不同維生素C源對吉富羅非魚生長性能、抗氧化能力和免疫力的影響

龔福來 林 雪 王紅權*

(1.湖南農業大學動物科學技術學院，長沙 2410128；2.廣州天科生物科技有限公司，廣州 2510896)

隨著我國水產養殖業的迅速發展，水產養殖業不斷追求高額經濟效益，不斷擴大養殖規模，發展高密度集約化養殖，致使魚類常處于不同應激狀態下，導致魚體抵抗力下降，病害頻發，給水產養殖業造成較大的經濟損失。維生素因其廣泛的生理和免疫作用，能緩解魚類的應激狀態，應用于魚類以抵抗多種感染病的侵襲[1]。維生素C，又稱抗壞血酸，是一種水溶性維生素，具有還原作用，是天然的抗氧化劑和免疫增強劑，通常被添加到飼料和水體中，以提高水產動物機體抗氧化酶的活性，緩解其氧化應激反應[2]。維生素C對水產動物有促生長、增強免疫、抗病力的功能[3]。維生素C是維持魚類正常生理功能必需的微量營養素，除鱘形目魚類和七鰓鰻能合成少量維生素C外，大多數魚類缺乏L-古洛糖酸內酯氧化酶(L-gulonolactone oxidase，GLO)而不具備這種能力，必須由外源補充[4]。

羅非魚(Oreochromisniloticus)又名非洲鯽魚，屬鱸形目(Perciformes)，麗鯛科(Cichlidae)，羅非魚屬，原產地非洲，主要集中在熱帶和亞熱帶地區養殖[5]。羅非魚是全球養殖最廣泛的淡水魚類之一，具有適應能力強、生長速度快、養殖周期短、出肉率高、無肌間刺、蛋白質豐富和肉質鮮美等優點[6]。目前我國主要飼養的羅非魚品種為吉富羅非魚(GIFT)[7]。羅非魚被引進我國后發展迅速，現我國已經成為世界上最大的羅非魚養殖國和出口國。羅非魚是我國的出口導向性的水產品之一[8]，2019年我國羅非魚總產量達到164.16萬t，苗種產量達到215億尾[9]。Falcon等[10]研究發現，飼料中添加600 mg/kg維生素C能夠有效緩解低溫對尼羅羅非魚造成的應激。El-Sayed等[11]研究發現，飼料中添加500 mg/kg維生素C能夠有效防止尼羅羅非魚因鎘導致的肝臟中毒。宋學宏等[12]對異育銀鯽的試驗結果表明，飼料中添加一定量的維生素C能顯著提高魚體的生長速度和增重率(weight gain rate，WGR)。冷向軍等[13]在青魚魚種飼料中添加不同劑型維生素C的研究結果表明，隨飼料中維生素C含量的增加，青魚魚種的增重率、存活率(survival rate，SR)均顯著上升。王吉橋等[14]研究發現，在飼料中當添加一定量的維生素C多聚磷酸酯能夠提高黃顙魚的抗病力。目前，市面上大都是以維生素C磷酸酯作為飼料添加劑來滿足魚類對維生素C的需求，研究主要集中在維生素C磷酸酯、包膜維生素C和普通維生素C對魚類生長和免疫等方面的影響。鋅螯合維生素C主要是由維生素C以鋅為配位體螯合而成，與維生素C磷酸酯相比結構上更穩定，關于鋅螯合維生素C對魚類生長、抗氧化功能等的影響尚處在研究探索階段。因此，本試驗以吉富羅非魚為研究對象，比較在飼料中添加3種不同來源的維生素C(普通維生素C、維生素C磷酸酯和鋅螯合維生素C)對吉富羅非魚生長、血清抗氧化與免疫指標以及肝臟抗氧化指標的影響，以期為維生素C在水產飼料中的高效應用和吉富羅非魚的健康養殖提供理論依據和實踐指導。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

鋅螯合維生素C：由維生素C以鋅為配位體螯合而成，維生素C含量為35%，實際添加量為285.71 g/kg鋅螯合維生素C；維生素C磷酸酯：飼料級，維生素C含量為35%，實際添加量為285.71 g/kg 維生素C磷酸酯；普通維生素C：飼料級，維生素C含量為99%，實際添加量為101.01 g/kg普通維生素C。

