青牛膽不定芽誘導及生根培養研究

覃芳妮 盧娟 李莉莉 吳俊 孫熹

摘 要：以青牛膽頂芽和腋芽為外植體，分別采用1/2MS、MS、1/2MS（改良）、MS（改良）、N6、ER、SH培養基為基礎培養基，分析添加不同植物生長調節劑及配比對頂芽和腋芽誘導、增殖及生根的影響。結果表明：MS（改良）+6-BA 0.5mg/L+NAA 0.25mg/L能誘導青牛膽外植體生長;最佳增殖培養基為MS（改良）+6-BA 0.5mg/L+NAA 0.25mg/L+KT 0.25mg/L，其增殖系數達到6;MS（改良）+NAA 0.5mg/L+2，4-D 0.5mg/L+IBA 0.2mg/L能誘導青牛膽叢生芽生根，其生根率達93.3%。

關鍵詞：青牛膽;頂芽;腋芽;誘導;生根

中圖分類號 S567.239文獻標識碼 A文章編號 1007-7731（2021）10-0021-03

Adventitious Bud Induction and Rooting Culture of Tinosporasagittata（Oliv.） Gagnep.

QIN Fangni et al.

（Yulin Foreserch Research Institute，Yulin 537501，China）

Abstract：The shoot segments of Tinosporasagittata（Oliv.） Gagnep. were used as explants materials， and 1/2MS、MS、1/2MS（improve）、MS（improve）、N6、ER、SH were used as the basic medium to study the effects of different exogenous hormones and their ratios on axillary bud initiation，proliferation and rooting of tissue cultured seedings.The results show that suitable medificient for axillary bud initiation is MS（improve）+6-BA 0.5mg/L+NAA 0.25mg/L; The optimal proliferation medium for axillay buds is MS（improve）+6-BA 0.5mg/L+NAA 0.25mg/L+KT 0.25mg/L，and the proliferation coefficient reaches 6; The optimum rooting formula selscted in this study is MS（improve）+NAA 0.5mg/L+2， 4-D 0.5mg/L+IBA 0.2mg/L， the rooting rate is 93.3%.

Key words： Tinosporasagittata（Oliv.） Gagnep.; Terminalbud; Axillarybud; Induce; Rooting

青牛膽（Tinosporasagittata（Oliv.） Gagnep.）為防己科青牛膽屬常綠纏繞藤本植物[1]。全球范圍內已發現的青牛膽屬植物有30多種，我國境內發現的有11種，其中6種具有藥用價值[2]。青牛膽的藥用價值極高，其塊根可以治療咽喉炎、扁桃體炎、上呼吸道感染、氣管炎、口腔潰瘍等疾病[3-5];其水、醇提取物能明顯阻止因腎上腺素誘導的血糖過高[6]。據報道，青牛膽在抗幽門螺桿菌[7]、抑菌[8]、降血糖[9]、抗腫瘤[10]、抗輻射[11]及改善心腦血管疾病[12]等方面也具有明顯的改善作用。由于青牛膽的藥用價值極高，近年來野生青牛膽被過度采挖，逐漸成為瀕危物種。為滿足市場需求，有必要研究青牛膽的無性繁殖及人工栽培技術。為此，筆者對青牛膽快繁技術進行了研究，以期為實現規模化生產提供技術支撐，為建立高效、優質的青牛膽外植體組織培養系統提供參考。

1 材料與方法

1.1 外植體選取 在廣西玉林市陸川縣大橋鎮陸透村，選擇生長旺盛、枝條無病蟲害的優株，剪取約30cm長并帶有腋芽的枝條，放入干凈塑料袋密封好，置于冰盒中帶回實驗室。選用頂芽和未老化的腋芽枝條作為外植體。用自來水沖洗表面塵土，然后置于飽和洗衣粉溶液中7min，之后流動自來水沖洗1h，置于超凈工作臺備用。

