鄭 暉,全軍承,程 績,周人杰
(陸軍軍醫大學第二附屬醫院急診科,重慶 400037)
骨骼肌異位脂肪沉積是機體發生糖脂代謝紊亂、胰島素抵抗和2型糖尿病的重要原因[1-2]。圍脂滴蛋白(perilipin,PLIN)是最具代表性的脂滴包被蛋白,它直接或間接參與骨骼肌的脂質代謝,與脂滴的動態平衡、脂質代謝穩態及靶器官胰島素敏感性關系密切[3-5]。有研究證實,PLINs的表達受腺苷酸活化蛋白激酶(AMPK)[6]和過氧化物酶體增殖物激活受體δ(PPARδ)信號通路的調控[7]。二甲雙胍是臨床上防控糖尿病的一線藥物,它能激活AMPK信號通路,增強骨骼肌的胰島素敏感性。因此,本研究旨在探討二甲雙胍是否通過AMPK-PPARδ-PLINs信號通路抑制骨骼肌異位脂肪沉積,從而改善胰島素抵抗。
8周齡C57BL/6J小鼠24只由陸軍軍醫大學實驗動物中心提供,分籠飼養在SPF級動物房,自由飲水覓食、恒溫。標準飼料和60%高脂飼料購自北京華阜康生物科技有限公司。二甲雙胍購自美國Sigma公司;歐姆龍血糖儀、配套血糖試紙,以及胰島素(INS)、三酰甘油(TG)、總膽固醇(TC)、低密度脂蛋白膽固醇(LDL-C)、高密度脂蛋白膽固醇(HDL-C)和游離脂肪酸(FFA)檢測試劑盒購自上海酶聯生物有限公司;一抗PLIN2和PLIN5購自英國Abcam公司,一抗AMPK、PPARδ、p-AMPK購自美國Cell Signaling公司;DNA提取試劑盒購自凱杰公司;PCR和逆轉錄試劑盒購自日本TaKaRa公司。PLIN1:上游引物TGGAAACTGAGGAGAACAAG,下游引物ATGTCACAGCCGAGATGG;PLIN2:上游引物GAAACTGAGGAGAACACATCA,下游引物TGTCACGACATCAGCCA;PLIN3:上游引物TATTGGATCCGTACAGCCCAG,下游引物TATTAAGCTTGCCCCACGAC;PLIN4:上游引物TAACCCTATTATCTCTCCCT,下游引物GGTGTTTTAGGATTGACAT;PLIN5:上游引物GGTGACATCAGCCAAGGATACAG,下游引物TCCACCAGCTTCTCCGACTT;18s RNA:上游引物CGCAAATTACCCACTCCCGAC,下游引物GTAACCTCCCGTTCAGACCAC。
1.2.1實驗分組
本研究經陸軍軍醫大學第二附屬醫院倫理委員會審查批準實驗。將小鼠分為對照組(ND組)、高脂組(HF組)、高脂+二甲雙胍組(HF+Met組),每組8只。ND組喂養標準飼料,HF和HF+Met組喂養高脂飼料。二甲雙胍溶于水中,每日按照250 mg/kg的計量給予HF+Met組小鼠灌胃。每周稱重1次,持續喂養16周,空腹隔夜后剪鼠尾取血檢測血糖。乙醚麻醉心臟取血,頸椎脫臼處死小鼠,取材做如下實驗。
1.2.2ELISA檢測血清脂代謝相關生化指標水平
心臟取血,靜置2 h后3 000 r/min離心10 min,吸取上層血清分裝入新的EP管中,按照INS、TG、TC、LDL-C、HDL-C和FFA檢測試劑盒說明書檢測其水平。
1.2.3骨骼肌油紅O染色
比目魚肌切成1 cm×1 cm的方塊于OCT包埋劑中,放入液氮中急凍20 s,冰凍切片成16 μm厚切片,在4%多聚甲醛溶液中固定10 min,清水沖洗載玻片。將載玻片浸泡在60%異丙醇中30 s,在油紅O溶液中室溫孵育15 min。60%異丙醇洗2次,清水洗2 min,蘇木精復染30 s后用水清洗過量的蘇木精。索尼數碼相機光鏡400倍,取油紅O染色比目魚肌照片。
1.2.4骨骼肌內TG水平測定
取比目魚肌組織50 mg,加入200 μL的PBS,組織勻漿機盡量破碎組織,4 ℃ 3 000 r/min離心15 min。提取上清液按照試劑盒說明書檢測。
1.2.5PCR檢測PLINs mRNA表達
提取比目魚肌組織RNA,取1 μL檢測RNA的濃度和純度,檢測PLINs mRNA表達,具體操作步驟按照試劑盒說明書進行。
1.2.6Western blot檢測AMPK、PPARδ、p-AMPK、PLIN2和PLIN5表達
取比目魚肌組織20 mg,加入蛋白裂解液300 μL,冰上勻漿裂解30 min,4 ℃ 12 000 r/min離心20 min,提取上層清液測定蛋白濃度,煮沸10 min變性蛋白。上樣、電泳、轉膜結束后,放入10%脫脂牛奶中封閉2 h,加入AMPK、PPARδ、p-AMPK、PLIN2和PLIN5一抗過夜。加入相應二抗,曝光后Image J進行灰度值分析。
與ND組比較,HF組中小鼠體重、血清中糖代謝相關生化指標[空腹血糖(FBG)與空腹血胰島素(FINS)]及脂代謝相關生化指標(TG、TC、LDL-C和FFA)水平明顯升高(P<0.05),二甲雙胍干預后,體重、FBG、 FINS、TG、TC和FFA等指標較HF組明顯降低(P<0.05),見表1。