1.2 試驗飼料

以豆粕、菜籽粕、棉籽粕等為主要原料，根據水產行業標準《羅非魚配合飼料》(SC/T 1025—2004)配制基礎飼料，該基礎飼料不額外添加維生素C，其組成及營養水平見表1。在基礎飼料中分別添加100 mg/kg(以維生素C計)的普通維生素C、維生素C磷酸酯和鋅螯合維生素C配制3種試驗飼料，普通維生素C、維生素C磷酸酯和鋅螯合維生素C的實際添加量分別為101.01、285.71、285.71 g/kg。本試驗中維生素C添加量是參照羅非魚飼料維生素C推薦添加量150 mg/kg的基礎上，根據試驗魚規格并結合本試驗所用維生素C源產品特性等綜合因素確定。先將飼料原料分別進行粉碎，過60目篩，再用V型混合機攪拌均勻，通過F-75型雙螺桿擠條機制成直徑為2 mm的顆粒飼料，擠壓腔內物料溫度45 ℃、擠壓時間1 min。然后使用55 ℃的溫度對顆粒飼料進行烘干處理，待其冷卻至室溫之后放入-4 ℃冰箱中保存備用。

表1 基礎飼料組成及營養水平(風干基礎)

續表1項目 Items含量 Content維生素預混料 Vitamin premix1)0.50礦物質預混料 Mineral premix2)1.00氯化膽堿 Choline chloride0.20合計 Total100.00營養水平 Nutrient levels3)水分 Moisture6.90粗蛋白質 CP31.60粗脂肪 EE6.11粗灰分 Ash7.15總磷 TP1.21

1.3 試驗魚與飼養管理

在正式進行試驗之前，調試養殖循環系統設備是否正常，將養殖桶消毒和清洗干凈后注水，從廣東羅非魚良種場購買一定數量的吉富羅非魚魚苗，魚苗購買回來后放在循環系統內容積為400 L的養殖桶(上口外徑：955 mm；底部外徑：810 mm；高度：740 mm)中，為了使魚苗能夠盡快適應環境，減少魚苗應激帶來的不利影響，魚苗在養殖桶中暫養2周。2019年6月5日對其進行進一步的挑選，選出體格相近、活潑健康的魚苗500尾[初始平均體重為(21.18±0.24) g]進行分組，本試驗設1個對照組(飼喂基礎飼料)，3個維生素C添加組，即普通維生素C組、維生素C磷酸酯組和鋅螯合維生素C組，分別飼喂在基礎飼料中添加100 mg/kg(以維生素C計)相應維生素C源的試驗飼料。每組設5個重復，每個重復放養25尾魚。分組后暫養1周，2019年6月12日正式開始試驗，2019年8月13日禁食1 d后，8月14日開始取樣，具體取樣方法見樣本采集。

試驗期間每天08：00和17：00各投喂1次，日投喂量為魚體重的4%～10%[15]，上午投喂40%，下午投喂60%，具體投喂量按試驗魚實際攝食情況而定，每天記錄投喂量。每日投喂完后巡視試驗魚的采食情況，發現死魚及時撈出并稱重記錄，觀察魚群的活動情況。通過增氧泵進行供氧，每隔3 d使用溶氧試劑盒檢測水體中溶氧含量。在試驗期間每2 d更換養殖用水(1/3體積)，保證水質干凈清潔，定期進行水質檢測，保持水體pH 7.0～8.5，氨氮含量<0.3 mg/L，亞硝酸鹽含量<0.1 mg/L，溶氧含量>5.0 mg/L。試驗養殖周期為63 d，試驗期間水溫為27～32 ℃。

1.4 樣本采集

養殖試驗結束后，試驗魚禁食24 h，以桶為單位稱重。從養殖桶中隨機選取6尾魚，稱量每尾魚的體重，隨后測量體長和體高，并嚴格準確地記錄生長數據；然后使用標準為1 mL的注射器從魚(無麻醉處理)的尾靜脈采血，靜置之后3 500 r/min離心15 min，取上層血清分裝后放入-80 ℃冰箱待用，用于血清抗氧化與免疫指標的測定。采血后的魚置于冰盤上解剖，剝離內臟團稱重，再剝離出肝臟稱重，隨后把肝臟裝入編號后的小號封口袋中，放入-80 ℃冰箱待用，用于肝臟抗氧化指標的測定。

1.5 指標測定

1.5.1 常規營養成分

飼料中水分、粗脂肪、粗蛋白質、粗灰分和總磷含量的測定分別采用105 ℃恒溫干燥法(GB/T 5009.3—2003)、索氏抽提法(GB/T 5009.6—2003)、凱氏定氮法(GB/T 5009.5—2003)、550 ℃馬福爐灰化法(GB/T 5009.4—2003)和分光光度法(GB/T 6437—2018)。