1.2 無菌化處理 用75%酒精消毒0.5、1、2min，然后用無菌水清洗2次，再置于0.1% HgCl2溶液中10、20min，最后用無菌水清洗5次。3個正交試驗處理青牛膽外植體，把消毒過的外植體接種到誘導培養基中。該培養基以1/2MS、MS、改良1/2MS、改良MS、N6、ER、SH培養基為基礎培養基，附加4g/L高強度瓊脂、30g/L蔗糖濃度，用1mol HCl和1mol NaOH把培養基pH調至5.8～6.2，隨后把培養基分裝到350mL的組培專用廣口瓶中，121℃滅菌25min。接種后培養條件為溫度（28±2）℃，暗培養7d，然后置于光照強度為1200～1700Lx，光照時間超過10h/d，培養15d。每天觀察記錄不同消毒方法處理的外植體污染率及外植體生長情況。

1.3 誘導培養基篩選 把消毒過的頂芽、腋芽接種于誘導培養基中，頂芽、腋芽誘導培養基設計的因素及水平為：6-BA 0.5mg/L，NAA 0.25mg/L，以1/2MS、MS、1/2MS（改良）、MS（改良）、N6、SH為基本培養基，添加4g/L高強度瓊脂、30g/L蔗糖濃度，每種處理20瓶，每瓶接種1～2個芽，每7d觀察記錄其誘導情況。

根誘導率（%）=誘導出根的芽數/接入總芽數×100

1.4 添加配比不同激素 將相同條件下得到的大小較一致的叢生芽，在無菌環境下剪取1～2cm轉接到增殖培養基中，增殖培養基以1/2MS（改良）、MS（改良）為基本培養基，添加4g/L高強度瓊脂、30g/L蔗糖濃度，分別添加6-BA 0.5mg/L、NAA 0.25mg/L、KT 0.25mg/L、NAA 0.25mg/L+KT 0.25mg/L、NAA 0.5mg/L+KT 0.25mg/L、NAA 0.25mg/L+KT 0.5mg/L，共設計8個處理組合，接種10瓶，每瓶1～2個叢生芽，每7d觀察記錄其生長情況并統計其增殖系數。

[增殖系數=總芽數/接入芽數]

1.5 生根培養 把青牛膽叢生植株（有綠色葉子，長度為3～4cm）接種到生根培養基中。生根培養基以MS（改良）為基本培養基，加入4g/L高強度瓊脂、30g/L蔗糖濃度，分別加入植物生長調節劑NAA 0.5mg/L、IAA 0.2mg/L、IBA 0.2mg/L、2，4-D（0.2mg/L、0.5mg/L），共設計8個處理，每個處理30瓶，每7d記錄其生長及生根情況。

1.6 培養條件 除另外說明外，無性繁殖試驗所用到的1/2MS、MS、1/2MS（改良）、MS（改良）、N6、ER、SH培養基為基礎培養基，附加4g/L高強度瓊脂、30g/L蔗糖濃度，用1mol HCl和1mol NaOH把培養基pH調至5.8～6.2，隨后把培養基分裝到350mL的組培專用廣口瓶中，121℃滅菌25min。接種后培養條件為溫度（28±2）℃，暗培養7d，然后置于光照強度為1200～1700Lx，光照時間超過10h/d，培養周期60d。

2 結果與分析

2.1 不同消毒處理對青牛膽外植體污染的影響 由表1可知，不同消毒處理對青牛膽外植體的無菌化具有一定的影響。在酒精和氯化汞處理時間不長的條件下，青牛膽的外植體污染率極高，甚至達到96%;延長酒精和氯化汞消毒處理時間對青牛膽外植體無菌化具有顯著作用，但消毒時間較短或過長的情況下，青牛膽外植體污染率均有所增加。由此可見，對青牛膽外植體無菌化最佳的消毒方法為：用75%酒精消毒2min，然后用無菌水清洗2次，之后放到0.1%氯化汞的玻璃瓶中消毒20min，期間不斷振動，以便外植體滅菌徹底，最后用無菌水清洗5次。

