陽 茜,劉存飛,劉夢琴,唐斯萍,胡 萌,韓路嬌,唐東晴,谷 標(biāo)
(衡陽師范學(xué)院 化學(xué)與材料科學(xué)學(xué)院 功能金屬有機(jī)化合物湖南省高校重點實驗室,湖南 衡陽 421008)
硫化氫是生物體內(nèi)的重要氣體信號分子之一[1]。內(nèi)源性的硫化氫由某些特定酶,如胱硫醚β-合成酶、胱硫醚γ-裂解酶和3-巰基丙酮酸硫轉(zhuǎn)移酶催化產(chǎn)生[2]。細(xì)胞內(nèi)的硫化氫參與許多生理過程,包括血管擴(kuò)張、血管生成、細(xì)胞生長調(diào)節(jié)、神經(jīng)傳遞調(diào)節(jié)、胰島素信號抑制和炎癥調(diào)劑[3]。研究表明,細(xì)胞內(nèi)的硫化氫水平異常與阿爾茨海默病、唐氏綜合征、糖尿病、肝硬化等疾病有關(guān)[4]。因此,發(fā)展高靈敏、選擇性的方法用于細(xì)胞內(nèi)硫化氫的檢測和成像在生物醫(yī)學(xué)研究和疾病診斷方面具有重要意義。
傳統(tǒng)的硫化氫檢測方法主要有比色法、電化學(xué)分析、氣相色譜法等[5-8],但這些方法需要昂貴的儀器設(shè)備和專業(yè)的操作,且大多為破壞性檢測,很難實現(xiàn)生物體內(nèi)硫化氫的實時、原位檢測。相比之下,熒光探針方法具有操作簡單、靈敏性和選擇性高等優(yōu)點。結(jié)合熒光顯微成像技術(shù),熒光探針可用于生物體內(nèi)目標(biāo)分析物的檢測和長期示蹤[9]。
近些年來,國外知名期刊相繼報道了一些用于硫化氫檢測的熒光探針[10-12]。這些探針根據(jù)硫化氫的特定化學(xué)反應(yīng)設(shè)計,通常分為以下3大類:(1)化學(xué)還原:利用硫化氫還原疊氮、硝基、羥胺、二硫化物或硒化物;(2)硫化物沉淀:利用硫化氫與有機(jī)銅復(fù)合物反應(yīng)形成硫化銅沉淀;(3)親核反應(yīng):利用硫化氫的親核性與熒光探針發(fā)生邁克爾加成或者取代反應(yīng)等。硫化氫熒光探針的研制已取得了很大進(jìn)展,但尚有待改進(jìn),如:(1)選擇性:細(xì)胞內(nèi)含有毫摩爾濃度范圍的谷胱甘肽和其他濃度范圍的半胱氨酸,這些生物硫醇通常對硫化氫的檢測產(chǎn)生干擾;(2)Stokes位移:大部分報道的硫化氫探針Stokes位移小(< 80 nm),作為檢測探針時,容易受到內(nèi)濾效應(yīng)和自吸收的干擾,降低檢測靈敏度;作為成像探針時,易受生物樣品背景熒光的干擾,降低成像信噪比。因此,構(gòu)建一種選擇性高、Stokes位移大的硫化氫熒光探針尤為重要,同時也具有一定的挑戰(zhàn)性。

圖1 探針DHCD檢測硫化氫的機(jī)理示意圖Fig.1 Proposed mechanism for the reaction of DHCD with H2S
具有激發(fā)態(tài)分子內(nèi)質(zhì)子轉(zhuǎn)移(Excited-state intramolecular proton transfer,ESIPT)性質(zhì)的化合物,由于存在“醇式-酮式”互變異構(gòu)現(xiàn)象,在構(gòu)建熒光探針中具有重要作用[13]。相比其他熒光化合物,ESIPT化合物最顯著的光學(xué)性質(zhì)是具有大的Stokes位移,可有效消除內(nèi)濾光作用和熒光自吸收效應(yīng),增強(qiáng)目標(biāo)熒光和背景熒光之間的對比度,提高分子的靈敏度[14]?;谝陨峡紤],本研究設(shè)計并合成了一種基于分子內(nèi)質(zhì)子轉(zhuǎn)移(ESIPT)發(fā)色團(tuán)的硫化氫熒光探針(簡稱DHCD,見圖1)。