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分離紫薯果膠多糖樹脂的篩選及其工藝優(yōu)化

2020-07-18 04:06:24唐婷韋璐趙琤陳智理
食品工業(yè) 2020年6期
關(guān)鍵詞:質(zhì)量

唐婷,韋璐,趙琤,陳智理

廣西農(nóng)業(yè)職業(yè)技術(shù)學(xué)院食品工程系(南寧 530007)

紫薯又叫黑薯,薯肉呈紫色至深紫色,是一種集食用、藥用及保健功能于一體的高營養(yǎng)蔬菜[1]。紫薯自引進(jìn)后在中國廣為種植,具有良好的經(jīng)濟(jì)效益,在國內(nèi)外市場上十分走俏,發(fā)展前景廣闊[2]。紫薯嫩莖葉含有豐富的纖維素與果膠,能刺激腸胃蠕動(dòng),促進(jìn)腸道中致癌毒物的排泄,營養(yǎng)價(jià)值不低于米面食品[3]。同時(shí),中國中醫(yī)學(xué)研究表明,甘薯莖葉具有補(bǔ)虛、益氣、健脾強(qiáng)胃、益肺生津、補(bǔ)肝明目、延緩衰老等作用,具有較高的食用價(jià)值和藥用價(jià)值[4-6]。目前紫薯主要以鮮食形式出現(xiàn),亦有利用紫薯加工成休閑食品、果酒、飲料等的研究[7]。而對(duì)于紫薯中功能性成分的研究主要集中在對(duì)花青素、膳食纖維等的提取,對(duì)于紫薯中果膠類多糖的研究還鮮有報(bào)道。

果膠類多糖是植物細(xì)胞壁多糖類家族中結(jié)構(gòu)最為復(fù)雜的一種,具有良好的膠凝性和乳化性及多種生理功效[8]。果膠是由D-半乳糖醒酸經(jīng)α-1, 4糖苷鍵聯(lián)結(jié)并與鼠李糖、阿拉伯糖和半乳糖等其中性糖連接聚合而成的雜多糖,此外還含有一些非糖成分如甲醇、乙酸和阿魏酸,廣泛存在于高等植物的果實(shí)、根、莖、葉中[9-11]。果膠是人體七大營養(yǎng)素中膳食纖維的主要成分,具有良好的抗腹瀉、抗癌、治療糖尿病和減肥等功效[12-14]。因果膠具有良好的凝膠性和乳化穩(wěn)定性,在食品工業(yè)中應(yīng)用廣泛,也是醫(yī)藥和化妝品工業(yè)不可缺少的輔料。試驗(yàn)主要是對(duì)分離紫薯果膠多糖的樹脂進(jìn)行篩選,優(yōu)選出純化該果膠多糖的較佳樹脂,分離純化工藝采用L9(34)正交設(shè)計(jì)優(yōu)化,為進(jìn)一步開發(fā)利用紫薯提供試驗(yàn)依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

新鮮紫薯(廣西南寧市);D296R、D301R、D401陰離子交換樹脂、X-5、AB-8、D101聚酰胺樹脂(天津市津達(dá)正通環(huán)保科技有限公司);濃硫酸、苯酚、乙醇、酒石酸等(分析純)。

1.2 主要儀器及設(shè)備

T6-新世紀(jì)紫外可見分光光度計(jì)(北京北分瑞利分析儀器(集團(tuán))有限責(zé)任公司);HH-S1數(shù)顯恒溫水浴鍋(金壇市醫(yī)療儀器廠);雷磁PHS-3C型pH計(jì)(上海精密科學(xué)儀器股份有限公司);KYC-111型恒溫?fù)u床(上海福瑪有限公司);低速離心機(jī)(上海安亭科學(xué)儀器廠);ALPHA2-4LD plus型真空冷凍干燥機(jī)(德國Chist公司);超聲波清洗機(jī)(長春吉大小天鵝儀器有限公司);RE 52-99旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器(上海亞榮生化儀器廠);BSS-100電腦全自動(dòng)部份收集器、HL-2B數(shù)顯恒流泵(上海滬西分析儀器廠有限公司)。

