王成,黃哲璟,王揚劍,余夢焙
骨性關節炎(OA)主要臨床表現為 緩慢發展的關節疼痛、僵硬、腫大伴活動受限,嚴重者導致關節功能障礙甚至殘疾,是老年人關節疼痛和致殘的首要原因[1]。絕經后女性,OA的發病率明顯偏高,雌激素水平下降可能是女性OA發病的重要風險因素[2]。目前西醫主要以抗骨質疏松藥聯合非甾體類抗炎藥、關節腔注射、功能鍛煉、理療等方式進行對癥治療。安石榴苷(Pun)的類雌激素樣作用在動物實驗研究方面已經得到證實[3],對雌激素缺乏的骨質疏松癥骨量丟失方面具有明顯抑制作用,同時可以促進成骨細胞分化,抑制破骨細胞活性[4]。本研究探討Pun對去卵巢雌鼠OA模型的保護作用,以期為臨床OA治療提供相關參考,現報道如下。
1.1 動物與試劑 5月齡健康雌性SD大鼠100只,購自上海斯萊克實驗動物有限責任公司。飼養1周后稱重,實驗大鼠分籠飼養,自由活動,自然光照,自由飲食。飼養溫度20~23℃,相對濕度為50%~55%。動物實驗經寧波市第一醫院實驗動物管理委員會批準通過。安 石 榴 苷(Pun,百 靈 威,北 京,P840270),17 -雌二醇(阿拉丁,北京,E110147),Trizol試劑(索萊寶,北京,10296028),cDNA第一鏈合成試劑盒和2×Probe qPCR Mix試劑盒(杭州新景生物技術有限公司),MMP-1抗體(ER63978)、-actin抗體(EM21002)、TIMP-1抗體(EM2001-03)及MMP-3抗體(ER1706-77)均購自杭州華安生物技術有限公司,HRP偶聯抗兔二抗(CST,美國,#7074),TIMP-1、MMP-3以及IL-1 ELISA檢測試劑盒(CAT.No:70-EK3 1 3 8-2 4/7 0-a b 3 5 6 6 7-0 5 0/7 0-EK301BHS-96)均購自杭州聯科生物科技有限公司,大鼠雌二醇(E2)(CAT.NO:ARG22693)/MMP-1 ELISA試劑盒(ARG21506)均購自Arigo公司,其他試劑包括乙醇和異丙醇等的分析等級購自中化試劑有限公司(上海,中國)。
1.2 動物模型構建 在麻醉下經背側第三腰椎橫突下方椎旁進入腹腔切除大鼠雙側卵巢,止血后逐層縫合。去卵巢一周后,每天進行陰道脫落細胞涂片和吉姆薩染色,連續5 d,以不出現動情期反應為去卵巢成功。在膝關節內側靠近髕骨處切開皮膚及關節囊,將髕骨推向外側,切斷交叉韌帶,切除內側半月板,滴入少量青霉素溶液,縫合關節囊及皮膚,術后5 d內給予青霉素溶液10萬U/d肌肉注射防感染。分籠飼養并驅趕4周加速OA發生,每周驅趕3次,每次>60 min。挑選造模成功大鼠60只,隨機分為6組,10只/組。分為偽手術組、模型組、陽性藥組(皮下注射17-雌二醇50 g/d)、Pun低劑量組(PunLo,10 mg/kg)、Pun中劑量組(PunMed,20 mg/kg)及Pun高劑量組(PunHi,40 mg/kg)。Pun組每天灌胃給予不同劑量Pun溶液,實驗持續16周。
1.3 大鼠足底加壓痛閾測量 將大鼠放置于金屬絲網墊上,用特制透明塑料籠罩住,待其適應30 min安靜后,連接好張力測量儀器,通過小動物生物信號采集處理系統(卡爾文,南京,Medlab型)進行信息收集,對測試探針進行張力調零后,垂直作用于大鼠足底部,在大鼠縮足時記錄電腦屏幕顯示的探針施加壓力的大小。造模前測量3次取平均值,造模之后分別在4、8、12及16周檢測大鼠足部承重壓力閾值,每只動物每次測試間隔時間不少于30 s。
1.4 骨密度檢測 各組大鼠于灌胃12周后,每組取4個股骨標本,在OPX-L型雙能X線骨密度測量儀(Lunar,USA,附動物骨密度測量軟件)下掃描股骨遠端,測量其骨密度值。每個標本測量2次,取平均值。
1.5 血清雌二醇(E2)濃度及子宮指數的測定 OA造模后的第4、8、12及16周分別取大鼠血樣,離心分離后取血清,雌二醇ELISA試劑盒測定大鼠血清E2水平。實驗結束時取子宮稱重,計算子宮指數:子宮濕重(mg)/體質量(g)。
1.6 關節滑液中炎癥因子檢測 造模16周之后,大鼠脫頸椎處死后,立即自膝關節注入0.9%氯化鈉注射液0.2 ml,混勻后抽取20 l關節液,使用磷酸鹽緩沖液將抽取關節液稀釋至1 ml,采用ELISA對稀釋后的關節液進行白介素(IL)-1、基質金屬蛋白酶(MMP)-1、MMP-3和金屬蛋白酶組織抑制劑(TIMP)-1蛋白定量分析,操作方法參見說明書。每個標本至少測定3次。
1.7 Western-Blot檢測 軟骨組織液氮研磨后加入RIPA細胞裂解液,提取組織蛋白,BCA法進行蛋白定量。蛋白樣本按40 g/泳道上樣,12%SDS-PAGE電泳后將蛋白轉移到PVDF膜上,用含有5%脫脂奶粉的封閉液室溫封閉1 h,加入一抗4℃孵育過夜。第2天用TBST洗滌后孵育二抗。TBST洗滌后加入ECL,蛋白成像儀獲取圖像。Image J計算條帶光密度,以-actin帶為內參,計算圖中各目的蛋白帶相對表達水平。
1.8 統計方法 采用SPSS 22.0統計軟件進行分析,計量資料以均數±標準差表示,多組間比較采用ANOVA單因素方差,組間比較采用t檢驗;相關性分析采用Pearson相關系數(r)進行評估。P<0.05為差異有統計學意義。
2.1 Pun對大鼠去卵巢OA模型痛閾、骨密度和子宮指數影響 正常雌性大鼠在5d的檢測中有出現動情期,陰道分泌物中有核細胞占大多數,并可見上皮角化細胞。在去勢模型組僅見大量白細胞,罕見有核細胞及上皮角化細胞。見封三彩圖2。

