陳瑞瑤,榮星,吳婷婷,賈嘗,吳蓉洲,褚茂平,張春祥
(溫州醫科大學附屬第二醫院育英兒童醫院,浙江 溫州 325027,1.兒童心臟中心;2.兒科研究所)
川崎病(Kawasaki disease,KD)是一種以全身性血管炎為主要病變的急性自限性疾病,病因不明,冠狀動脈瘤是最嚴重的并發癥[1-2]。既往研究表明內皮細胞損傷是KD發生發展的重要病理機制,但具體機制仍然不清楚[3-5]。長鏈非編碼RNAs(lncRNAs)是一類長度大于200 nt的RNA,具有強大的生物學功能[6-9]。目前尚未見關于KD血漿對血管內皮細胞中lncRNAs表達的影響和lncRNAs在KD誘導的血管內皮損傷中的潛在作用的報道。Linc01635(ENST00000455966.1,chr1:22023994-22024968)是基因間lncRNA,長度為615 bp。Linc01635在內皮細胞中的生物學功能目前尚不清楚。我們的初步實驗發現,與對照組相比,KD患者血漿培養的人臍靜脈內皮細胞(human umbilical vein endothelial cells,HUVECs)中linc01635表達明顯降低。HUVECs中的linc01635在KD血漿培養下表達量降低可能與細胞損傷有關,本研究探討linc01635在KD誘導的內皮細胞凋亡中的作用。
1.1 細胞株和主要試劑 HUVECs購自江陰齊氏生物科技有限公司;TRIzol試劑和Lipofectamine 3000購于美國Invitrogen公司;胎牛血清和高糖DMEM培養基購于美國Gibco公司;引物、siRNA和FISH試劑盒購于廣州銳博公司;Annexin V PE流式試劑盒購于美國Becton Dickinson公司;PrimeScriptTMRT Master Mix購于日本TaKaRa公司;SYBR Green和96孔板購于美國BIORAD公司;慢病毒購于上海漢恒生物科技公司;4%多聚甲醛、無水乙醇和異丙醇購于上海化學試劑總廠。
1.2 方法
1.2.1 血漿標本采集:根據美國兒童心臟協會制定的診斷標準確診KD急性期的患者[1],收集2018年11月至2019年1月溫州醫科大學附屬第二醫院育英兒童醫院10例急性期KD患者的血漿,以及年齡和性別相匹配的10例健康兒童血漿。本研究經溫州醫科大學附屬第二醫院育英兒童醫院倫理委員會批準,所有入組者家屬知情同意并簽署同意書。
1.2.2 細胞培養和血漿刺激:有研究報道,HUVECs 可用于KD的血管內皮研究[4,10],所以本研究將 HUVECs作為體外模型。用含10%胎牛血清的高糖DMEM培養液,在37 ℃,5% CO2恒溫細胞培養箱中培養。用含10% KD患者血漿或10%健康兒童血漿的DMEM培養液刺激HUVECs,分別為KD組和HC組,24 h后棄去培養液收集細胞。
1.2.3 qRT-PCR:按照TRIzol試劑說明書提取細胞總RNA。使用PrimeScriptTMRT Master Mix將RNA反轉錄成cDNA,使用CFX96TM Real-Time系統進行qRT-PCR分析。GAPDH作為內參,通過比較循環數,計算mRNA和lncRNA的相對表達情況。引物序列(5’-3’):GAPDH:FAACTCTGGTAAAGTGGATATTG(F),RGGTGGAATCATATTGGAACA(R);linc01635:GCTGGCA TATCCGAATGG(F),GCAGTGGCAATGTTGACA(R)。
1.2.4 熒光原位雜交(FISH):RNA FISH使用結合Cy3的linc01635探針、人U6 FISH探針和人18S FISH探針,根據RiboTM熒光原位雜交試劑盒進行操作。采用共聚焦顯微鏡(日本尼康公司)獲取圖像。
1.2.5 Linc01635敲減或過表達:使用Lipofectamine 3000試劑將100 nmol/L linc01635 siRNA(5’-GGGCTG AGCTACCGGATTA-3’)或陰性對照siRNA轉染到HUVECs。轉染24 h后,采用qRT-PCR檢測敲減效率。用帶有linc01635全長序列的慢病毒感染HUVECs(MOI 30), 48 h后,在熒光顯微鏡下觀察細胞感染效率,采用qRT-PCR檢測過表達效率。
1.2.6 細胞凋亡檢測:HUVECs經慢病毒過表達linc01635(LV-linc01635)、慢病毒過表達陰性對照(LV-NC)、siRNA敲減linc01635(si-linc01635)或siRNA敲減陰性對照(si-NC)處理后,用100 μmol/L TBHP誘導凋亡,24 h后消化收集細胞,用Annexin V PE和7-AAD避光孵育,使用流式細胞儀檢測細胞凋亡。
1.3 統計學處理方法 采用SPSS21.0軟件進行分析。計量資料以表示,2組比較采用獨立樣本t檢驗,多組比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用LSD-t檢驗。P<0.05為差異有統計學意義。
2.1 Linc01635在HUVECs中的亞細胞定位 利用生物信息學網站(www.csbio.sjtu.edu.cn/bioinf/ lncLocator)分析,預測linc01635主要分布于細胞核(61.4%)和細胞質(33.0%)[11]。采用RNA FISH技術檢測,發現linc01635在HUVECs中具有核質雙重分布,見圖1。
2.2 Linc01635在KD細胞模型中表達下降 與HC組比,KD組血漿培養的HUVECs中linc01635相對表達量下降,差異有統計學意義(P<0.01),見圖2。
2.3 Linc01635對HUVECs凋亡的影響 LV-linc01635組linc01635表達量比LV-NC組高,silinc01635組linc01635表達量比si-NC組低,差異有統計學意義(P<0.05),見圖3。流式細胞術分析顯示,在TBHP誘導凋亡下,linc01635過表達抑制了HUVECs的凋亡,而linc01635敲減使HUVECs凋亡增加,差異有統計學意義(P<0.01),見圖4。

