鐘桂蘭,周 知,王 茹,符山花,劉曉芳
[1海南省婦幼保健院(海南省婦女兒童醫學中心)婦科,海南???72600;2黑龍江中醫藥大學,黑龍江哈爾濱150040]
隨著對細胞自噬的深入研究,人們越發認識到自噬在腫瘤發生發展過程中起著重要作用,一方面自噬發揮保護細胞的作用,實現細胞器更新和代謝需求,另一方面自噬可作為Ⅱ型細胞程序性死亡,誘導細胞凋亡,因此研究自噬發生機制有利于臨床宮頸癌的治療[1-2]。有研究顯示,sirtuin 1(SIRT1)不僅可通過叉頭框蛋白O(forkhead box protein O,FoxO)調控自噬,也可調控氧化應激,參與細胞凋亡、增殖等過程[3-4],SIRT1-FoxO 信號通路有可能成為臨床上治療宮頸癌的新靶點。紫檀芪(pterostilbene,PTE)類屬于藜蘆醇同系物,具有抗腫瘤和激活細胞自噬的作用[5],但PTE激活自噬的具體作用機制未見相關報道。因此,本研究通過觀察PTE 對人宮頸癌HeLa細胞自噬的影響,探究其相關作用機制。
PTE(純度≥98%)購自上海源葉生物科技有限公司,貨號:B21702-20 mg;DMEM、CCK-8 試劑盒、胎牛血清(fetal bovine serum,FBS)、RIPA 細胞裂解液和牛血清白蛋白(bovine serum albumin,BSA)溶液購自碧云天生物技術研究所;BCA 蛋白定量試劑盒和PVDF 膜購自上海炎熙生物科技有限公司;兔抗人p62、Bax、Bcl-2、LC3-Ⅰ、LC3-Ⅱ和 β-actin 抗體均購自上海熹垣生物科技有限公司;兔抗人SIRT1 和FoxO抗體和羊抗兔IgG-HRP均購自上海恒斐生物科技有限公司;Annexin V-FITC/PI 試劑盒購自上海群己生物科技有限公司。
SpectraMax M3 型多功能酶標儀購自MD;Attune NxT型流式細胞儀和iBright FL1500型智能成像系統均購自Thermo Fisher Scientific;LVEM5 型臺式透射電子顯微鏡購自Delong Instruments。
人宮頸癌細胞株HeLa 購自中科院上海細胞庫。培養液為含10% FBS 和1%青鏈霉素雙抗的DMEM培養液,在37℃、5% CO2、相對濕度98%的恒溫培養箱中培養。隔天換液,0.25%胰蛋白酶消化傳代,取對數生長期細胞用于實驗,根據CCK-8 實驗測出PTE 對 HeLa 細胞的 IC50,以 IC50為 PTE 最大作用濃度進行分組,分別為0μmol/L、15μmol/L、30μmol/L 和60μmol/L PTE組,再開展后續實驗。
3.1 CCK-8 法測定PTE 對HeLa 細胞活力的影響收集對數生長期HeLa 細胞,用含有FBS 的DMEM 培養液調整細胞密度,按照每孔8×103個的數量接種至96孔板中。繼續培養12 h,棄去舊DMEM 培養液,加入200μL 含有不同濃度PTE(PTE 終濃度分別為0、2、5、10、20、40 和 80 μmol/L)的 DMEM 培養液[6],培養 24 h 和 48 h 后,棄去舊 DMEM 培養液,各孔加入180μL DMEM 培養液和20μL CCK-8 溶液。繼續培養2 h后棄舊培養液,用多功能酶標儀測定450 nm波長處吸光度(A),同時設置空白對照組和0.1%DMSO 對照組,每個濃度設置6 個復孔。細胞活力抑制率(%)=[1-(實驗組A值-空白對照A值)/(對照組A值-空白對照A值)]×100%。用SPSS軟件計算PTE對HeLa細胞的半數抑制濃度(IC50)。
3.2 流式細胞儀測定PTE 對HeLa 細胞凋亡率的影響 收集對數生長期HeLa 細胞,用含有FBS 的DMEM 培養液調整細胞密度,按照每孔2.0×105個的密度接種到6孔板上,繼續培養12 h,棄去舊培養液,加終濃度含有 0、15、30 和 60 μmol/L PTE 的 DMEM培養液,培養48 h 后,棄去舊DMEM 培養液,避光條件下加入FITC 和PI,標記細胞,具體操作按照An?nexin V-FITC/PI 試劑盒說明書進行,每個濃度設置6個復孔,流式細胞儀檢測細胞凋亡率。
3.3 透射電鏡觀察PTE 處理后HeLa 細胞中自噬體 HeLa 細胞經0 μmol/L、15 μmol/L、30 μmol/L 和60 μmol/L PTE 處理48 h 后,用胰酶消化,離心后,用預冷的PBS 重懸細胞,離心、棄上清液,2.5%戊二醛固定15 min,脫水、包埋、切片,枸櫞酸鉛染色,用透射電鏡觀察HeLa細胞中自噬體。
3.4 qPCR 測定 PTE 處理 后 HeLa 細 胞中 SIRT1 和FoxO 的mRNA 表達 采用Trizol 法提取細胞總RNA,逆轉錄為cDNA,以其為模板進行qPCR,用GAPDH 為內參照。GAPDH 上游引物序列為5'-GGCATGGACTGTGGTCATGAG-3',下游引物序列為5'-TGCACCACCAACTGTTAGC-3';SIRT1 上游引物序列為5'-AGGCGGATTTCTGAGTTCGA-3',下游引物序列為5'-CGTCCCTTGTAATGTTTCCC-3';FoxO上游引物序列為5'-CTCATCACCAAGGCCATCGAG-3',下 游 引 物 序 列 為 5'-CCATGGACG?CAGCTCTTCTC-3'。按試劑盒說明建立終體積為20μL 的反應體系:2 μL 反轉錄產物,10 μL SYBR Green Mix,上、下游引物(10 μmol/L)各 0.5 μL,7μL ddH2O。熱循環參數為:95℃預變性5 min;94℃變性30 s,60℃退火30 s,40 個循環。結果采用2-ΔΔCt法進行計算。
3.5 Western blot 法測定 PTE 處理后 HeLa 細胞中SIRT1、FoxO、LC3Ⅰ、LC3Ⅱ、p62、Bax和Bcl-2水平用RIPA 細胞裂解液裂解經PTE 處理后的HeLa 細胞,4℃離心提取總蛋白,用BCA 蛋白定量試劑盒測定總蛋白含量,操作按照試劑盒說明書進行。SDSPAGE 分離目標蛋白(低壓80 V,30 min;高壓120 V,60 min),轉至PVDF 膜上,5% BSA 封閉,分別加入相應兔抗人SIRT1、FoxO、LC3Ⅰ、LC3Ⅱ、p62、Bax、Bcl-2 和β-actin I 抗(1∶1 000),孵育過夜,加入羊抗兔IgG-HRP II 抗(1∶2 000),孵育2 h,ECL 顯色,測定各蛋白條帶灰度值,蛋白相對含量=目標蛋白灰度值/內參照β-actin蛋白灰度值。
使用SPSS 22.0 軟件進行統計學分析。數據以均數±標準差(mean±SD)形式表示。多組比較行單因素方差分析,任意兩組相比行SNK-q檢驗。以P<0.05為差異有統計學意義。
CCK-8 法結果顯示,PTE 作用于 HeLa 細胞 48 h后,細胞活力受到抑制,活力抑制率隨濃度增加而升高,具有濃度依賴性,見表1。PTE 對HeLa 細胞作用24 h 的 IC50為(53.87±5.48)μmol/L,48 h 的 IC50為(32.46±3.76)μmol/L,參照IC50值,后續實驗采用0、15、30和60μmol/L PTE進行。