圖2 大鼠去卵巢后陰道分泌物染色及OA造模后足底痛閾測試注:A:大鼠動情期間應道分泌物鏡下觀察(HE,×200);B:大鼠OA造模后足底痛閾檢測波形圖
使用高劑量Pun后,OA大鼠足底承重閾值的恢復情況能達到偽手術組和陽性藥組的水平,模型大鼠足底承重閾值與Pun劑量正相關(r=0.9012,P<0.05);模型組BMD顯著低于偽手術組,給予Pun以后可改善BMD,并與劑量呈正相關(r=0.7692,P<0.05),高劑量組與陽性藥物組比差異無統計學意義(P>0.05);模型組子宮指數明顯低于偽手術組(P<0.05),給予Pun后可顯著改善子宮指數(P<0.05),并與劑量呈正相關(r=0.9009,P<0.05)。見表1。

表1 Pun對OA大鼠痛閾、BMD和子宮指數的影響
2.2 Pun對去卵巢OA大鼠血清E2水平的影響 Pun顯著提高E2濃度,并呈現劑量依賴性,見表2。

表2 各組雌二醇濃度 pg/ml
2.3 Pun對關節滑液中炎癥因子影響模型組中IL-1分泌顯著升高,PunHi組可顯著減少炎癥介質IL-1的表達(P<0.01)。模型組中MMP-1、TIMP-1和MMP-3/TIMP-1的比值增加,PunHi組中比值顯著降低(P<0.05),接近陽性藥組。見表3。

表3 炎性因子檢測結果 pg/ml
模型組MMP-1、MMP-3的蛋白表達顯著增加,而TIMP-1的表達顯著下降。Pun組MMP-1、MMP-3表達均高于模型組(均P<0.05)。見封三彩圖3。

圖3 Western blot檢測大鼠MMP-1、MMP-3和TIMP-1表達
OA是老年人常見的關節疾病,尚缺乏有效的治療方法,尤其是絕經后婦女,雌激素對軟骨有明顯的保護作用。大鼠雙側卵巢切除可模擬人絕經后的生理變化[5]。本研究在通過手術切除大鼠雙側卵巢基礎上,切斷關節交叉韌帶,切除半月板,成功建立絕經后OA大鼠模型。結果顯示大鼠造模后血清E2降低、Il-1上調。同時模型組大鼠在卵巢切除后4周即出現OA癥狀,表現為血清E2、子宮指數和骨密度下降,下肢關節痛閾下降等變化,與文獻報道相符[6]。
Pun具有明確的抵抗炎癥和氧化損傷效果,被越來越多地應用到抗衰老和心血管疾病、糖尿病和腫瘤的預防中[7]。研究顯示,Pun具有類雌激素作用,在動物實驗上被證實[8]。本研究結果發現Pun在與雌激素密切相關的OA關節軟骨受損中發揮保護作用,且以劑量依賴的方式逐漸增加大鼠E2水平,并顯著增加子宮指數和骨密度,高劑量組可達到與陽性藥物相近效果。
在OA發病機制研究中,IL-1不僅可上調IL-6和其他促炎因子的表達,而且是調節軟骨分解相關基因的關鍵細胞因子,IL-1上調可誘導破壞性基質金屬蛋白酶(MMPs)表達加重OA進展[9]。本研究發現模型組大鼠血清E2含量降低而關節腔中IL-1分泌顯著增加,Pun抑制IL-1的表達,可能是因為Pun給藥后誘導血清E2升高繼而降低炎癥介質IL-1的表達[10]。在正常軟骨中,MMPs和TIMP-1之間是平衡的,并在維持關節軟骨的完整性方面起著重要的作用,MMPs/TIMP-1比值變化是反應OA進展的重要指標[11]。研究表明,不受控制的調節和加劇的MMPs表達參與了OA的發病[12]。本研究中模型組MMP-1、MMP-3的蛋白表達顯著增加,并與OA嚴重程度呈正相關。相反,TIMP-1的表達則下調,最終使得模型組中MMP-1/TMP-1和MMP-3/TIMP-1的比值顯著增加。Pun組MMP-1、MMP-3相對表達水平逐漸下調,并呈劑量依賴性。同時,Pun組TIMP-1蛋白水平略有升高。值得注意的是,高劑量Pun可以明顯地增加這兩個比值,這種影響類似于陽性藥組。這表明Pun可以減少IL-1分泌,進而降低MMP-1/TIMP-1和MMP-3/TIMP-1在OA中的比值。
綜上所述,本研究成功建立去卵巢OA大鼠模型,并證實Pun通過提高痛閾和骨密度、降低炎性因子水平及改變骨代謝平衡,明顯緩解去卵巢大鼠OA癥狀,在絕經后OA治療上具有一定前景。