1.5.2 生長性能

生長性能指標使用以下公式進行計算：

式中：N0表示初始魚尾數；Nt表示終末魚尾數；Wf表示終末平均體重(g)；Wi表示初始平均體重(g)；t表示飼養的總天數(d)；Wr表示飼料消耗量(g)；Wz表示體重增加量(g)；Wg表示肝臟重(g)；Wq表示全魚重(g)；Wzz表示內臟團重(g)；Lb表示平均終末體長(cm)。

1.5.3 抗氧化與免疫指標

總抗氧化能力(total antioxidant capacity，T-AOC)、丙二醛(malondialdehyde，MDA)與總谷胱甘肽(total glutathione，T-GSH)含量以及總超氧化物歧化酶(total superoxide dismutase，T-SOD)、堿性磷酸酶(alkaline phosphatase，AKP)和溶菌酶(lysozyme，LSZ)活性均采用南京建成生物工程研究所生產的試劑盒，按說明書測定。皮質醇(cortisol，COR)、免疫球蛋白M(immunoglobulin M，IgM)、補體3(complement 3，C3)、補體4(complement 4，C4)含量以及6-磷酸葡萄糖酸脫氫酶(6-phosphogluconate dehydrogenase，6PGDH)和異檸檬酸脫氫酶(isocitrate dehydrogenase，ICDH)活性采用上海酶鏈生物有限公司生產的試劑盒，按說明書測定。檢測儀器為Infinite 200多功能酶標儀。

1.6 數據統計與分析

試驗數據采用Excel 2010整理后，用SPSS 25.0軟件進行方差齊性檢驗和單因素方差分析(one-way ANOVA)，P<0.05為差異顯著，P>0.05為差異不顯著。若組間有顯著差異，再用Duncan氏法進行多重比較檢驗。結果均以平均值±標準誤表示。

2 結 果

2.1 不同維生素C源對羅非魚生長性能的影響

由表2可知，以鋅螯合維生素C組的終末平均體重和增重率最高，增重率達到697.09%，與對照組相比有顯著差異(P<0.05)；維生素C磷酸酯組的終末平均體重顯著高于對照組(P<0.05)；增重率從高到低順序為：鋅螯合維生素C組>維生素C磷酸酯組>普通維生素C組>對照組。鋅螯合維生素C組的特定生長率顯著高于對照組和普通維生素C組(P<0.05)。各組的存活率都在90%以上，組間差異不顯著(P>0.05)。相比對照組和普通維生素C組，鋅螯合維生素C組的飼料系數顯著降低(P<0.05)，維生素C磷酸酯組則與其他各組均差異不顯著(P>0.05)。各組的總采食量差異不顯著(P>0.05)。鋅螯合維生素C組的肝體指數最低，顯著低于維生素C磷酸酯組(P<0.05)。各組間臟體指數和肥滿度差異不顯著(P>0.05)。

表2 不同維生素C源對羅非魚生長性能的影響

2.2 不同維生素C源對吉富羅非魚血清抗氧化與免疫指標的影響

由表3可知，維生素C磷酸酯組和鋅螯合維生素C組血清T-GSH含量顯著高于對照組和普通維生素C組(P<0.05)。鋅螯合維生素C組血清T-AOC顯著高于對照組(P<0.05)，與普通維生素C組和維生素C磷酸酯組差異不顯著(P>0.05)。與對照組相比，維生素C磷酸酯組血清MDA含量顯著降低(P<0.05)，普通維生素C組和維生素C磷酸酯組雖有所降低，但差異不顯著(P>0.05)。各組之間血清T-SOD活性均差異不顯著(P>0.05)。

表3 不同維生素C源對吉富羅非魚血清抗氧化指標的影響

由表4可知，各組間血清IgM含量差異不顯著(P>0.05)。鋅螯合維生素C組血清C3、C4含量顯著低于維生素C磷酸酯組(P<0.05)，與對照組和普通維生素C組差異不顯著(P>0.05)。對照組血清LSZ活性顯著低于普通維生素C組、維生素C磷酸酯組和鋅螯合維生素C組(P<0.05)。

表4 不同維生素C源對吉富羅非魚血清免疫指標的影響

維生素C磷酸酯組血清AKP活性顯著高于對照組、普通維生素C組和鋅螯合維生素C組(P<0.05)。維生素C磷酸酯組和鋅螯合維生素C組血清COR含量顯著低于對照組(P<0.05)，與普通維生素C組差異不顯著(P>0.05)。