表1 不同濃度PTE對HeLa細胞活力的影響Table 1.The effect of different concentrations of PTE on the via?bility of HeLa cells(Mean±SD. n=6)
為驗證PTE 促進HeLa 細胞凋亡,采用流式細胞術測定不同濃度PTE 對HeLa 細胞凋亡率的影響,與0 μmol/L PTE 相比,15、30和60 μmol/L PTE 處理后,HeLa 細胞凋亡率顯著升高(P<0.05),且呈濃度依賴性(P<0.05),見圖1。

Figure 1.The effect of different concentrations of PTE on the apoptosis rate of HeLa cells.Mean±SD. n=6.*P<0.05 vs 0 μmol/L PTE group;#P<0.05 vs 15μmol/L PTE;△P<0.05 vs 30μmol/L PTE group.圖1 不同濃度PTE對HeLa細胞凋亡率的影響
通過透射電鏡觀察到,無PTE(0 μmol/L PTE)處理的HeLa 細胞中自噬體數目較少,經15、30 和60μmol/L PTE 處理后,HeLa細胞中自噬體數目明顯增加,見圖2。
為進一步確定PTE 處理對HeLa 細胞自噬和凋亡的作用,不同濃度PTE處理后,通過Western blot法測定相關蛋白表達,結果顯示,與0 μmol/L PTE 相比,15、30和60μmol/L PTE處理后,HeLa細胞中Bax和LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ水平顯著升高(P<0.05),Bcl-2 和p62 水平顯著降低(P<0.05),且呈濃度依賴性(P<0.05),見圖3。

Figure 2.Comparison of the number of autophagosomes in HeLa cells after PTE treatment(lead citrate staining,scale bar=1 or 2 μm).The autophagosome are indicated by black arrow.圖2 PTE處理后HeLa細胞中自噬體數目比較

