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進(jìn)境菠菜種子攜帶菠菜潛隱病毒的檢測(cè)與鑒定

2020-06-21 15:35:06馮黎霞何瑞芳左然玲
江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2020年9期
關(guān)鍵詞:檢測(cè)

馮黎霞 何瑞芳 左然玲

關(guān)鍵詞:菠菜潛隱病毒;RT-PCR;菠菜;檢測(cè)

菠菜(Spinacia oleracea L.)是中國(guó)普遍栽培的蔬菜之一。菠菜潛隱病毒(Spinach latent virus,SpLV)是菠菜上重要的種傳病毒病害,曾用名為GE36,屬雀麥花葉病毒科(Bromoviridae)等軸不穩(wěn)環(huán)斑病毒屬(Ilarvirus)。SpLV基因組結(jié)構(gòu)為單鏈正義五分體RNA,必需有3個(gè)大的組分(RNA1、RNA2、RNA3)及1~2個(gè)小的組分(RNA4、RNA5)或外殼蛋白一起才能完成侵染過(guò)程,主要侵染菠菜、番茄、藜麥、甜菜、雞冠花、黃瓜、克利夫蘭煙、黏毛煙、黃花煙、菜豆等,SpLV存活期長(zhǎng),至少可以在菠菜、藜麥種子中存活5年,遠(yuǎn)距離傳播主要依靠種子[1-2]。SpLV目前主要分布在丹麥、芬蘭、瑞典、挪威、南斯拉夫、新西蘭、克羅地亞、美國(guó)、日本等國(guó)家或地區(qū)[3-6],我國(guó)沒(méi)有分布,也沒(méi)有截獲的任何報(bào)道。

本研究以進(jìn)境的菠菜種子為材料,應(yīng)用一步法逆轉(zhuǎn)錄PCR(RT-PCR)技術(shù)對(duì)SpLV進(jìn)行檢測(cè)鑒定。

1 材料與方法

1.1 材料和試劑

1.1.1 材料 受檢材料為2019年3月廣州海關(guān)檢驗(yàn)檢疫技術(shù)中心植檢室接收的進(jìn)境的菠菜種子。

1.1.2 試劑 核酸提取試劑TRIzol為Invitrogen公司產(chǎn)品;RT-PCR一步法試劑盒(PrimeScriptTM One Step RT-PCR Kit)、DNA Marker 2000購(gòu)自大連TaKaRa公司。

1.1.3 引物 SpLV RNA1組分引物SpLV-RNA1-F/R序列:5′-TGTGGATTGGTGGTTGGA-3′,5′-CTTGCTTGAGGAGAGATGTTG-3′; RNA2組分引物SpLV-RNA2-F/R序列:5′-GAACCACCGAAACCGAAA-3′,5′-CCACCTCAACACCAGTCATAG-3′;RNA3組分引物SpLV-RNA3-F/R序列:5′-GCCTTCATCTTTGCCTTTG-3′,5′-CATTTCATCTGCGGTGGT-3′;預(yù)期擴(kuò)增產(chǎn)物大小分別為722、436、213 bp[4],由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。

1.2 方法

1.2.1 樣品RNA的提取 隨機(jī)取樣并稱取50 g菠菜種子,研磨成粉末狀,稱取0.1 g移入滅菌的 2 mL 離心管中,加入1 mL的TRIzol試劑,劇烈振蕩搖勻,室溫靜置3 min;4 ℃、12 000 g離心10 min,取上清;加入200 μL三氯甲烷,上下顛倒混勻,室溫靜置3 min;4 ℃、12 000 g離心10 min,取上層水相;加等體積的異丙醇,顛倒混勻;4 ℃、12 000 g離心10 min,棄上清;加1 mL 75%乙醇洗滌沉淀,4 ℃、7 500 g離心 5 min,棄乙醇;沉淀于室溫下充分干燥后,溶于 50 μL 無(wú)RNA酶的ddH2O,-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

1.2.2 RT-PCR擴(kuò)增 利用一步法RT-PCR試劑盒,針對(duì)SpLV的3個(gè)不同組分進(jìn)行RT-PCR一步法檢測(cè),擴(kuò)增體系如下:PrimeScript One Step Buffer 25 μL,上下游引物各(20 μmol/L)1 μL,Prime Script 1 Step Enzyme Mix 2 μL,最后加RNase Free H2O至總體積為50 μL。反應(yīng)參數(shù)如下:50 ℃ 30 min;94 ℃ 2 min,94 ℃ 30 s,60 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,35個(gè)循環(huán);72 ℃10 min。

1.2.3 PCR產(chǎn)物的檢測(cè) RT-PCR反應(yīng)結(jié)束后,取5 μL擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)并記錄結(jié)果。PCR產(chǎn)物由廣州天一輝遠(yuǎn)基因科技有限公司純化并測(cè)序。