探針DHCD以2-羥基-1-二甲胺基-查耳酮為ESIPT發(fā)色團(tuán)(簡稱DHOH,圖1),以2,4-二硝基苯基醚為硫化氫的特異識別位點。雖然該探針本身沒有熒光,但在硫化氫與探針發(fā)生親核取代反應(yīng)后,識別基團(tuán)脫落,產(chǎn)生的游離ESIPT發(fā)色團(tuán)可引起熒光信號增強(qiáng)。研究發(fā)現(xiàn)探針DHCD在檢測硫化氫時展現(xiàn)較大的Stokes位移,高的靈敏度和選擇性。更重要的是,該探針具有良好的細(xì)胞滲透性和低毒性,能用于活細(xì)胞內(nèi)的硫化氫熒光成像。
2′-羥基苯乙酮、4-二甲氨基苯甲醛、吡咯烷、2,4-二硝基溴苯、硫氫化鈉(NaHS,作為硫化氫的供體)購于安耐吉化學(xué)有限公司。乙醇、二甲基亞砜(DMSO)、N,N-二甲基甲酰胺(DMF)、碳酸鉀等試劑購于國藥集團(tuán)上?;瘜W(xué)試劑有限公司。2-羥基-1-二甲胺基-查耳酮根據(jù)文獻(xiàn)報道方法合成[15]。超純水(≥ 18 MΩ·cm)由Milli-Q純化系統(tǒng)制備。
化合物的氫譜和碳譜經(jīng)Bruker AVANCE-500M型核磁共振儀測得。紫外光譜和熒光光譜分別用UV-2501型紫外可見分光光度計(Shimazu Co,Japan)和RF-5301PC型熒光分光光度計(Shimazu Co,Japan)測定。細(xì)胞熒光成像實驗在倒置熒光顯微鏡(NIKON Eclipse Ti-S,Japan)上進(jìn)行。
將2-羥基-1-二甲胺基-查耳酮(133 mg,0.5 mmol),2,4-二硝基溴苯(134 mg,0.55 mmol)和碳酸鉀(137 mg,1 mmol)溶解于10 mL DMF,常溫下反應(yīng)2 h后倒入冰水中,收集沉淀物,用甲醇重結(jié)晶后得到黃色固體DHCD(145 mg,67%)。1H NMR(500 MHz,DMSO-d6)δ8.82(d,J=2.8,1H),8.40(dd,J=9.3,2.8,1H),7.82(dd,J=7.7,1.5,1H),7.71(td,J=8.1,1.6,1H),7.52(dd,J=17.1,8.2,3H),7.43~7.36(m,2H),7.11(d,J=9.3,1H),7.04(d,J=15.7,1H),6.68(d,J=8.9,2H),2.99(s,6H);13C NMR(126 MHz,DMSO-d6)δ190.27,155.72,152.69,151.02,147.22,141.64,139.17,133.64,133.27,131.27,131.10,130.00,127.41,122.62,122.29,121.66,119.86,119.05,112.15,101.64,40.10。
用分析天平稱取一定量的探針DHCD溶解在DMSO中,配成濃度為1.0 mmol/L的DHCD標(biāo)準(zhǔn)液,保存在4 ℃冰箱中待用;分別稱取一定量的NaHS和其他分析物質(zhì)(金屬鹽、生物硫醇等)溶解在超純水中,配成濃度為1.0 × 10-2mol/L的標(biāo)準(zhǔn)液,保存在4 ℃冰箱中待用。向測試管(2 mL)中加入探針DHCD儲備液(20 μL)和適量的分析物標(biāo)準(zhǔn)液,用磷酸鹽(PBS)緩沖液(10 mmol/L,pH 7.45)定容至刻度線處。待混合液孵育75 min后,在熒光分光光度計上測定熒光強(qiáng)度,熒光光譜儀的激發(fā)波長設(shè)置為382 nm,記錄450~675 nm之間的發(fā)射光譜。