表1 各組糖、脂代謝相關生化指標比較
HF組中紅色LD的數量明顯增多(P<0.05),TG水平明顯升高(P<0.05),二甲雙胍干預后LD和TG水平明顯降低(P<0.05),見圖1。

A:油紅O染色(×400);B:TG水平;*:P<0.05,與ND組比較;#:P<0.05,與HF組比較。
PLIN1在比目魚肌組織不表達;各組PLIN3、PLIN4 mRNA表達差異無統計學意義(P>0.05);HF組中PLIN2、PLIN5 mRNA和蛋白表達明顯高于ND組(P<0.05);二甲雙胍干預后,PLIN2 mRNA和蛋白表達明顯降低(P<0.05),而PLIN5表達未見明顯變化(P>0.05),見圖2、3。

*:P<0.05,與ND組比較;#:P<0.05,與HF組比較。
與ND組比較,HF組p-AMPK、PPARδ蛋白表達明顯降低(P<0.05),二甲雙胍干預后,p-AMPK和PPARδ蛋白表達明顯升高(P<0.05),見圖3。

*:P<0.05,與ND組比較;#:P<0.05,與HF組比較。
肥胖已成為全球性的重大公共衛生問題,我國肥胖形勢不容樂觀,平均肥胖率高達12%,并且呈現出年輕化趨勢[8]。肥胖一方面將過剩的能量以TG的形式儲存于脂肪組織中,另一方面過多的FFA進入到其他非脂肪組織中,引起異位脂肪沉積,其中骨骼肌異位脂肪沉積在胰島素抵抗的發生、發展中起著至關重要的作用[1-2]。因此,如何有效地防止骨骼肌異位脂肪沉積已成為防治胰島素抵抗,甚至2型糖尿病的重點。本文通過高脂誘導建立小鼠肥胖模型,發現二甲雙胍逆轉了在高脂誘導下小鼠糖、脂代謝異常,骨骼肌中LD增多,TG水平和PLIN2 mRNA、蛋白表達升高,p-AMPK、PPARδ蛋白表達降低。高脂誘導下PLIN5 mRNA和蛋白表達明顯升高,而二甲雙胍干預后它的表達水平有所下降,但無明顯變化。
PLINs是典型的脂滴包被蛋白,家族中5個亞型都不同程度地參與LD的合成、生長、轉運及降解。但是5個亞型的表達具有組織特異性。PLIN1主要表達在脂肪和類固醇細胞中,在骨骼肌中不表達[9]。PLIN2在脂肪細胞和骨骼肌細胞中高表達,它的表達量與骨骼肌中LD呈明顯的正相關,并且能與脂肪分解的限速酶相互作用[10]。研究表明脛骨前肌過表達PLIN2增加了肌肉中TG水平及LD的大小、數量,在培養的肌管細胞中PLIN2的下調阻止了油酸誘導的LD儲存,這些證據推測PLIN2可能參與了LD的合成和生長[11]。本研究發現,在高脂模型的比目魚肌組織中的TG水平、LD數量、PLIN2 mRNA和蛋白表達明顯升高,二甲雙胍干預后PLIN2表達隨著TG水平和LD數量減少而降低。但是值得思考的是,到底是由于LD的變化導致PLIN2變化還是由于PLIN2變化引起LD變化,二者的因果關系還需今后進一步的實驗研究。本研究發現,PLIN3在骨骼肌中表達,但是在高脂模型和高脂+二甲雙胍干預模型下PLIN3表達水平并無明顯變化。而之前有證據顯示,在AMPK的激動劑作用下,股四頭肌中PLIN3表達水平明顯升高[12]。二甲雙胍作為AMPK的激活劑,在本研究中并未表現出刺激PLIN3的作用,這可能與實驗的肌肉取材相關,比目魚肌主要是以慢肌纖維為主,而股四頭肌是混合型肌纖維,肌纖維類型的差別導致了PLIN3表達的差異性。
PLIN5主要在肝臟、脂肪、心臟和骨骼肌等氧化代謝高的組織中[13]。BOSMA等[14]發現骨骼肌中過表達PLIN5導致了肌內TG水平升高,推測其可能作為脂質屏障,保護LD不受脂肪酶水解活性的影響。本研究同樣發現在高脂模型下,骨骼肌內TG和LD升高,PLIN5 mRNA和蛋白表達也明顯升高。二甲雙胍干預后,肌內TG和LD降低,但是PLIN5表達并無明顯變化。前期研究顯示,PLIN5不僅定植于LD表面,還定位在細胞質和線粒體中,并且它的轉錄活性受PPARδ調控。BINDESB?LL等[15]發現PLIN5的基因結構域中存在PPAR功能性結合位點,并且證實PLIN5可作為PPARδ在肌肉組織中的直接作用靶點,長鏈脂肪酸誘導PLIN5轉錄活性增加依賴PPARδ的表達。LAURENS等[13]推測,在骨骼肌氧化代謝需求增強時,PLIN5作為LD和線粒體之間溝通的橋梁,促進脂肪酸轉運入線粒體,增強脂肪分解代謝。因此,筆者認為在高脂誘導下,LD表面的PLIN5表達升高協同PLIN2促進過多的FFA以TG的形式儲存在肌細胞中,而二甲雙胍作為AMPK激活劑,當氧化代謝增強時,細胞質和線粒體PLIN5表達升高促進脂肪酸有氧氧化。本課題組后續將針對PLIN5的定位變化深入研究。
綜上所述,二甲雙胍可能通過AMPK-PPARδ信號通路調控PLIN2、5表達和定位,抑制骨骼肌中LD生成和TG水平,進而改善胰島素抵抗。