2.2 不同培養基對青牛膽外植體誘導培養的影響 由表2可知，1/2MS培養基、MS培養基、改良1/2MS培養基、改良MS培養基對青牛膽無菌化的外植體都具有誘導作用，但改良MS培養基中的生長情況最好，其嫩芽生長明顯，葉片翠綠，植株增高。

2.3 不同激素配比對青牛膽叢生芽增殖的影響 由表3可知，青牛膽叢生芽在處理F的增殖效果最好，即在改良MS培養基中加入6-BA 0.5mg/L和NAA 0.25mg/L+KT 0.25mg/L，叢生芽增殖系數增大，莖部增粗，植株長勢良好，生命力旺盛，基部平均有5～6個分枝。由此可見，6-BA和NAA不同的濃度組合與KT不同的濃度組合作為植物生長激素，對青牛膽叢生芽生長、增殖均能產生不同的影響，其中增殖最高的培養基為MS（改良）+6-BA 0.5mg/L+NAA 0.25mg/L+KT 0.25mg/L，誘導出的植株生長最快，分枝最多，植株最高。

2.4 不同生長激素配比對青牛膽生根的影響 待叢生芽長出完整葉子后，接種到含有不同生長激素的生根培養基中，20d后統計根誘導率和每個叢生芽的根條數。由表4和圖1可知，在NAA和2，4-D濃度相同的情況下，IBA較IAA對青牛膽生根效果更好，其誘導率和誘導出的根數均較IAA高。由此可見，最適合青牛膽生根誘導的培養基為MS（改良）+NAA 0.5mg/L+IBA 0.2mg/L+2，4-D 0.5mg/L。

3 結論與討論

植物細胞在理論上都存在全能性，任何植物的器官或者組織都能作為組織培養的外植體[13]。青牛膽的頂芽和腋芽可以通過組織培養的方式誘導叢生芽增殖及生根，長成一棵完整的苗。這與葛曉改[14]等以大黃藤（與青牛膽同為防己科植物）莖尖作為外植體，陳加利等[15]以嫩芽組織培養出寬筋藤（與青牛膽同為防己科植物）誘導分化成新植株的結果保持一致。

外植體表面滅菌一般采用酒精、次氯酸鈉、氯化汞及高錳酸鉀等通過不同組合進行。氯化汞處理時間過短，殺菌不徹底，易導致外植體污染嚴重;時間過長則會對組織細胞起到殺傷作用[16]。本研究結果表明，青牛膽外植體最佳的消毒方法是用飽和洗衣粉水浸泡7min，流動自來水沖洗1h，然后經過75%酒精消毒5min，過2次無菌水，置于0.1% HgCl2 溶液中20min，最后用無菌水清洗5次。該方法污染率低，并有利于青牛膽外植體轉接。

MS（改良）+6-BA 0.5mg/L+NAA 0.25mg/L能誘導青牛膽頂芽和腋芽外植體生長。最佳增殖培養基為MS（改良）+6-BA 0.5mg/L+NAA 0.25mg/L+KT 0.25mg/L，其增殖系數達到6。說明KT對青牛膽的增殖具有明顯作用，在沒有KT的情況下青牛膽增殖系數低，隨著KT濃度的增加其增殖系數也有所提高。MS（改良）+NAA 0.5mg/L+2，4-D 0.5mg/L+IBA 0.2mg/L能誘導青牛膽叢生芽生根，其生根率達93.3%。說明IBA較IAA更能促進青牛膽不定芽生根。在NAA和2，4-D濃度相同的情況下，IBA較IAA對青牛膽生根效果更好，其誘導率和誘導出的根數均較IAA高。

參考文獻

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（責編：徐世紅）