1.3 試驗(yàn)方法

1.3.1 原料預(yù)處理

紫薯用清水洗干凈,攪拌粉碎后,用95%乙醇浸泡30 min,用水淘洗2~3次,紫薯渣擠干后置于燒杯中加入適量水,用85 ℃水浴加熱5~10 min,冷卻后用流水漂洗、擠干。目的是洗去紫薯渣中可溶性糖分及部分色素類物質(zhì)。所得紫薯于60 ℃烘箱干燥,粉碎,過60目塞后,冷藏,備用[15]。

1.3.2 紫薯果膠類多糖的提取

稱取一定量取處理好紫薯粉末,物料比1∶4,充分溶解后,纖維素酶酶解后用檸檬酸調(diào)節(jié)pH 2.0,于50 ℃恒溫水浴90 min后,超聲波(300 W)超聲波20 min,以4 000 r/min離心15 min,收集上層清液,將清液于旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀上濃縮至原體積的1/4,待濃縮好的原液冷卻后按1∶3加入5%酒石酸乙醇溶液,靜置90 min,沉淀。之后進(jìn)行第2次離心,以4 000 r/min離心15 min,所得沉淀即為紫薯果膠類多糖。

1.3.3 多糖保留率的測定

采用苯酚-硫酸法[16],得標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程為:A=3.082 5C+0.007 2,R2=0.997 1。取1 mL樣品液按照標(biāo)準(zhǔn)曲線步驟操作顯色,蒸餾水作空白對(duì)照,在490 nm波長處測定吸光度,計(jì)算多糖含量及多糖保留率。

1.4 樹脂的篩選

1.4.1 樹脂的預(yù)處理

將樹脂放在大桶內(nèi),先用清水浸泡并用浮選法除去細(xì)小顆粒,漂洗干凈,濾干。用95%乙醇溶液浸泡24 h,洗去樹脂內(nèi)的醇溶性有機(jī)物,用蒸餾水沖洗樹脂無乙醇?xì)馕叮M(jìn)行酸堿處理,2 mol/L的HCl溶液浸泡3 h,洗去酸溶性雜質(zhì),水洗至中性,用2 mol/L NaOH溶液浸泡3 h,洗去堿溶性雜質(zhì),水洗至中性,放入50 ℃烘箱烘干,備用[17]。

表1 大孔樹脂性能參數(shù)

1.4.2 樹脂的靜態(tài)吸附和解析的測定

稱取已處理好的樹脂各5.0 g于250 mL錐形瓶中,加入果膠類多糖溶液30 mL,密封,置于100 r/min搖床中振蕩吸附12 h,恒溫45 ℃,將充分吸附后的樹脂過濾,置于250 mL錐形瓶中,加入95%乙醇25 mL,45 ℃于搖床振蕩洗脫12 h,計(jì)算樹脂的靜態(tài)飽和吸附率和解吸量、解吸率和多糖保留率,比較篩選出最佳的樹脂。

式中:CA為吸附容量,mg/g樹脂;C0為上樣果膠多糖液的質(zhì)量濃度,mg/mL;C1為吸附液中果膠多糖的質(zhì)量濃度,mg/mL;C2為解吸液中果膠多糖液的質(zhì)量濃度,mg/mL;V1為樣液的體積,mL;C1為樹脂干質(zhì)量,g。

1.5 樹脂動(dòng)態(tài)吸附和解吸單因素試驗(yàn)

將1.4中優(yōu)選出的較佳樹脂D296R,稱量5份,每份100 g,預(yù)處理后,分別進(jìn)行濕法裝柱。以紫薯果膠多糖吸附率和多糖保留率為考察指標(biāo),70%乙醇為洗脫劑,考察上樣質(zhì)量濃度(1.0,1.5,2.0,2.5和3.0 mg/mL)、上樣液pH(pH 1.0,1.5,2.0,2.5和3.0),洗脫液流速(1.0,2.0,3.0,4.0,5.0和6.0 mL/min)和洗脫液體積(1,3,5,7和9 BV)的影響。