將HeLa細(xì)胞接種在96孔板中,在細(xì)胞培養(yǎng)箱(37 ℃,含5% CO2)中,用10%小牛胚胎血清的DMEM(杜爾貝科改良伊格爾培養(yǎng)基)培養(yǎng)24 h。然后,將細(xì)胞轉(zhuǎn)移到含有DHCD(10 μmol/L)的培基中,孵育30 min后用PBS洗滌2~3次,作為空白組。將一部分經(jīng)DHCD處理的細(xì)胞轉(zhuǎn)移到含有NaHS(200 μmol/L)的培基中,孵育75 min后用PBS洗滌2~3次,作為實驗組。最后,用倒置熒光顯微鏡(NIKON Eclipse Ti-S,Japan)觀察并拍攝兩組細(xì)胞的圖像。
在合成探針DHCD后,測試探針與NaHS作用前后的紫外吸收光譜和熒光光譜,證明探針識別硫化氫的可能。如圖2A所示,探針在348 nm處有一個最大吸收峰,該峰歸因于探針分子結(jié)構(gòu)中的π-π*電子躍遷,而在加入NaHS后,溶液的紫外吸收光譜發(fā)生紅移,在382 nm處產(chǎn)生最大吸收峰,表明溶液中有新物質(zhì)產(chǎn)生。圖2B為探針與NaHS作用前后的熒光光譜,在382 nm光激發(fā)下,探針的熒光較弱(Ф=0.048);而在加入NaHS后,溶液在513 nm處的熒光信號明顯增強(qiáng)(Ф=0.375),這可能是因為探針結(jié)構(gòu)中的2,4-二硝基苯在NaHS作用下脫去,導(dǎo)致熒光恢復(fù)。此外,探針與硫化氫作用后,Stokes位移高達(dá)165 nm,在生物分析中,如此大的Stokes位移可有效減少內(nèi)濾作用,降低自發(fā)熒光的干擾,提高檢測的靈敏度和成像的分辨率。


圖2 探針DHCD與NaHS作用前后的紫外吸收光譜(A)和熒光光譜(B)Fig.2 Absorption(A) and fluorescence(B) spectra of probe DHCD(10 μmol/L) without and with NaHS(200 μmol/L) in PBS-DMSO buffer(99∶1,by volume,pH 7.45)

圖3 探針DHCD與不同濃度NaHS作用后的熒光光譜Fig.3 Fluorescence spectra of DHCD(10 μmol/L) upon addition of different concentrations of NaHS PBS-DMSO buffer(99∶1,by volume,pH 7.45)
為了確定探針與硫化氫的作用機(jī)理,測試了探針DHCD與NaHS作用前后的核磁氫譜。在探針與NaHS作用前,2,4-二硝基苯基上的3個質(zhì)子信號峰位于8.8、8.3、7.7 ppm,而在加入NaHS之后,這3個質(zhì)子信號峰消失,同時在13.2 ppm處新出現(xiàn)1個歸屬于酚羥基的特征質(zhì)子信號峰,表明探針DHCD與硫化氫發(fā)生巰解反應(yīng),釋放出熒光基團(tuán)。結(jié)合相關(guān)文獻(xiàn)報道[16-17],推測探針DHCD檢測硫化氫的可能機(jī)理如圖1所示。

圖4 探針DHCD(10 μmol/L)與不同物質(zhì)(200 μmol/L)作用前后的熒光強(qiáng)度矩形圖Fig.4 Fluorescence responses of DHCD(10 μmol/L) for various analytes(200 μmol/L) black bars represent the addition of a single analyte,red bars represent the subsequent addition of NaHS(200 μmol/L) to the mixture;SCN-,CH3COO-,respectively