Figure 3.Western blot was used to detect the protein levels of Bcl-2,Bax,LC3-Ⅰ,LC3-Ⅱ and p62 in HeLa cells.Mean±SD. n=6.*P<0.05 vs 0 μmol/L PTE group;#P<0.05 vs 15 μmol/L PTE group;△P<0.05 vs 30μmol/L PTE group.圖3 Western blot 法檢測 HeLa 細胞中 Bcl-2、Bax、LC3-Ⅰ、LC3-Ⅱ和p62蛋白水平
為研究 PTE 處理對 HeLa 細胞 SIRT1/FoxO 通路的影響,不同濃度PTE處理后,通過Western blot法測定相關蛋白表達,結果顯示,與0 μmol/L PTE 相比,經 15、30 和 60 μmol/L PTE 處理后,HeLa 細胞中SIRT1 和FoxO 的mRNA 及蛋白表達水平顯著升高(P<0.05),且呈濃度依賴性(P<0.05),見圖4。

Figure 4.Expression of SIRT1 and FoxO in HeLa cells after PTE treatment.A:the mRNA expression of SIRT1 and FoxO detected by qPCR;B:the protein expres?sion of SIRT1 and FoxO detected by Western blot.Mean±SD. n=6.*P<0.05 vs 0 μmol/L PTE group;#P<0.05 vs 15 μmol/L PTE group;△P<0.05 vs 30.0μmol/L PTE group.圖 4 PTE 處理 后 HeLa 細 胞中 SIRT1 和 FoxO 的 mRNA 及蛋白表達
宮頸癌發病率和病死率逐年升高,全球每年新增患者近50萬人[7],近年來,自噬在腫瘤進程的作用受到越來越多研究者們的關注,有望成為腫瘤治療中促進腫瘤細胞凋亡的新靶點。PTE 是主要從葡萄和藍莓中提取而來的天然化合物,是一種天然的抗氧化劑。最新研究顯示,PTE生物活性廣泛,具有顯著的抗腫瘤活性;研究顯示,PTE可激活人視網膜母細胞瘤WERI-Rb-1細胞自噬,抑制其增殖,促進其凋亡[8]。劉盛楠等[9]研究顯示 PTE 通過上調 Bax、Fas、細胞色素C和caspase-3,下調Bcl-2,抑制HepG2細胞增殖并促進其發生凋亡。本研究觀察到,經不同濃度PTE 處理后,HeLa 細胞活力抑制率、細胞凋亡率依次升高,提示PTE 可以抑制HeLa 細胞活力,促進細胞凋亡。細胞凋亡是細胞程序性死亡進程,主要受抑凋亡因子Bcl-2 和促凋亡因子Bax 調控,本研究進一步研究結果顯示,PTE 處理后,HeLa 細胞中Bcl-2 水平降低,Bax 水平升高,提示 PTE 通過上調 Bax、下調Bcl-2而抑制HeLa細胞增殖,促進其凋亡。
自噬與腫瘤細胞凋亡密切相關,研究顯示,腫瘤壞死因子相關凋亡誘導因子誘導劑TIC10 聯合阿司匹林,可通過促進自噬,促進宮頸癌細胞凋亡[10]。LC3 由LC3-Ⅰ和LC3-Ⅱ兩個亞型組成,細胞發生自噬時,LC3-Ⅰ經加工形成LC3-Ⅱ,而p62 蛋白首先與泛素化的蛋白質結合,隨后與LC3-Ⅱ結合形成復合物,從而被降解,因此LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ和p62蛋白水平常用來檢測細胞是否發生自噬[11-12]。研究顯示,PTE可通過上調LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ水平,促進人口腔癌細胞自噬,以抑制其增殖,促進其凋亡[13]。本研究觀察到,經PTE 處理后,HeLa 細胞中自噬體數目增加,LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ水平升高,p62 水平降低,說明 PTE 可促進HeLa 細胞發生自噬,并通過此機制促進細胞凋亡,但是PTE 通過調控何種信號通路誘導HeLa 細胞自噬還有待進一步研究。
FoxO 主要由 FoxO1 和 FoxO3 組成,對腫瘤細胞增殖和凋亡具有重要的調控作用。研究顯示,FoxO3 高表達可促進結腸癌細胞凋亡[14]。SIRT1 是FoxO3 的上游通路,可調控 FoxO3 水平,SIRT1 活化劑激活FOXO1 的脫乙酰作用后,可刺激人皮膚成纖維細胞發生自噬[15]。此外研究顯示,PTE 可通過激活SIRT1/FoxO1信號通路,避免人臍靜脈內皮細胞再灌注損傷[16]。本研究觀察到,PTE處理后,HeLa細胞中SIRT1 和FoxO 的mRNA 及蛋白水平升高,說明PTE 調控細胞 SIRT1 和 FoxO 的 mRNA 及蛋白表達,推測PTE通過調控SIRT1-FoxO通路,調控自噬、凋亡相關因子表達,從而促進細胞自噬和凋亡
綜上所述,PTE 可通過激活SIRT1-FoxO 通路抑制HeLa 細胞增殖,促進細胞自噬、凋亡。然而PTE作用后誘導的自噬與凋亡之間是否有關聯,以及PTE在體內治療的作用有待進一步實驗驗證。