1.6 正交試驗(yàn)方案

根據(jù)單因素試驗(yàn)情況,以A上樣液質(zhì)量濃度(mg/mL)、B上樣液pH、C洗脫液流速(mL/min)、D洗脫液體積(BV)為因素,以紫薯果膠多糖吸附率和多糖保留率為指標(biāo),進(jìn)行四因素三水平L9(34)設(shè)計(jì)正交試驗(yàn)。

表2 正交試驗(yàn)因素與水平

1.7 數(shù)據(jù)分析

試驗(yàn)至少重復(fù)3次,各指標(biāo)均為3組平行。數(shù)據(jù)采用Excel軟件進(jìn)行分析作圖,SPSS 20.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。

2 結(jié)果與分析

2.1 大孔吸附樹脂的篩選

7種不同型號(hào)樹脂對(duì)紫薯果膠類多糖的靜態(tài)吸附和解吸性能試驗(yàn)、果膠多糖保留率結(jié)果見圖1。對(duì)紫薯果膠多糖提取而言,吸附量較大的是D401和D296R,多糖保留率分別為62.53%和64.79%;而靜態(tài)解析試驗(yàn)中,D296R的解析效果最好,綜合考慮吸附量、解吸率數(shù)據(jù)和多糖保留率,故選用D296R型樹脂為最佳的動(dòng)態(tài)吸附樹脂。

圖1 不同樹脂對(duì)果膠多糖靜態(tài)吸附和解吸性能

2.2 大孔樹脂動(dòng)態(tài)吸附單因素試驗(yàn)

2.2.1 上樣液質(zhì)量濃度對(duì)吸附效果的影響

上樣液pH 2.0,洗脫液流速為3.0 mL/min,洗脫液體積5 BV時(shí),上樣質(zhì)量濃度對(duì)果膠多糖吸附率和多糖保留率的影響見圖2。說明果膠多糖吸附率和保留率隨著上樣液質(zhì)量濃度的增加逐漸增大。上樣液質(zhì)量濃度為2.0 mg/mL時(shí),吸附率和多糖保留率達(dá)到最大。上樣液濃度繼續(xù)增加時(shí)吸附率和多糖保留率下降。可能樹脂發(fā)生多層吸附,導(dǎo)致內(nèi)部微孔堵塞,降低吸附率[18],因此選擇上樣質(zhì)量濃度為2.0 mg/mL較適宜。

圖2 上樣液質(zhì)量濃度對(duì)吸附率和多糖保留率的影響

2.2.2 上樣液pH對(duì)吸附效果的影響

上樣液質(zhì)量濃度2.0 mg/mL,洗脫液流速3.0 mL/min,洗脫液體積5 BV時(shí),上樣液pH對(duì)吸附率和多糖保留率的影響見圖3。說明pH 2.0,吸附率達(dá)到最大值,多糖保留率在pH 3.0最大。隨著pH繼續(xù)增大,樹脂吸附率和多糖保留率均逐漸降低,故選擇上樣液pH 2.0較適宜。

圖3 上樣液pH對(duì)吸附率和多糖保留率的影響

2.2.3 洗脫液流速對(duì)吸附效果的影響

上樣液質(zhì)量濃度2.0 mg/mL,上樣液pH 2.0,洗脫液體積5 BV時(shí),洗脫液流速對(duì)吸附率和多糖保留率的影響見圖4。說明隨著洗脫液流速增加,果膠多糖吸附率和多糖保留率增大,洗脫液流速2.0和3.0 mL/min時(shí),吸附率和多糖保留最高,之后呈下降趨勢(shì),可能是因?yàn)榱魉俚募涌鞂?dǎo)致洗脫液與大孔樹脂不能充分接觸,不能使吸附在大孔樹脂上的紫薯果膠多糖成分被洗脫出來[19]。考慮到流速過低會(huì)增加純化周期和成本,因此選擇洗脫液流速3.0 mL/min較適宜。

