袁曉麗 1,江莉 1,黃莉莉 1,胡斌
(1.綿陽市中心醫院心血管內科,四川綿陽 621000;2.西南醫科大學附屬醫院心血管內科,四川瀘州 646000)
新生血管形成是腫瘤疾病發生及發展的重要過程,其不僅使腫瘤細胞生長,還能參與腫瘤細胞侵襲、轉移過程[1]。腫瘤生長需要血管內皮細胞的旁分泌作用,而人臍靜脈內皮細胞(human umbilical vein endothelial cells,HUVEC)是一種重要的內皮細胞[2]。探究HUVEC的增殖、運動是目前腫瘤研究的熱點之一。近年來,研究顯示micro RNA可參與腫瘤的發生發展過程[3]。miR-154-3p是近年來研究較多的一種micro RNA,Jiang等[4]研究表明,降低miR-154-3p的表達水平會促進乳腺癌細胞的增殖。Fan等[5]研究表明,過表達miR-154-3p可以抑制甲狀腺癌的發展。近年來隨著對腫瘤研究的深入,發現除了micro RNA,Smad蛋白也介導了癌細胞的生長過程。Troncone等[6]研究表明,Smad7在結腸癌細胞中的表達也被上調,為促癌因子。李勇等[7]研究表明,miR-181c靶向作用Smad7調控神經母細胞瘤的生物學特性。因此推測miR-154-3p也可以靶向調控Smad7對HUVEC的相關生物學特征有一定的影響,但目前尚無有關研究。本研究探究了miR-154-3p和Smad7的靶向性,同時分析了miR-154-3p作用后的HUVEC的生長、運動及免疫的機制機理,旨在為相關癌癥的臨床診療提供參考。
HUVEC細胞由中國科學院細胞庫提供。
TRAIL購自英國Pepro Tech公司;Lipo‐fectamine 2000購自Invitrogen公司;胰蛋白酶購自Biosharp公司;青霉素和鏈霉素購自Solarbio公司;TRAIL購自英國Pepro Tech公司;胎牛血清購自Hyelone公司;孔板購自美國Corning公司;VEGF抗體(貨號:sc-7269)、Smad7抗體(貨號:sc-365846)購自美國Santa Cruz公司;一氧化氮合酶(inducible nitric oxide synthase,iNOS)、白細胞介素-6(interleu‐kin-6,IL-6)、白細胞介素-4(interleukin-4,IL-4)均購自武漢華聯科有限公司。
Transwell小室購自美國Corning Coseter公司;Cubis型模塊化電子天平購自蘇州賽多斯有限公司;SF-TGL-20R型臺式高速冷凍離心機購自上海菲恰爾分析儀器有限公司;WMJ-9688型正置金相顯微鏡購自上海無陌光學儀器有限公司;L00816C型快速智能蛋白印跡儀、L00686C型快速智能蛋白濕轉儀、L00657C型快速智能蛋白染脫色儀均購自南京金斯瑞生物科技有限公司;Leica VT1200型震蕩切片機、CM3050S型冰凍切片機購自德國Leica公司。
1.3.1 細胞培養 常規復蘇HUVEC細胞,分散于包含100 U/mL的青霉素和鏈霉素的RPMI1640培養基中,置于細胞培養箱中,進行傳代培,養。
1.3.2 分組 取對數期生長HUVEC細胞,分為:Control組、miR-154-3p組、Smad7組和miR-154-3p+Smad7組。
1.3.3 細胞轉染及穩定細胞株構建 miR-154-3p組:將miR-154-3p mimic轉染HUVEC;Smad7組:使用pcDNA3.0構建Smad7過表達載體,并轉染HU‐VEC;miR-154-3p+Smad7組:將miR-154-3p mimic和Smad7過表達載體共轉染HUVEC細胞,根據脂質體轉染實際Lipofectamine 2000說明進行操作,轉染后24 h,篩選穩定的細胞株,Control組僅加入轉染試劑。
1.3.4 RT-PCR檢測miR-154-3p和Smad7的mRNA表達水平 取上述各組HUVEC細胞,采用Trizol提取細胞總RNA,選用兩步法RNA提取試劑盒將RNA轉錄成cDNA。選擇miR-154-3p和Smad7的合適上下游引物,以cDNA為模板采用定量PCR儀擴增,以actin為內參照基因采用2?△△Ct法計算miR-154-3p和Smad7的mRNA的相對表達量。
1.3.5 熒光素酶實驗檢測靶向性 根據NCBI數據庫查詢,采用生物學預測miR-154-3p和Smad7的靶點,miRNA靶點預測軟件提示,miR-154-3p的可能結合位點為Smad7 mRNA的3’UTR位點176~182,體外合成含該位點的DNA片段(wt)以及含該位點突變體(mut)的DNA片段,退火后克隆到雙熒光素酶啟動子載體。將miR-154-3p質粒和Smad7 mRNA分別單獨和共轉染卵HUVEC細胞,孵育48 h后,用熒光素酶檢測試劑盒測定熒光素酶活性,并統計分析結果。
1.3.6 蛋白質印跡法檢測Smad7和VEGF表達水平
取對數期上述各組HUVEC細胞,加入細胞裂解液提取總蛋白,定量后經10%SDS-PAGE電泳轉印到PVDF膜上,使用脫脂奶粉封閉2 h,完成封閉后加入Smad7抗體(稀釋比例1∶500)和VEGF抗體(稀釋比例1∶500),孵育24 h后TBST緩沖液洗滌3次,加入二抗,孵育1 h后TBST緩沖液洗滌3次,ECL顯影劑顯影,以GADPH為內參蛋白,計算Smad7和VEGF蛋白相對表達量。
1.3.7 克隆形成實驗 取對數期上述各組HUVEC細胞,制作成濃度為1×105/mL單細胞懸液,接種于6孔板,100個/孔,置于恒溫細胞培養箱孵育,2周觀察細胞克隆形成情況,加入結晶紫染液染色30 min后拍照。
1.3.8 微管形成實驗檢測細胞增殖實驗 取對數期上述各組HUVEC細胞,用無血清培養基調整濃度至1.2×105/mL后接種于Matrigel人工基質膠與4℃預冷的無血清培養基按1∶1比例混合,接種于24孔板中,1 mL/孔,進行孵育,共16 h,每4 h采用光學顯微鏡(400×)隨機選取5個視野,觀察微管樣結構形成情況并拍照計數。
1.3.9 iNOS、IL-6和IL-10水平 取對數期上述各組HUVEC細胞,制作1×103個/mL單細胞懸液,使用細胞裂解液裂解后,按照iNOS、IL-6和IL-4試劑盒操作說明檢測iNOS、IL-6和IL-4含量水平。
1.3.10 Transwell實驗檢測細胞侵襲情況 取對數期上述各組HUVEC細胞,調節細胞密度為1×105個/mL,100μL基質膠均勻覆蓋于Transwell小室底部,上室加入100μL細胞懸液,下室加入等量含血清培養基。培養24 h后,對侵襲至下室的HUVEC細胞進行結晶紫染色。每組細胞設置3個復孔,隨機選取各組細胞55個高倍鏡視野,拍照并計算侵襲細胞數。
采用SPSS 22.0軟件進行數據統計分析,采用GraphPad Prism5軟件作圖,多組間比較使用單因素方差分析,兩兩比較采用LSD-t法,P<0.05為差異有統計學意義。
根據NCBI上查詢miR-154-3p上有Smad7的結合位點;采用RT-PCR檢測發現,相比Control組,minic-NC組miR-154-3p和Smad7 mRNA表達差異無統計學意義(P>0.05);相比Control組,miR-154-3p組miR-154-3p表達顯著升高,Smad7 mRNA表達顯著降低(P<0.05);野生型miR-154-3p組熒光酶活性顯著低于突變體miR-154-3p組熒光酶活性(P<0.05),表明miR-154-3p上有Smad7的結合位點,見圖1。