2.3 不同維生素C源對吉富羅非魚肝臟抗氧化指標的影響

由表5可知，各組間肝臟T-AOC以及T-SOD、AKP和6PGDH活性與T-GSH含量差異不顯著(P>0.05)。維生素C磷酸酯組肝臟MDA含量顯著低于對照組、普通維生素C組和鋅螯合維生素C組(P<0.05)。鋅螯合維生素C組肝臟ICDH活性顯著高于對照組、普通維生素C組和維生素C磷酸酯組(P<0.05)。

表5 不同維生素C源對吉富羅非魚肝臟抗氧化指標的影響

3 討 論

3.1 不同維生素C源對吉富羅非魚生長性能的影響

維生素C對魚類的生長有著重要的作用，缺乏維生素C會使魚類出現生長緩慢、骨骼畸形[13]、表皮出血等癥狀[16]。本試驗中，對照組吉富羅非魚并未出現明顯維生素C缺乏癥狀，可能是由于基礎飼料中含有一定量的維生素C，短期能夠維持魚類基本生理需求，但會影響其生長速度。這與吳凡等[17]在羅非魚試驗中未添加維生素C對照組未發現明顯維生素C缺乏癥狀的研究結果一致。本試驗結果表明，普通維生素C和維生素C磷酸酯這2種維生素C源對吉富羅非魚的生長性能的影響不顯著，但鋅螯合維生素C有顯著的促生長效果，優于普通維生素C和維生素C磷酸酯。在本試驗條件下，綜合各項生長性能指標，鋅螯合維生素C是吉富羅非魚飼料的最佳維生素C源。這可能是由于鋅螯合維生素C比普通維生素C和維生素C磷酸酯具有更穩定的特性或者更好的吸收利用途徑，但其具體原因尚有待深入研究。

維生素C是維持魚類正常生長發育必需的營養物質，飼料中添加適量的維生素C能夠促進魚類生長。研究表明，維生素C能促進吉富羅非魚[17]、翹嘴鲌(Culteralburnus)[18]、黃顙魚(Pelteobagrusfulvidraco)[4]的生長。Wilson等[19]的研究結果表明，飼養斑點叉尾16周后，飼料中添加維生素C磷酸酯和包膜維生素C組的增重率分別為1 235%和916%。石文雷等[20]研究發現，在飼料中添加3種不同來源維生素C的試驗組草魚均比對照組生長快、增重率高、飼料系數低，結果表明以包膜維生素C促生長效果最優，其次是維生素C磷酸酯，普通維生素C最差。宋進美等[21]研究了不同劑型維生素C對奧尼羅非魚的飼喂效果，結果表明各維生素C組的增重率和飼料轉化率均優于對照組。胡斌等[22]的研究結果表明，飼料中添加維生素C磷酸酯后草魚的飼料系數顯著下降。本試驗結果表明，鋅螯合維生素C組的飼料系數顯著低于對照組和普通維生素C組，與維生素C磷酸酯組無顯著差異。這一方面可能是由于魚體對不同形式的維生素C利用效率不同；另一方面可能與鋅螯合維生素C經螯合作用后增強了其穩定性，使得維生素C的吸收利用率提高有關。

飼料中添加適量的維生素C能夠降低異鰓鲇(Heterobranchuslongifilis)的肥滿度和肝體指數[23]，本試驗研究結果與之相似，鋅螯合維生素C組的肝體指數顯著低于維生素C磷酸酯組。但是，本試驗結果中的臟體指數和肥滿度各組間均無顯著差異，與萬金娟[24]的研究結果相似，即在飼料中添加一定量的包膜維生素C對團頭魴幼魚的肥滿度無顯著影響。另外，也有研究表明，在飼料中添加維生素C磷酸酯對吉富羅非魚[17]和草魚[22]的肥滿度、臟體指數和肝體指數均無顯著影響。這些差異可能與維生素C來源不同等因素有關。