2 結(jié)果與分析

2.1 RT-PCR擴(kuò)增結(jié)果與分析

利用引物對(duì)SpLV-RNA1-F/R、SpLV-RNA2-F/R、SpLV-RNA3-F/R對(duì)菠菜種子中SpLV的3個(gè)組分進(jìn)行一步法 RT-PCR檢測(cè)鑒定。結(jié)果顯示,從待檢測(cè)樣品中分別擴(kuò)增出3條特異性條帶,大小分別為722、436、213 bp,與預(yù)期片段大小相符(圖1),初步判斷待測(cè)樣品可能感染了SpLV, 在底物和引物濃度完全一致的情況下,獲得的RNA2組分?jǐn)U增產(chǎn)物的濃度明顯比RNA1、RNA3高。

2.2 序列分析

產(chǎn)物核苷酸序列測(cè)序拼接后可知,擴(kuò)增的目的片段大小分別為722、436、213 bp,在美國(guó)國(guó)立生物技術(shù)信息中心(National Center for Biotechnology Information,簡(jiǎn)稱NCBI)網(wǎng)站進(jìn)行核酸序列Blast。結(jié)果表明,其中722 bp核苷酸片段與分離物SRP059420 RNA1組分(GenBank登錄號(hào):KY695012.1)核苷酸序列的同源性為99.72%,與美國(guó)分離物(GenBank登錄號(hào):U93192.1)核苷酸序列的同源性為99.58%,與番茄分離物(GenBank登錄號(hào):DQ457000.1)核苷酸序列的同源性為9787%;436 bp核苷酸片段與分離物SRP059420 RNA2組分(GenBank登錄號(hào):KY695013.1)核苷酸序列的同源性為100.00%,與美國(guó)分離物(GenBank登錄號(hào):U93193.1)核苷酸序列的同源性為9977%;213 bp核苷酸片段與分離物SRP059420(KY695014.1)和菠菜分離物(GenBank登錄號(hào):U93194.1)RNA3組分核苷酸序列同源性均為10000%。進(jìn)一步驗(yàn)證得出,3個(gè)不同大小的 RT-PCR產(chǎn)物均為SpLV的特異性產(chǎn)物。

3 結(jié)論與討論

菠菜潛隱病毒為五分體病毒,本研究為確定 RT-PCR擴(kuò)增到的產(chǎn)物為目標(biāo)病毒,利用特異性引物對(duì)SpLV侵染所需要的3個(gè)組分(RNA1、RNA2、RNA3)分別進(jìn)行擴(kuò)增,在擴(kuò)增條件完全一致的情況下,引物對(duì)SpLV-RNA2-F/R擴(kuò)增的RNA2組分產(chǎn)物量最大,條帶清晰,更適合日常SpLV的檢測(cè)鑒定。

菠菜種子被植物病毒感染后,種子的品質(zhì)下降,發(fā)芽率降低,芽苗生長(zhǎng)勢(shì)減弱,更易被其他病害侵染。SpLV隨種子傳毒的效率非常高,在藜麥和菠菜上種傳率超過(guò)50%,在煙葉上超過(guò)90%[1]。韓國(guó)曾多次從輸韓菠菜種子上截獲SpLV,并在2007年把該病毒列入輸韓植物和植物產(chǎn)品檢疫性有害生物名錄。此次在菠菜種子上截獲菠菜潛隱病毒,保護(hù)了我國(guó)蔬菜種植業(yè)的安全,為防止該病毒的傳入,廣州海關(guān)對(duì)該批菠菜種子作退運(yùn)處理。但是由于有害生物分布的非均勻性以及種子帶毒率的非一致性,入境第一口岸能否檢出有害生物以便識(shí)別風(fēng)險(xiǎn),這是一個(gè)概率事件,而不是百分之百能夠檢出有害生物的必然事件。因此國(guó)外預(yù)檢及入境后的監(jiān)管、監(jiān)測(cè)及跟蹤檢疫更為重要。

參考文獻(xiàn):

[1]Bos L,Huttinga H,Maat D Z. Spinach latent virus,a new ilarvirus seed-borne in Spinacia oleracea[J]. Journal of Plant Pathology,1980,86(2):79-98.

[2]Ge X,Scott S W,Zimmerman M T. The complete sequence of the genomic RNAs of spinach latent virus[J]. Arch Virology,1997,142(6):1213-1226.

[3]Fotopoulos V,Dovas C I,Katis N I. Incidence of viruses infecting spinach in Greece,highlighting the importance of weeds as reservoir hosts[J]. Journal of Plant Pathology,2011,93(2):389-395.

[4]Lebas B,Ochoa-Corona F M,Tang Z J,et al. First report of Spinach latent virus in tomato in New Zealand[J]. Plant Disease,2007,91(2):228.

[5]Vargas A J,Mclane H,Bush E,et al. Spinach latent virus infecting tomato in Virginia,United States[J]. Plant Disease,2013,97(12):1662-1663.

[6]Mustafa G,Erbay E,Semih E,et al. Occurrence of viruses infecting spinach in Western Anatolia of Turkey[J]. Journal of Food Agriculture and Environment,2014,12(1):272-275.林 姍,陸興利,趙金鵬,等. 四川省獼猴桃潰瘍病發(fā)生的氣象條件和綜合防治[J].

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