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雙氫青蒿素對人胃癌細(xì)胞BGC-823細(xì)胞增殖、凋亡的影響及機(jī)制研究

2020-12-02 04:20:38徐彥楠王彥玲周晨明
關(guān)鍵詞:胃癌檢測

徐彥楠,孟 麗,朱 艷,閆 靜,王彥玲,周晨明*

(1.河北醫(yī)科大學(xué)教學(xué)實(shí)驗(yàn)中心,河北 石家莊 050017;2.河北醫(yī)科大學(xué)電鏡實(shí)驗(yàn)中心,河北 石家莊 050017;3.河北醫(yī)科大學(xué)細(xì)胞生物教研室,河北 石家莊 050017)

胃癌是世界上常見的消化道惡性腫瘤之一,對人類的健康造成巨大威脅。其發(fā)病率和病死率分別位于世界惡性腫瘤第4位和第2位[1]。目前,在臨床上主要通過手術(shù)切除病灶來治療癌癥改善病情。但是臨床癥狀對于胃癌早期患者來說并不明顯,以至于就診率很低。并且目前在診療過程中缺乏診斷胃癌的生物學(xué)指標(biāo),導(dǎo)致眾多出現(xiàn)臨床癥狀的患者在確診時已是伴有轉(zhuǎn)移的中晚期胃癌[2]。最佳手術(shù)治療時期已經(jīng)錯過,非手術(shù)治療是唯一緩解病情的方式。目前,放療與化療已被廣泛應(yīng)用于中晚期腫瘤的非手術(shù)治療中,但在治療過程中容易出現(xiàn)不良反應(yīng),甚至出現(xiàn)器官衰竭。因此,尋找高效低毒的天然藥物至關(guān)重要。青蒿素是1971年我國科學(xué)家在中草藥青蒿中分離出的環(huán)狀倍半萜類化合物,是一種低毒、高效治療瘧疾的天然藥物。青蒿素難溶于水,使其療效不能充分的發(fā)揮,因此合成了抗瘧效果強(qiáng)于青蒿素且低毒、安全的青蒿素衍生物——雙氫青蒿素(dihydroartemisinin,DHA)。有研究表明,DHA對宮頸癌、胰腺癌、肺癌、肝癌、淋巴癌和前列腺癌等腫瘤細(xì)胞的生長有明顯地抑制作用[3-8],但是否能抑制人胃癌細(xì)胞BGC-823細(xì)胞及其作用機(jī)制的研究尚未報道。因此,本研究旨在探討DHA抑制人胃癌細(xì)胞BGC-823細(xì)胞增殖并促凋亡的作用及作用機(jī)制,以期為中藥抗腫瘤藥物的開發(fā)提供依據(jù)。

1 材 料 與 方 法

1.1實(shí)驗(yàn)材料 人胃癌細(xì)胞系BGC-823細(xì)胞;DHA購自美國Sigma公司;RPMI1640培養(yǎng)基購自美國Gibco公司;噻唑藍(lán)(methylthiazoletetrazolium,MTT)購自美國Pharma Minger公司;兔抗人Bax、Caspase-3、Caspase-8單克隆抗體購自美國Santa Cruz公司;羊抗兔二抗購自康為世紀(jì)生物試劑公司;倒置顯微鏡購自日本奧林巴斯公司;倒置熒光顯微鏡購自日本奧林巴斯公司;二氧化碳培養(yǎng)箱購自美國Formascientific公司;酶標(biāo)儀購自美國Bio-Rad公司;電泳儀購自比利時Consort公司;超薄切片機(jī)UC7購自德國徠卡公司;流式細(xì)胞儀購自美國BD公司;透射電子顯微鏡H-7500購自日本日立公司。

1.2方法

1.2.1細(xì)胞培養(yǎng) BGC-823細(xì)胞在含有10%胎牛血清的RPMI1640培養(yǎng)基中培養(yǎng),置于CO2培養(yǎng)箱中,每周傳代2~3次,維持細(xì)胞處于對數(shù)生長期。