圖1 miR-154-3p和Smad7靶向性檢測Figure 1 Targeted detection of miR-154-3p and Smad7
蛋白質印跡實驗檢測Smad7表達情況發現,與Control組相比,pc-DNA組Smad7表達差異無統計學意義(P>0.05);相比Control組,Smad7組Smad7蛋白相對表達顯著升高(P<0.05)。相比Control組,miR-154-3p組miR-154-3p相對表達顯著升高(P<0.05),Smad7蛋白相對表達和細胞克隆形成率顯著降低(P<0.05);相比Control組,Smad7組miR-154-3p相對表達顯著降低(P<0.05),Smad7蛋白相對表達和細胞克隆形成率顯著升高(P<0.05);相比Smad7組,miR-154-3p+Smad7組miR-154-3p相對表達顯著升高(P<0.05),Smad7蛋白相對表達和細胞克隆形成率顯著降低(P<0.05),見圖2。

圖2 各組Smad7表達和克隆形成實驗結果Figure 2 Expression and clone formation of Smad7 in each group
Transwell小室實驗檢測發現,相比Control組,miR-154-3p組單位面積細胞侵襲數顯著降低,Smad7組單位面積細胞侵襲數顯著升高(P<0.05);相比Smad7組,miR-154-3p+Smad7組單位面積細胞侵襲數顯著降低(P<0.05),見圖3。

圖3 細胞侵襲狀況檢測結果Figure 3 Detection of cell invasion
蛋白質印跡實驗檢測發現,相比Control組,miR-154-3p組VEGF蛋白相對表達水平和微管形成節點數均顯著降低,Smad7組VEGF蛋白相對表達水平和微管形成節點數均顯著升高(P<0.05);相比Smad7組,miR-154-3p+Smad7組VEGF蛋白相對表達水平和微管形成節點數均顯著降低(P<0.05),見圖4。

