòng)態(tài)過程是多因素、多環(huán)節(jié)、連續(xù)漸進(jìn)的,涉及到多個(gè)基因的突變和功能變化,引起許多信號(hào)通路功能的異常,進(jìn)而引發(fā)有助于腫瘤生長(zhǎng)的生物學(xué)效應(yīng)[12]。有研究顯示,腫瘤細(xì)胞的侵襲遷移與腫瘤微環(huán)境中乳酸的不斷積累有密切聯(lián)系[13]。有氧糖酵解是由腫瘤細(xì)胞內(nèi)基因突變而誘發(fā)的代謝重編程,即在氧氣充足條件下,將丙酮酸轉(zhuǎn)化為乳酸,而不是進(jìn)入三羧酸循環(huán)[14],其主要功能是使糖酵解產(chǎn)物通過旁路途徑合成核酸、蛋白質(zhì)及脂肪酸的前體[15],從而滿足腫瘤生長(zhǎng)的需要,在腫瘤細(xì)胞遷移過程中起了關(guān)鍵作用。Nrf2作為對(duì)氧化還原敏感的核轉(zhuǎn)錄因子,在受到氧化劑等物質(zhì)刺激時(shí),會(huì)由細(xì)胞質(zhì)轉(zhuǎn)移到細(xì)胞核中,啟動(dòng)ARE調(diào)控氧化應(yīng)激蛋白和多種Ⅱ相解毒酶基因轉(zhuǎn)錄[16]。從而探索Nrf2對(duì)LDHA的誘導(dǎo)為進(jìn)一步探索腫瘤代謝和微環(huán)境對(duì)癌細(xì)胞生長(zhǎng)的影響做出了鋪墊。
在高濃度的乳酸環(huán)境中,乳酸水平的穩(wěn)定是靠單羧酸轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白(MCTs)來調(diào)控。在體外模擬腫瘤微環(huán)境,當(dāng)用乳酸作為癌細(xì)胞的主要能源時(shí),GPR81表型缺失的癌細(xì)胞,對(duì)乳酸水平變化不敏感,線粒體活性受到抑制,細(xì)胞的生長(zhǎng)和增殖受到影響,而正常的癌細(xì)胞中,MCTs和過氧化物酶體增殖物激活受體-γ共激活因子-1α(PGC-1α)的水平相應(yīng)增加[6],因此,GPR81在癌細(xì)胞的生存中起重要作用。本文將GPR81作為乳酸介導(dǎo)Nrf2/LDHA信號(hào)通路的關(guān)鍵因素進(jìn)行探索研究,并進(jìn)行了證明。
綜上所述,本研究通過乳酸對(duì)H1299細(xì)胞遷移的影響,探索了核轉(zhuǎn)錄因子Nrf2對(duì)LDHA促進(jìn)作用的分子機(jī)制,進(jìn)而明確了乳酸通過GPR81調(diào)控Nrf2/LDHA的信號(hào)通路,為后期臨床癌細(xì)胞侵襲遷移的相關(guān)研究奠定了基礎(chǔ)。
沈陽(yáng)醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào)2021年4期