1.2.2MTT法檢測DHA對BGC-823細(xì)胞的抑制率 取對數(shù)生長的BGC-823細(xì)胞,棄培養(yǎng)基,用PBS進(jìn)行清洗,加入0.25%胰酶進(jìn)行消化,用培養(yǎng)基調(diào)成單細(xì)胞懸液,接種到96孔板上,置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)過夜,待貼壁后根據(jù)分組加入不同濃度的DHA[0(對照組),0.67,1.34,2.68,5.36,10.72 μmol/L]生長24,48,72 h。定時觀察細(xì)胞生長情況,每孔加入5 g/L MTT 溶液20 μL/孔,孵育4 h后,棄上清加入150 μL/孔 二甲基亞砜。利用酶標(biāo)儀以波長490 nm測各孔吸光值(absorbance,A),根據(jù)下列公式計算DHA對BGC-823細(xì)胞的抑制率:抑制率(%)=(1-實(shí)驗(yàn)組A/對照組A)×100%,并將上述計算結(jié)果用82798-IC50軟件計算出DHA作用的半數(shù)抑制濃度(half maximal inhibitory concentration,IC50)。

1.2.3流式細(xì)胞術(shù)(flow cytometry,FCM)檢測凋亡率 實(shí)驗(yàn)分組為對照組、1.7 μmol/L組、3.4 μmol/L組、6.8 μmol/L組。在細(xì)胞培養(yǎng)瓶中以1×105個/mL的濃度接種5 mL BGC-823細(xì)胞,24 h后在對照組加入3 mL培養(yǎng)基,實(shí)驗(yàn)組中分別加入3 mL終濃度為1.7、3.4、6.8 μmol/L DHA,之后繼續(xù)在CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)48 h,終止培養(yǎng)并收集細(xì)胞。細(xì)胞經(jīng)0.04%乙二胺四乙酸消化,離心,收集細(xì)胞。用預(yù)冷PBS重懸,離心、清洗兩次,用體積分?jǐn)?shù)為70%乙醇吹打制成單細(xì)胞懸液。上機(jī)檢測前棄乙醇,用PBS清洗重懸,取單細(xì)胞懸液0.1 mL,加入1 mL碘化丙啶染液,將其置于4 ℃冰箱避光繼續(xù)孵育30 min,以500目銅網(wǎng)過濾,用流式細(xì)胞儀進(jìn)行分析檢測凋亡率。

1.2.4DHA對BGC-823細(xì)胞凋亡的形態(tài)學(xué)影響 分組同F(xiàn)CM,每組均做3個復(fù)孔,給藥方式同F(xiàn)CM,繼續(xù)培養(yǎng)48 h后離心,棄上清,PBS洗滌,用4%多聚甲醛固定30 min,PBS洗滌,DAPI避光孵育3 min,PBS清洗后置于熒光顯微鏡下觀察、拍照。收集細(xì)胞,離心成團(tuán),棄上清,加入2.5%戊二醛進(jìn)行前固定、1%四氧化鋨后固定1.5 h、經(jīng)50%、70%、80%、90%、100%丙酮梯度脫水、Epon812樹脂包埋、超薄切片機(jī)切50 nm超薄切片、醋酸雙氧鈾及檸檬酸鉛染色各30 min,在透射電子顯微鏡下檢測、拍照。

1.2.5Western blotting檢測相關(guān)蛋白表達(dá) 細(xì)胞分組及處理同F(xiàn)CM,繼續(xù)孵育48 h后,經(jīng)預(yù)冷的PBS洗滌,用裂解液裂解60 min,測定蛋白質(zhì)濃度。之后進(jìn)行蛋白電泳和轉(zhuǎn)膜,再進(jìn)行免疫反應(yīng):將膜用5%脫脂奶粉37 ℃封閉2 h,加入兔抗人Bax、Caspase-3、Caspase-8孵育,4 ℃冰箱過夜;TBST洗滌3次后,與辣根過氧化物酶標(biāo)記的羊抗兔二抗孵育1 h,TBST洗滌3次,滴加發(fā)光液,顯影并采用凝膠圖像系統(tǒng)分析。