為了探究探針的靈敏度,測試了DHCD(10 μmol/L)與不同濃度NaHS(0~200 μmol/L)在PBS-DMSO緩沖液(99∶1,體積比,pH 7.45)中的熒光光譜。從圖3可知,探針的熒光強(qiáng)度隨著NaHS濃度的增加而增加。更重要是,探針DHCD在513 nm處的熒光強(qiáng)度與NaHS的濃度在0~10 μmol/L范圍內(nèi)呈現(xiàn)良好的線性關(guān)系:Y=0.141 4+0.006 4X,r2=0.997 5(X為NaHS濃度,μmol/L,Y為歸一化熒光強(qiáng)度)。根據(jù)檢出限計算公式(LOD=3σ/k,σ為空白樣品連續(xù)測定11次的標(biāo)準(zhǔn)偏差,k為標(biāo)準(zhǔn)曲線斜率)[18],求出當(dāng)前方法對硫化氫的檢出限為0.84 μmol/L,該值遠(yuǎn)低于正常人體內(nèi)硫化氫的含量[19]。上述結(jié)果表明探針DHCD對硫化氫具有較高靈敏度,并能通過熒光光譜定量檢測體外硫化氫的含量。
除靈敏性外,選擇性也是評價探針優(yōu)劣的一個重要指標(biāo)。為證明DHCD對硫化氫的專一性,對探針與其他物質(zhì)(生理相關(guān)的陽離子、陰離子、硫醇)的熒光響應(yīng)情況進(jìn)行研究。如圖4所示,在NaHS存在下,探針產(chǎn)生明顯的熒光增強(qiáng)信號,而在其他物質(zhì)存在下,探針的熒光幾乎不變。更重要的是,這些被測試的物質(zhì)很難干擾探針對NaHS的檢測。上述實驗結(jié)果表明DHCD對硫化氫具有良好的選擇性和抗干擾性,滿足生物樣品中硫化氫的檢測要求。
鑒于DHCD在體外實驗中對硫化氫優(yōu)良的識別性能(Stokes位移大、靈敏性和選擇性高),利用DHCD對細(xì)胞內(nèi)的硫化氫進(jìn)行熒光成像。如圖5所示,將HeLa細(xì)胞與DHCD(10 μmol/L)孵育30 min后,細(xì)胞內(nèi)觀察不到熒光信號(圖5B)。然而,將細(xì)胞放置在含有NaHS(200 μmol/L)的培基中,孵育75 min,可以看到細(xì)胞內(nèi)有明亮的綠色熒光產(chǎn)生(圖5D)。從圖5A和圖5C可以觀察到,細(xì)胞生長狀態(tài)良好,這說明DHCD具有較好的生物相容性和低的細(xì)胞毒性。上述實驗證明本研究中的探針具有較好的細(xì)胞膜通透性,適合機(jī)體中硫化氫的成像分析。
本研究制備了一種基于分子內(nèi)質(zhì)子轉(zhuǎn)移發(fā)色團(tuán)的硫化氫熒光探針(DHCD),該探針與硫化氫作用后展現(xiàn)明顯的熒光“關(guān)-開”變化,同時伴隨大的Stokes位移。光譜分析表明DHCD對硫化氫具有較高的靈敏度和選擇性,且不受其他生理相關(guān)物質(zhì)的干擾。更重要的是,該探針具有良好的生物相容性,可用于活細(xì)胞中硫化氫的熒光成像。因此,本工作為深入研究機(jī)體內(nèi)硫化氫的生理及病理作用提供了一種強(qiáng)有力的分析方法。

圖5 HeLa細(xì)胞與DHCD(10 μmol/L)孵育30 min后的明場圖(A)及熒光成像圖(B),經(jīng)DHCD處理的HeLa細(xì)胞與NaHS(200 μmol/L)繼續(xù)孵育75 min后的明場圖(C)及熒光成像圖(D)Fig.5 Bright field image(A)and fluorescence image(B)of HeLa cells after being treated with DHCD(10 μmol/L) for 30 min, and bright field image(C) and fluorescence image(D) of HeLa cells preincubated with DHCD(10 μmol/L) for 30 min and then incubated with NaHS(200 μmol/L) for 75 min