圖4 洗脫液流速對(duì)吸附率和多糖保留率的影響

2.2.4 洗脫液體積對(duì)吸附效果的影響

上樣液質(zhì)量濃度2.0 mg/mL,上樣液pH 2.0,洗脫液流速3.0 mL/min時(shí),洗脫液體積對(duì)吸附率和多糖保留率的影響見圖5。說明隨著洗脫液體積增加,吸附率和多糖保留率逐步增加,洗脫液用量7 BV時(shí),吸附率達(dá)到最大值,增加洗脫液用量,吸附率基本不再增大,說明果膠多糖洗脫完全[20]。選擇洗脫液體積選擇7 BV較適宜。

圖5 洗脫液體積對(duì)解吸率的影響

2.3 正交試驗(yàn)結(jié)果與分析

以紫薯果膠多糖吸附率和多糖保留率為考察指標(biāo)的L9(34)正交試驗(yàn)結(jié)果及直觀分析見表3。以吸附率為考察指標(biāo),影響果膠多糖純化各因素依次為:上樣液質(zhì)量濃度(A)>洗脫液體積(D)>洗脫流速(C)>上樣液pH(B)。紫薯果膠多糖的最佳工藝條件為A2B1C2D2,即上樣液質(zhì)量濃度2.0 mg/mL、上樣液pH 1.5、洗脫液流速3.0 mL/min、洗脫液體積5 BV。以多糖保留率為考察指標(biāo),影響果膠多糖純化各因素依次洗脫液體積(D)>上樣液質(zhì)量濃度(A)>上樣液pH(B)>洗脫流速(C),紫薯果膠多糖的最佳工藝條件為A2B3C1D3,即上樣液質(zhì)量濃度2.0 mg/mL、上樣液pH 2.5、洗脫液流速1.5 mL/min、洗脫液體積7 BV。

表3 紫薯果膠多糖吸附的正交試驗(yàn)結(jié)果

2.4 正交試驗(yàn)與單因素試驗(yàn)結(jié)果驗(yàn)證試驗(yàn)

單因素試驗(yàn)中,通過試驗(yàn)確定上樣液質(zhì)量濃度、上樣液pH、洗脫液流速、洗脫液體積等因素分別為2.0 mg/mL,2.0,3.0 mL/min,7 BV。正交試驗(yàn)中以吸附率為考察指標(biāo)的最佳工藝為上樣液質(zhì)量濃度2.0 mg/mL,上樣液pH 1.5,洗脫液流速3.0 mL/min,洗脫液體積5 BV;以多糖保留率為考察標(biāo)的最優(yōu)組合為:上樣液質(zhì)量濃度2.0 mg/mL、上樣液pH 2.5、洗脫液流速1.5 mL/min、洗脫液體積7 BV。3組工藝條件不同的組合方案A,B,C進(jìn)行試驗(yàn)驗(yàn)證,每組進(jìn)行3次平行試驗(yàn)。驗(yàn)證試驗(yàn)結(jié)果見圖6。

由圖6可知,B組結(jié)果最優(yōu),即正交試驗(yàn)中以吸附率為考察指標(biāo)的最佳優(yōu)化組合結(jié)果最好,吸附率為72.36%,多糖保留率為65.57%。因此,最佳工藝為:上樣液質(zhì)量濃度2.0 mg/mL、上樣液pH 1.5、洗脫液流速3.0 mL/min、洗脫液體積5 BV。

圖6 驗(yàn)證試驗(yàn)結(jié)果

3 結(jié)論

通過比較樹脂對(duì)紫薯果膠多糖吸附和解吸效果,同時(shí)考慮多糖保留率,D296R樹脂效果最佳。利用正交試驗(yàn)對(duì)紫薯果膠多糖純化工藝進(jìn)行優(yōu)化,得到最佳工藝條件為:上樣液質(zhì)量濃度2.0 mg/mL、上樣液pH 1.5、洗脫液流速3.0 mL/min、洗脫液體積5 BV。在此最佳工藝條件進(jìn)行3次平行試驗(yàn),紫薯果膠多糖吸附率為72.36%,多糖保留率為65.57%,果膠多糖純度從20.7%提高到61.5%。試驗(yàn)所建立的大孔吸附樹脂純化工藝合理可行,為紫薯果膠多糖的高效提純奠定基礎(chǔ),也為紫薯的綜合開發(fā)利用提供重要理論依據(jù)。

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