1.3統(tǒng)計學(xué)方法 應(yīng)用SPSS13.0統(tǒng)計軟件分析數(shù)據(jù)。計量資料比較采用單因素方差分析和SNK-q檢驗(yàn)。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

2 結(jié) 果

2.1不同濃度DHA對BGC-823細(xì)胞的增殖活性的影響 不同濃度DHA作用于BGC-823細(xì)胞后,其抑制率隨藥物濃度的增加而增大,且隨著時間的延長而增大,具有顯著的劑量和時間依賴性,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見表1。DHA作用的IC50為3.4 μmol/L。

表1 不同濃度DHA對BGC-823細(xì)胞的抑制率比較

2.2FCM檢測DHA對BGC-823細(xì)胞凋亡的影響 隨著DHA藥物濃度的增加,凋亡峰愈加明顯,并呈現(xiàn)出劑量依賴性。差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。見表2,圖1。

2.3DHA對BGC-823細(xì)胞凋亡形態(tài)學(xué)的影響 熒光顯微鏡觀察細(xì)胞凋亡的形態(tài)特征,對照組呈現(xiàn)淡藍(lán)色熒光,且分布均勻、形態(tài)完整;隨著DHA濃度的增加,實(shí)驗(yàn)組BGC-823細(xì)胞表現(xiàn)為細(xì)胞核固縮,藍(lán)色熒光增強(qiáng),部分細(xì)胞核呈現(xiàn)顆粒團(tuán)狀染色質(zhì)或碎裂成許多球形顆粒物質(zhì),見圖2。透射電子顯微鏡觀察細(xì)胞凋亡的形態(tài)特征:對照組細(xì)胞器豐富,細(xì)胞核染色質(zhì)分布均勻;1.7 μmol/L組細(xì)胞輕度固縮,染色質(zhì)電子密度增加,邊集于核膜下;3.4 μmol/L組細(xì)胞固縮加重,核膜下染色質(zhì)邊集進(jìn)一步增厚;6.8 μmol/L組細(xì)胞體積明顯縮小,胞質(zhì)高度濃縮,染色質(zhì)邊集更加明顯,見圖3。

表2 FCM檢測不同濃度DHA作用48 h后BGC-823細(xì)胞凋亡率比較

2.4DHA對BGC-823細(xì)胞凋亡相關(guān)蛋白Bax、Caspase-3、Caspase-8的影響 Western blotting結(jié)果表明,BGC-823細(xì)胞隨著DHA用藥濃度的增大,Bax、Caspase-3、Caspase-8條帶變寬、變深。細(xì)胞中Bax、Caspase-3、Caspase-8蛋白表達(dá)隨著DHA給藥濃度的增加而增高,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見表3,圖4。

表3 不同濃度DHA及對照組作用48 h后BGC-823細(xì)胞Bax 、Caspase-3、Caspase-8蛋白表達(dá)

Figure 3 BGC-823 cells morphology using transmission electron microscope

3 討 論

我國每年新增的胃癌患者約為67.9萬,死亡約為49.8萬,占全球總?cè)藬?shù)的45%[9]。雖然近些年,通過改善飲食習(xí)慣、降低危險因素等方法,胃癌發(fā)病率逐年降低,但仍是常見的惡性腫瘤之一。抑制腫瘤生長是目前臨床治療腫瘤的重要途徑。DHA是青蒿素的主要衍生物,對多種組織的人類惡性腫瘤具有明顯的細(xì)胞毒性作用[3-8]。為了考察DHA抗胃癌的作用和機(jī)制,本研究采用人胃癌細(xì)胞BGC-823細(xì)胞探討DHA抗胃癌的效果及機(jī)制。本實(shí)驗(yàn)通過MTT檢測DHA對人胃癌細(xì)胞BGC-823細(xì)胞增殖活性的影響,結(jié)果顯示DHA對BGC-823細(xì)胞增殖的抑制作用明顯且具有時間和劑量依賴性。