3.2 不同維生素C源對吉富羅非魚血清抗氧化與免疫指標的影響

血液成分的變化被普遍用來評價魚類的健康狀況、營養狀況和對環境的適應狀況，是重要的生理、病理和毒理學指標[3]。在應激環境中，機體會產生大量的自由基，它能夠對生物膜含有的多不飽和脂肪酸產生攻擊作用，進而產生脂質過氧化反應。維生素C是一種重要的抗氧化劑，能夠中和體內所產生的自由基，緩解氧化損傷[17]。MDA是動物機體脂質過氧化的產物，MDA含量越高，說明細胞膜脂質過氧化程度則越高，細胞膜的損傷就越嚴重[25-26]。血清MDA含量上升，說明動物機體的抗氧化能力降低，因此，血清MDA含量通常被作為機體抗氧化能力評價指標之一[15]。池磊[27]在幼建鯉上的研究表明，飼料中添加維生素C磷酸酯能夠極顯著降低血清MDA含量。本試驗結果也表明，飼料中添加維生素C磷酸酯顯著降低了吉富羅非魚血清MDA含量，說明維生素C磷酸酯組吉富羅非魚的細胞膜損傷程度較輕。T-AOC是反映機體酶促及非酶促體系總抗氧化水平高低的主要指標，T-AOC越高則表示機體清除氧自由基的能力越強，反之則越弱，其提高表明魚體抗氧化系統功能得到改善，機體的抗氧化能力提高[28-29]。本試驗中，鋅螯合維生素C組吉富羅非魚血清T-AOC較對照組提高，表明鋅螯合維生素C增強吉富羅非魚抗氧化能力的作用突出，在一定程度能夠提高其對疾病的抵抗力。谷胱甘肽(glutathione，GSH)在維持機體氧化狀態的平衡中起著重要的作用，是組織細胞抵抗活性氧損害的主要低分子物質，能敏感并綜合反映組織細胞抗氧化應激能力及受氧化損傷的程度[27]。本試驗中，維生素C磷酸酯組和鋅螯合維生素C組血清T-GSH含量顯著高于對照組和普通維生素C組，進一步表明飼料中添加維生素C磷酸酯和鋅螯合維生素C更有利于機體抗氧化能力的增強。

魚類受到外部刺激后會產生COR，這種物質主要從丘腦下部經過垂體和腎間組織軸進行分泌，是一種十分關鍵的應激激素，通常來說，魚類應激的靈敏信號高低同魚類血液COR含量的高低關系密切[30]。在高度集約化養殖過程中不可避免地使魚受到輕度的應激，COR含量長期的升高則會抑制機體免疫功能，而維生素C能有效緩解魚類的應激狀態，從而有提高魚體的抗病力。明建華等[3]研究發現，高劑量維生素C磷酸酯能顯著降低團頭魴血清COR含量。本試驗中，維生素C磷酸酯組和鋅螯合維生素C組血清COR含量較對照組顯著降低，說明維生素C磷酸酯和鋅螯合維生素C能夠增強吉富羅非魚緩解應激的能力，有助于提高魚體的抗病力。

AKP是動物機體重要的功能調節酶，與動物機體的生長密切相關[31]。AKP廣泛存在于動物體內，催化水解磷酸單酯，直接參與磷酸基團的轉移，是動物體內重要的解毒體系[32]。血清AKP活性受生長階段、攝食狀況、環境等因素影響而發生變化[33]。一般認為，魚體內的AKP參與了魚類腸上皮細胞的吸收與轉運，協助腸上皮細胞吸收葡萄糖、脂類、鈣和無機磷[34]。張道波等[35]在牙鲆飼料中以維生素C多聚磷酸酯形式添加100～900 mg/kg維生素C，結果顯示血清AKP活性隨著飼料中維生素C添加量的增加而升高，說明高劑量維生素C能顯著提高魚體血清AKP活性，有利于其他營養物質的吸收。在本試驗中，維生素C磷酸酯組血清AKP活性顯著高于對照組、普通維生素C組和鋅螯合維生素C組，表明維生素C磷酸酯能顯著提高血清AKP活性，可能有利于細胞代謝和維生素C的利用。