圖1 Linc01635的RNA熒光原位雜交

圖2 2組血漿培養的HUVECs中linc01635的相對表達量比較
2.4 過表達linc01635抑制KD血漿誘導的HUVECs凋亡 本研究表明,KD血漿可以降低HUVECs中linc01635的表達,而linc01635能影響細胞凋亡。因此,我們推測linc01635的減少可能是KD誘導血管內皮細胞凋亡的一種新分子機制。為了驗證這種推測,我們分別用10%的KD血漿和10%的健康對照血漿培養HUVECs。結果表明,KD血漿能促進HUVECs凋亡,而過表達linc01635能抑制KD血漿誘導的凋亡,差異有統計學意義(P<0.01),見圖5。
KD已成為兒童獲得性心臟病最常見的病因之一,而冠狀動脈瘤等KD誘導的血管損傷已成為成人缺血性心臟病的重要危險因素[12]。血管內皮損傷是KD冠狀動脈瘤的早期病理過程之一,但是KD血管損傷的病理機制尚不清楚[13-14]。
LncRNAs是一類非編碼RNAs,在生理和病理過程中具有重要的生物學功能,包括心血管疾病[15-17]。 有研究表明,血液中的miRNAs在KD血管損傷中發揮重要的作用[4,18]。之前的幾項研究發現,與健康兒童相比,KD患者血液中的lncRNA異常表達[19-20]。因此,血液中的lncRNA可能與KD有關。然而,KD血漿對血管內皮細胞中lncRNAs表達的影響及lncRNAs在KD誘導的血管內皮細胞損傷中的作用尚不清楚。
本研究發現經KD血漿培養的血管內皮細胞中,linc01635表達量明顯降低。目前尚不清楚血管內皮細胞中linc01635表達量的降低是由linc01635轉錄水平降低引起的,還是向細胞外釋放linc01635增多引起的,也可能是兩者共同作用的結果,這需要后續的實驗進行研究。關于linc01635在血管內皮細胞中的生物學功能,目前還未見報道。在本研究中,通過過表達和敲減linc01635,發現linc01635對血管內皮細胞具有調控凋亡的作用。為了驗證linc01635在KD誘導的血管內皮細胞凋亡中的作用,我們分析了KD患者的血漿。研究發現,KD血漿可以誘導血管內皮細胞凋亡,而過表達linc01635可以抑制KD血漿誘導的血管內皮細胞凋亡。

圖3 HUVECs中慢病毒感染和siRNA敲減后linc01635的相對表達量

圖4 流式細胞術檢測linc01635對HUVECs凋亡的影響

圖5 流式細胞術檢測linc01635對KD誘導的HUVECs凋亡的作用
綜上所述,本研究發現KD血漿處理會導致血管內皮細胞中linc01635表達量下降,而linc01635表達量的減少會促進血管內皮細胞凋亡。Linc01635可能是治療KD血管損傷的新靶點。