在MTT檢測過程中,通過倒置顯微鏡可見用藥組細(xì)胞凋亡現(xiàn)象明顯。細(xì)胞凋亡是一個高度調(diào)控的細(xì)胞死亡過程,主要負(fù)責(zé)清除那些已經(jīng)高度損壞、被破壞、老化和不可修復(fù)的細(xì)胞,以維持多細(xì)胞生物的正常生理過程。細(xì)胞凋亡出現(xiàn)異常可以導(dǎo)致和促進(jìn)多種疾病如:自身免疫性疾病、神經(jīng)退行性疾病、心臟病和癌癥等的發(fā)生[10-12]。因此,涉及細(xì)胞凋亡調(diào)控的因素對疾病的診斷和干預(yù)有著巨大的價值。本實(shí)驗(yàn)通過 FCM檢測發(fā)現(xiàn)隨著DHA給藥濃度的升高,細(xì)胞凋亡率也隨之升高,表現(xiàn)為明顯濃度依賴性。進(jìn)一步通過熒光顯微鏡及透射電子顯微鏡觀察,發(fā)現(xiàn)用藥組細(xì)胞隨著給藥濃度的升高,細(xì)胞凋亡形態(tài)的變化更加明顯,與FCM結(jié)果一致。

Caspases是屬于半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶的一類蛋白質(zhì),在凋亡的過程中發(fā)揮著重要的作用[13]。內(nèi)源性和外源性凋亡都依賴于Caspases家族成員的激活。在細(xì)胞凋亡之前,細(xì)胞的表面受體會傳遞一種來自細(xì)胞外微環(huán)境的死亡信號,“死亡”配體與其受體結(jié)合,形成誘導(dǎo)死亡的信號復(fù)合體,然后激活Caspase-8,進(jìn)一步激活Caspase-3,從而引發(fā)細(xì)胞凋亡[14]。Caspase-8主要位于線粒體,少數(shù)位于胞質(zhì)和胞核中,其介導(dǎo)TNFR1等死亡受體誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡,是凋亡途徑關(guān)鍵的啟動者[15]。Caspase-3是整個凋亡通路的中樞,是Caspase凋亡級聯(lián)通路的效應(yīng)體,Caspase-3在啟動外部凋亡通路和內(nèi)部凋亡通路后均被激活,其作為細(xì)胞凋亡的執(zhí)行者,通過特異性地裂解底物最終導(dǎo)致細(xì)胞凋亡[16]。Bax 又稱成孔蛋白,是Bcl-2家族中經(jīng)典的促凋亡因子,在調(diào)節(jié)細(xì)胞凋亡中發(fā)揮著重要的作用[17]。它可以在線粒體外膜上形成孔,導(dǎo)致線粒體的破壞并使細(xì)胞色素C釋放增加,與Apaf-1相互作用,導(dǎo)致Caspase-9的激活,引起Caspases 的級聯(lián)反應(yīng),最終導(dǎo)致細(xì)胞凋亡[18]。有研究表明,Bax、Caspase-3、Caspases-8基因的激活促進(jìn)細(xì)胞凋亡[19]。本實(shí)驗(yàn)通過Western blotting測定Bax、Caspase-3、Caspase-8基因表達(dá),結(jié)果顯示其表達(dá)量用藥組高于對照組,提示DHA可以使Bax、Caspase-3、Caspase-8的表達(dá)增加,進(jìn)而誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡。

由此可見,DHA對BGC-823細(xì)胞的增殖具有明顯的抑制作用,其誘導(dǎo)凋亡的機(jī)制可能是通過上調(diào)Bax、Caspase-3、Caspases-8的表達(dá)而起作用,但DHA誘導(dǎo)凋亡信號通路的具體分子機(jī)制有待進(jìn)一步研究。

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