IgM是硬骨魚類主要的免疫球蛋白之一，魚體內含有IgM含量越高，則魚體免疫力越強，反之則越弱，二者呈現出正相關的關系[36]。魚類的非特異性免疫中重要的組成部分之一是魚類的補體系統[37]。其中，在補體途徑中C4起到激活的作用，而C3不僅具有激活作用，還具備了的經典途徑替代作用。C3是血清中含量最高的補體成分，可抵抗病原菌的感染、介導免疫和炎癥反應[38]。宋學宏等[12]研究表明，異育銀鯽的血清補體含量隨維生素C磷酸酯含量的增加而提高。萬金娟[24]在團頭魴上的研究表明，飼料中添加包膜維生素C能夠顯著提高血清C3和C4含量，同時表明不同維生素C添加劑量能夠影響其含量。然而，王文輝等[4]研究表明，在黃顙魚飼料中添加不同劑型和劑量的維生素C，各組血清IgM、C3和C4含量差異不顯著。產生不同的結果可能與試驗方法、維生素C源及魚體自身健康狀況等因素不同有關。本試驗中，各組間血清IgM含量差異不顯著；維生素C磷酸酯組血清C3和C4含量顯著高于鋅螯合維生素C組，與對照組和普通維生素C組差異不顯著。這說明不同來源的維生素C可能對不同免疫指標有不同的影響。胡斌等[22]研究顯示，飼料中添加維生素C磷酸酯顯著提高了草魚血清LSZ活性。王文輝等[4]的研究也表明，不同劑型的維生素C均能顯著提高黃顙魚血清LSZ活性。本試驗中，對照組血清LSZ活性顯著低于普通維生素C組、維生素C磷酸酯組和鋅螯合維生素C組。這說明基礎飼料中添加適量的維生素C能夠提高吉富羅非魚的免疫力，不同來源維生素C對吉富羅非魚的血清免疫指標有不同的影響，但其作用機制有待進一步研究。

3.3 不同維生素C源對吉富羅非魚肝臟抗氧化指標的影響

在魚類進行新陳代謝時，發揮關鍵作用的器官是肝臟，它對于代謝蛋白質、維生素等各類營養物質十分重要。與此同時，肝臟還能儲存大量的營養物質[39]。在長期的進化過程中，生物體為防止氧自由基對機體造成損傷，保持其內環境平衡，逐漸形成了特定的抗氧化防御系統，主要包括酶系統[超氧化物歧化酶(superoxide dismutase，SOD)、過氧化氫酶(catalase，CAT)、谷胱甘肽過氧化物酶(glutathione peroxidase，GSH-Px)]和非酶系統(GSH、維生素C、維生素E等)[37]。維生素C作為一種水溶性抗氧化劑進入機體后，能積極發揮抗氧化作用，清除自由基，保護機體免受氧化損傷。抗氧化酶SOD、CAT、GSH-Px的活性是反映機體健康與否的重要指標[36]。關于維生素C對魚類肝臟生化指標影響的研究相對較少。萬金娟[24]在團頭魴幼魚上的研究表明，維生素C組肝臟SOD活性顯著高于對照組。本試驗中，各組間肝臟T-SOD活性差異不顯著。結果存在差異可能是試驗條件和維生素C劑型不同所致。池磊[27]在幼建鯉上的研究表明，維生素C組肝胰臟GSH含量顯著高于對照組。本試驗中，各組之間肝臟T-AOC及AKP、6PGDH活性與T-GSH含量差異不顯著。出現這種差異的原因可能是試驗方法和取樣時間等不同，其作用機制有待進一步研究。明建華等[3]研究顯示，高劑量維生素C磷酸酯能夠顯著降低團頭魴肝臟MDA含量。本試驗結果也表明，維生素C磷酸酯組肝臟MDA含量顯著低于對照組、普通維生素C組和鋅螯合維生素C組，這與在黑鯛仔魚飼料中添加維生素C磷酸酯能顯著降低肝臟MDA含量的結果[40]一致，表明維生素C磷酸酯能夠通過減少吉富羅非魚脂質過氧化毒性產物MDA含量來提高其抗氧化能力。ICDH是一類小分子蛋白質，是具有重要脫羧作用的氧化還原酶，在能量代謝、氨基酸和維生素合成中扮演重要角色[41]，而肝臟是魚類中間代謝的主要器官。本試驗中，鋅螯合維生素C組肝臟ICDH活性與對照組、普通維生素C組和維生素C磷酸酯組相比顯著提高，這表明鋅螯合維生素C較其他2種維生素C源對ICDH活性的提高作用更顯著。綜上可知，不同維生素C源由于產品自身特性的不同，在魚類中的應用效果也不盡相同。

4 結 論

① 與普通維生素C和維生素C磷酸酯相比，飼料中添加鋅螯合維生素C對吉富羅非魚的促生長效果更好。

② 飼料中添加鋅螯合維生素C能夠提高吉富羅非魚的抗氧化能力，而添加維生素C磷酸酯則能夠提高吉富羅非魚的抗氧化能力和免疫力。

③ 依據本試驗結果，推薦吉富羅非魚飼料中使用鋅螯合維生素C作為維生素C源。