圖4 各組VEGF表達及微管形成實驗檢測結果Figure 4 VEGFexpression and microtubule formation in each group
RT-PCR和ELISA法檢測相關細胞因子水平發現,相比Control組,miR-154-3p組iNOS mRNA和血清iNOS含量水平以及IL-6 mRNA和血清IL-6含量水平顯著降低,IL-10 mRNA和血清IL-10含量水平顯著升高(P<0.05);相比Smad7組,miR-154-3p+Smad7組iNOS mRNA和血清iNOS含量水平以及IL-6 mRNA和血清IL-6含量水平顯著升高,IL-10 mRNA和血清IL-10含量水平顯著降低(P<0.05),見圖5。

圖5 各組相關細胞因子表達水平Figure 5 Expression of cytokine levels in each group
Smad7是Smads家族中抑制型Smads,可以通過TGF-β作用細胞周期,促進細胞進入S期,同時抑制TGF-β下游Rb的磷酸化以及細胞的凋亡,是目前研究較多的一種促癌因子[8]。本研究通過NCBI上查詢發現miR-154-3p上存在Smad7的結合位點,因此推測miR-154-3p可以通過靶向作用于Smad7 mRNA,下調Smad7表達水平實現抑制癌細胞的進展。通過熒光霉素實驗發現野生型miR-154-3p組熒光酶活性顯著低于突變體miR-154-3p組熒光酶活性,說明miR-154-3p確實存在Smad7的結合位點,可以靶向作用降低Smad7的表達水平,為后續研究提供了一定理論基礎。
內皮細胞在血管生成過程中發揮著至關重要的作用,因此,抑制內皮細胞的增殖、遷移,以及誘導其凋亡可以防止血管生成,實現抑制腫瘤的發展[9-10]。因此本研究采用克隆形成實驗檢測了HUVEC細胞的增殖情況,發現相比Control組,miR-154-3p組細胞克隆形成率顯著降低,Smad7組細胞克隆形成率顯著升高。相比Smad7組,miR-154-3p+Smad7組細胞克隆形成率顯著降低。說明miR-154-3p高表達可以抑制HUVEC細胞的增殖,而Smad7高表達則可以促進HUVEC細胞的增殖,miR-154-3p+Smad7可以抑制HUVEC細胞的增殖,結合熒光霉素實驗發現miR-154-3p上存在Smad7的結合位點,可以得出miR-154-3p高表達可以靶向結合Smad7基因使得Smad7蛋白表達水平降低,從而實現抑制HUVEC細胞的增殖。張小平等[11]研究表明,Smad7的高表達可以促進腫瘤的發展,與本研究得出的結論一致。
抑制HUVEC細胞的增殖可以影響腫瘤的發展,HUVEC細胞的侵襲和遷移同樣會影響到腫瘤細胞的發展[12]。本研究為檢測HUVEC細胞的侵襲能力,采用Transwell小室實驗檢測了HUVEC細胞的侵襲能力,發現miR-154-3p高表達細胞的侵襲能力顯著降低,而Smad7高表達會使得HUVEC細胞的侵襲能力顯著增強,共轉組的HUVEC細胞的侵襲能力又有一定程度的減弱,結合前面研究,發現miR-154-3p上存在Smad7的結合位點,可以得出miR-154-3p可以靶向作用于Smad7 mRNA,干擾Smad7表達從而抑制HUVEC細胞的侵襲能力。為探究其機制,本文深入研究了與腫瘤細胞侵襲能力相關的蛋白表達情況。VEGF是一種血管內皮生長因子,可以促進新血管的生長[13]。本研究檢測發現下調Smad7的表達可以顯著抑制其表達,說明miR-154-3p靶向作用Smad7可以抑制血管內皮生長因子達到抑制其增長的效果。
腫瘤細胞的增殖與炎癥關系也較為密切,炎癥反應參與了大多數腫瘤的發展過程[14]。炎癥因子包含促炎癥因子和抑炎癥因子兩大類,促炎癥因子主要由TH1細胞分泌,包含TNF-α、IL-17、IL-23等[15];而抑炎癥因子則由主要由TH2細胞分泌,包含IL-10、IL-4、IL-13等[16]。本研究發現miR-154-3p高表達的相關抑炎癥因子表達升高,促炎癥因子表達降低,這也符合前面所得結論miR-154-3p高表達可以靶向作用Smad7的表達抑制腫瘤細胞的發展。楊曉宇等[17]研究表明:炎癥因子在腫瘤的發展中起著重要的作用,抑制炎性因子的分泌可以一定程度上抑制腫瘤的發展。
綜上所述,miR-154-3p過表達可以靶向結合Smad7,有效抑制HUVEC的增殖和運動能力。